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Methodenartikel

Anreicherung von mRNA- und Bisulfit-mRNA-Bibliotheksvorbereitung für Next-Generation-Sequencing

1.9K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65352

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7. Juli 2023

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieses Protokoll bietet einen einfach zu befolgenden Arbeitsablauf für die Durchführung von Poly(A)-RNA-Aufreinigung, Bisulfitumwandlung und Bibliotheksvorbereitung mit standardisierten Geräten für eine biologische Probe von Interesse.

Zusammenfassung

RNA-posttranskriptionelle Modifikationen in verschiedenen Arten von RNA-Transkripten sind mit einer vielfältigen RNA-Regulation in eukaryotischen Zellen verbunden. Es wurde gezeigt, dass aberrante RNA-5-Methylcytosin-Modifikationen und die dysregulierte Expression von RNA-Methyltransferasen mit verschiedenen Krankheiten, einschließlich Krebs, in Verbindung gebracht werden. Die Transkriptom-weite Bisulfit-Sequenzierung wurde entwickelt, um die Positionen und die quantitativen Cytosin-Methylierungsniveaus in der Bisulfit-konvertierten RNA mit Basenpaarauflösung zu charakterisieren. In diesem Protokoll werden die Verfahren von zwei Runden der Poly(A)-RNA-Reinigung, drei Zyklen der Bisulfitreaktion und der Bibliotheksvorbereitung im Detail vorgestellt, um die transkriptomweite Kartierung von mRNA-5-Methylcytosin-Modifikationsstellen zu ermöglichen. Die Bewertung der RNA-Quantität und -Qualität nach der Hauptreaktion ist für die Überwachung der RNA-Integrität unerlässlich und ein entscheidender Schritt zur Gewährleistung qualitativ hochwertiger Sequenzierungsbibliotheken. Im Idealfall können die Eingriffe innerhalb von drei Tagen abgeschlossen werden. Mit diesem Protokoll können durch die Verwendung hochwertiger Gesamt-RNA als Input praktisch robuste Bisulfit-mRNA-Bibliotheken für die Sequenzierung der nächsten Generation aus der interessierenden Probe aufgebaut werden.

Einleitung

Unter über 150 Arten von posttranskriptionellen Modifikationen1 wurde eine Modifikation von 5-Methylcytosin (m5C) in verschiedenen Arten von RNAs identifiziert, darunter ribosomale RNA, Transfer-RNA, Boten-RNA, Mikro-RNA, lange nicht-kodierende RNA, Vault-RNA, Enhancer-RNA und kleine Cajal-Körper-spezifische RNAs2. Die RNA m5Cist mit verschiedenen biologischen und pathologischen Mechanismen assoziiert, wie z. B. der Regulierung der Pflanzenwurzelentwicklung3, der viralen Genexpression4 und der Krebsprogression5. Das Ziel dieses ....

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Protokoll

1. Poly(A)-RNA-Aufreinigung

HINWEIS: Verwenden Sie die mit DNase I behandelte Gesamt-RNA und untersuchen Sie die Gesamt-RNA-Qualität und -Integrität durch Kapillar- oder konventionelle Gelelektrophorese, bevor Sie mit der Poly(A)-RNA-Aufreinigung fortfahren. Die Forscher sollten in der Lage sein, die ribosomalen 28S- und 18S-rRNA-Banden im hochmolekularen Feld und die 5,8S-rRNA-Bande im niedermolekularen Feld ohne signifikante Schmierbanden im Elektropherogramm zu identifizieren. Die Reinigungsschritte folgen im Wesentlichen den Anweisungen des Herstellers mit geringfügigen Änderungen, die in den spezifischen Schritten angege....

