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Methodenartikel

Humanes Pseudoislet-System zur synchronen Bestimmung der Dynamik fluoreszierender Biosensoren und Hormonsekretionsprofile

3K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65259

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3. November 2023

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* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur synchronen Erfassung und Co-Registrierung von intrazellulären Signalereignissen und der Sekretion von Insulin und Glukagon durch primäre humane Pseudoinseln unter Verwendung der adenoviralen Verabreichung eines zyklischen Adenosinmonophosphat (cAMP)-Biosensors, eines cAMP-Differenzdetektors in situ (cADDis) und eines Mikroperifusionssystems.

Zusammenfassung

Die Langerhans-Inseln der Bauchspeicheldrüse, bei denen es sich um kleine 3D-Ansammlungen spezialisierter endokriner und unterstützender Zellen handelt, die in der gesamten Bauchspeicheldrüse verstreut sind, spielen eine zentrale Rolle bei der Kontrolle der Glukosehomöostase durch die Sekretion von Insulin durch Betazellen, was den Blutzucker senkt, und von Glukagon durch Alphazellen, das den Blutzucker erhöht. Intrazelluläre Signalwege, einschließlich derer, die durch cAMP vermittelt werden, sind der Schlüssel für die regulierte Alpha- und Betazell-Hormonsekretion. Die 3D-Inselstruktur ist zwar essentiell für die koordinierte Inselfunktion, stellt aber experimentelle Herausforderungen für mechanistische Studien der intrazellulären Signalwege in primären menschlichen Inselzellen dar. Um diese Herausforderungen und Einschränkungen zu überwinden, beschreibt dieses Protokoll eine integrierte Live-Cell-Imaging- und Mikrofluidik-Plattform, die primäre menschliche Pseudoinseln verwendet, die von Spendern ohne Diabetes erzeugt wurden und in ihrer Morphologie, Zusammensetzung und Funktion nativen Inseln ähneln. Diese Pseudoinseln werden durch den Dispersions- und Reaggregationsprozess primärer humaner Inselzellen größengesteuert. Im dispergierten Zustand kann die Genexpression von Inselzellen manipuliert werden; So können beispielsweise Biosensoren wie der genetisch kodierte cAMP-Biosensor, cADDis, eingeführt werden. Nach ihrer Bildung ermöglichen Pseudoinseln, die einen genetisch kodierten Biosensor exprimieren, in Kombination mit konfokaler Mikroskopie und einer Mikroperifusionsplattform die synchrone Bewertung der Dynamik fluoreszierender Biosensoren und der sekretorischen Profile von Alpha- und Betazellhormonen, um einen besseren Einblick in zelluläre Prozesse und Funktionen zu erhalten.

Einleitung

Die Langerhans-Inseln sind Mini-Organe, die über die gesamte Bauchspeicheldrüse verstreut sind und deren Funktion für die Aufrechterhaltung der Glukosehomöostase entscheidend ist. Insulin wird aus Betazellen nach dem Metabolismus von Glukose, einem Anstieg des ATP/ADP-Verhältnisses, dem Verschluss von ATP-empfindlichen Kaliumkanälen, der Depolarisation der Plasmamembran und dem Einstrom von extrazellulärem Kalzium1 sezerniert. Die Glucagon-Sekretion aus Alpha-Zellen ist weniger verstanden, aber es wurde postuliert, dass intrazelluläre und parakrine Signalwege zur Exozytose des Glucagon-Granula-Granulats beitragen

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Protokoll

Humane Inselzellen (N = 4 Präparate) wurden durch Partnerschaften mit dem Integrated Islet Distribution Program, dem Human Pancreas Analysis Program, Prodo Laboratories, Inc. und Imagine Pharma gewonnen. Das Vanderbilt University Institutional Review Board betrachtet deidentifizierte menschliche Bauchspeicheldrüsenproben nicht als Forschung am Menschen. Diese Arbeit wäre ohne Organspender, ihre Familien und Organbeschaffungsorganisationen nicht möglich. In Tabelle 1 finden Sie demografische Informationen zu den Spendern. Menschliche Inselzellen von Pankreasspendern ohne Diabetes wurden mit einer Zeit von weniger als 15 Stunden kalter Ischämie isoliert....

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Ergebnisse

Biosensor-exprimierende humane Pseudoinseln wurden durch die adenovirale Verabreichung von Konstrukten erzeugt, die für die cAMP-Biosensor-cADDis kodieren (Abbildung 1A). Abbildung 1B zeigt die Reaggregation der transduzierten humanen Inselzellen im Laufe der Zeit, wobei nach 6 Tagen Kultur vollständig ausgebildete Pseudoinseln beobachtet wurden. Die Zellen begannen innerhalb von 48 Stunden eine sichtbare cADDis-Fluoreszenz zu zeigen, und am Ende der Ku.......

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Diskussion

Die Integration eines Mikroperifusionssystems, biosensorexprimierender Pseudoinseln und konfokaler Laser-Scanning-Mikroskopie ermöglicht die synchrone Beurteilung intrazellulärer Signalereignisse und dynamischer Hormonsekretionsprofile. Das dynamische Mikroperifusionssystem kann eine Reihe von genau definierten Stimuli an die Pseudoinseln abgeben und ermöglicht die Sammlung des Abwassers, in dem die Insulin- und Glukagonkonzentrationen mit einem kommerziell erhältlichen ELISA gemessen werden können. Gleichzeitig erfasst .......

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Offenlegungen

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Danksagungen

Organspender und ihre Familien werden für ihre unschätzbaren Spenden geschätzt, und das International Institute for Organ Procurement Organizations, Advancement of Medicine (IIAM) und der National Disease Research Exchange (NDRI) werden für ihre Partnerschaft bei der Zugänglichmachung von menschlichem Bauchspeicheldrüsengewebe für die Forschung gewürdigt. Diese Arbeit wurde unterstützt vom Human Islet Research Network (RRID:SCR_014393), dem Human Pancreas Analysis Program (RRID:SCR_016202), DK106755, DK123716, DK123743, DK120456, DK104211, DK108120, DK112232, DK117147, DK112217, EY032442 und DK20593 (Vanderbilt Diabetes Research and Training Center), dem Leona M. and ....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Ad-CMV-cADDisWelgenNicht zutreffend
  0,01" FEP-SchlauchIDEX1527L
1 M HEPESGibco15630-080Enriched-CMRL Medienkomponente
1,5 mL und konische RöhrchenBeliebig10
μ m PTFE-FilterCole-ParmerSK-21940-41Wechsel alle 8-10 Läufe
100 mM NatriumpyruvatThermo Scientific11360070angereicherte-CMRL Medienkomponente
190 proof EthanolDecon labs2816saure Ethanolkomponente
200 mM GlutaMAX-I ErgänzungGibco35050061angereicherte CMRL Medienkomponente
AscorbatSigmaA5960DMEM Perifusionspuffer Komponente
RinderserumalbuminSigmaA7888DMEM Perifusionspuffer Komponente
Blasenfalle  Omnifit006BT
CellCarrier ULA  96-Well-MikrotiterplattenPerkin Elmer6055330
cellSens AnalysesoftwareOlympusv3.1Software für die Datenanalyse
CMRL 1066MediaTech 15-110-CVKonischer Adapter für angereicherte CMRL-Medienkomponente
(IDEX, P-794)IDEXP-794
D-(+)-GlukoseSigmaG7528Glukosepufferkomponente
DMEM SigmaD5030DMEM Perifusionspuffer Komponente
KlimakammerokolabIX83
Epinepherin (Epi)SigmaE4250Stimulationspuffer Komponente
Fötales Rinderserum (FBS), hitzeinaktiviertSigma12306Cangereicherte CMRL Medienkomponente
Glucagon ELISAMercodia10-1281-01
Glucagon Kit HTRFCisbio62CGLPEH
HCl (12N)Jedebeliebige Säure Ethanol Komponente
HEPESSigmaH7523DMEM Perifusionspuffer Komponente
iCell Endothelzellen Medium SupplementCell DynamicsM1019iEC Medienkomponente
Idex Derlin Mutter & Ferrule 1/4-24Cole-ParmerEW-00414-LW
Insulin ELISAMercodia10-1113-01
Isobutylmethylonin (IBMX)SigmaI5879Stimulationspufferkomponente
Konfokales Laserscanning-MikroskopOlympusFV3000
L-GlutaminSigmaG8540DMEM Perifusionspuffer
Komponente Mikrochip (Universität von Miami, FP-3W)Universität von MiamiFP-3W
Mikrochip-Halter Micronit MicrofluidicsFC_PRO_CH4525
Modell 2110 FraktionssammlerBiorad7318122
P10, P200 und P1000 Pipetten und SpitzenAlleAlle Penicillin
/StreptomycinGibco15140-122Enriched-CMRL Medienkomponente
Schlauchpumpe InstechP720
Phosphat gepufferte KochsalzlösungGibco14190-144Waschinseln
Sarstedt GeschirrSarstedtabhängig vom Schalendurchmesser
NatriumbicarbonatSigmaS6014DMEM Perifusionspuffer Komponente
NatriumpyruvatSigmaP2256  DMEM Perifusionspuffer-Komponenten-Stereoskop
OlympusSZX12
Steriflip-Filter (0,22 μ m)MilliporeSCGP00525Alle Puffer doppelt filtern
VascuLife VEGF Medium Komplettes KitLifeLine Cell TechnologyLL-0003iEC Medienkomponente

Referenzen

  1. Tokarz, V. L., MacDonald, P. E., Klip, A. The cell biology of systemic insulin function. The Journal of Cell Biology. 217 (7), 2273-2289 (2018).
  2. Yu, Q., Shuai, H., Ahooghalandari, P., Gylfe, E., Tengholm, A. Glucose controls glucagon secretion by directly modulating cAMP in alph....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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