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Ergebnisse

Eine Reihe von bsRNA-seq-Bibliotheken aus Zelllinien19 wurde erzeugt, indem die Verfahren in diesem Bericht befolgt wurden (Abbildung 1). Nach der vollständigen RNA-Aufreinigung mit einer DNase-Behandlung, die an Zelllinienproben durchgeführt wird, und der Qualitätskontrolle durch Gelelektrophorese und UV-Vis-Spektrophotometrie (A260/A280) kann die RNA-Probe zur Poly(A)-RNA-Anreicherung übergehen. Um festzustellen, ob durch die doppelte Aufreinigung d.......

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Diskussion

In diesem Protokoll wurde eine detaillierte Pipeline von Poly(A)-Anreicherung, Bisulfitumwandlung und Bibliotheksvorbereitung durch die Verwendung standardisierter Komponenten erreicht. Weitere Sequenzierungsanalysen ermöglichten die Identifizierung von mRNA 5-Methylcytosin in Proben von Interesse.

Der entscheidende Schritt ist die Qualität des Ausgangsmaterials - der Gesamt-RNA -, da der Abbau von RNA die Wiederfindungsrate der Poly(A)-RNA-Reinigung beeinträchtigen würde. Die Probe sollte vor.......

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Offenlegungen

Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Arbeit wurde vom National Science and Technology Council of Taiwan unterstützt. [NSTC 111-2314-B-006-003]

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
Agilent 2100 Elektrophorese-Bioanalysator-SystemAgilent, Santa Clara, KalifornienNachweis der RNA-Qualität
AMpure XP-KügelchenBeckman CoulterA63881Aufreinigung
DNA-Kit mit hoher EmpfindlichkeitAgilent, Santa Clara, Kalifornien5067-4626Nachweis der DNA-Qualität
Bioanalysator RNA 6000 Pico-KitAgilent, Santa Clara, Kalifornien5067-1513RNA Qualitätsnachweis
DiaMag02 - magnetisches GestellDiagenode, Denville, NJB04000001Unterstützung der Bibliotheksvorbereitung
DiaMag1.5 - magnetisches GestellDiagenode, Denville, NJB04000003Unterstützung der Poly(A)-RNA-Aufreinigung
Dynabeads mRNA DIRECT-AufreinigungskitThermo Fisher Scientific, Waltham, MA61011Poly(A)-RNA-Aufreinigung; Waschpuffer 1 und Waschpuffer 2
EthanolJ.T.Baker64-17-5
EZ RNA-MethylierungskitZymo, Irvine, CAR5002Bisulfit-Behandlung
Firefly Luciferase mRNAPromega, Madison, WI, USAL4561Anstieg der Kontrollsequenz
KAPA Library Quantification KitsRoche, SchweizKK4824Bibliotheksquantifizierung
Nanodrop-SpektralphotometerThermo Fisher Scientific, Waltham, MATotal RNA quantity detection
NEBNext multiplex Oligos for illumina (index Primer set1)New England Biolabs, Ipswich, MAE7335SBibliotheksvorbereitung
NEBNext Ultra figure-materials-1 Directional RNA Library Prep Kit für IlluminaNew England Biolabs, Ipswich, MAE7760SBibliotheksvorbereitung
Nukleasefreies WasserThermo Fisher ScientificAM9932
P2 PipettiererThermo Fisher Scientific, Waltham, MA4641010
Qubit 2.0 Fluorometer Thermo Fisher Scientific, Waltham, MANachweis von RNA-Mengen
Qubit dsDNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32854Nachweis von DNA-Mengen
Qubit RNA HS Assay KitThermo Fisher Scientific, Waltham, MAQ32852Nachweis von RNA-Mengen
DNA-Bioanalysator

Referenzen

  1. Boccaletto, P., et al. MODOMICS: a database of RNA modification pathways. 2021 update. Nucleic Acids Research. 50, D231-D235 (2022).
  2. Bohnsack, K. E., Höbartner, C., Bohnsack, M. T. Eukaryotic 5-methylcytosine (m5C) RNA Me....

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Nachdrucke und Genehmigungen

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