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Methodenartikel

Generierung von induzierten pluripotenten Stammzell-abgeleiteten iTenozyten durch kombinierte Sklera-Überexpression und uniaxiale 2D-Spannung

2.8K Aufrufe

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DOI:

10.3791/65837

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1. März 2024

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Dieser Artikel beschreibt ein Verfahren zur Herstellung von iTenozyten durch die Erzeugung von iPSC-abgeleiteten mesenchymalen Stromazellen mit kombinierter Überexpression von Sklerose unter Verwendung eines lentiviralen Vektors und uniaxialer Streckung über einen 2D-Bioreaktor.

Zusammenfassung

Die heutigen Herausforderungen in der Sehnen- und Bänderreparatur erfordern die Identifizierung eines geeigneten und wirksamen Kandidaten für eine zellbasierte Therapie zur Förderung der Sehnenregeneration. Mesenchymale Stromazellen (MSCs) wurden als potenzielle Tissue-Engineering-Strategie für die Sehnenreparatur untersucht. Obwohl sie multipotent sind und in vivo ein regeneratives Potenzial haben, sind sie in ihrer Selbsterneuerungsfähigkeit begrenzt und weisen eine phänotypische Heterogenität auf. Induzierte pluripotente Stammzellen (iPS-Zellen) können diese Einschränkungen aufgrund ihrer hohen Selbsterneuerungsfähigkeit und ihrer beispiellosen Entwicklungsplastizität umgehen. In der Tenozytenentwicklung ist die Skleraxis (Scx) ein entscheidender direkter molekularer Regulator der Sehnendifferenzierung. Darüber hinaus hat sich gezeigt, dass die Mechanoregulation ein zentrales Element ist, das die embryonale Sehnenentwicklung und -heilung steuert. Aus diesem Grund haben wir ein Protokoll entwickelt, um den synergistischen Effekt biologischer und mechanischer Stimulation zu erfassen, der für die Bildung von Tenozyten unerlässlich sein kann. iPS-Zellen wurden zu mesenchymalen Stromazellen (iMSCs) induziert und mittels Durchflusszytometrie mit klassischen mesenchymalen Stromazellmarkern charakterisiert. Als nächstes wurden die iMSCs mit Hilfe eines lentiviralen Vektors transduziert, um SCX stabil zu überexprimieren (iMSCSCX+). Diese iMSCSCX+ Zellen können durch einachsige Zugbelastung mit einem 2D-Bioreaktor zu iTenozyten weiter gereift werden. Die resultierenden Zellen wurden durch die Beobachtung der Hochregulierung von frühen und späten Sehnenmarkern sowie der Kollagenablagerung charakterisiert. Diese Methode zur Generierung von iTenozyten kann verwendet werden, um Forscher bei der Entwicklung einer potenziell unbegrenzten allogenen Zellquelle von der Stange für Sehnenzelltherapieanwendungen zu unterstützen.

Einleitung

Um die aktuellen Probleme bei der Reparatur von Sehnen und Bändern anzugehen, ist ein entsprechender Zellkandidat erforderlich, der für zellbasierte Therapien geeignet ist. Ein Forschungsansatz im Bereich des Tissue Engineering für die Sehnenreparatur ist die Erforschung von aus dem Knochenmark stammenden mesenchymalen Stromazellen (BM-MSCs) und aus Fettgewebe gewonnenen Stromazellen (ASCs) als mögliche Strategien. Diese Zellen verfügen über multipotente Fähigkeiten, eine große Häufigkeit und ein regeneratives Potenzial in vivo. Darüber hinaus haben sie eine verbesserte Heilungskapazität und verbesserte funktionelle Ergebnisse in Tiermodellen gezeigt

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Protokoll

Dieses Protokoll zur Herstellung von iTenozyten kann in drei Hauptschritten durchgeführt werden: iPSCs zu iMSCs (10 Tage), iMSC zu iMSCSCX+ (2 Wochen), iMSCSCX+ zu iTenozyten (mindestens 4 Tage). Jeder wichtige Schritt im Protokoll kann je nach experimentellem Zeitplan pausiert und später neu gestartet werden. Für Methoden, die mit der Kultivierung von Zellen verbunden sind, sollten sterile Techniken angewendet werden. Alle Zellen in diesem Protokoll sollten bei 37 °C, 5 % CO2 und 95 % Luftfeuchtigkeit gezüchtet werden.

1. Humane iPSC-Induktion in induzierte mesenchymale Stromazellen (iMSCs)

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Ergebnisse

Humane iPS-Zellen Differenzierung zu iMSCs
Wie bereits beschrieben, beinhaltet das derzeitige Protokoll zur Differenzierung von iPS-Zellen in iMSCs die Bildung von Embryoidkörpern2. Dieser Prozess dauert etwa zehn Tage, um iMSCs aus iPS-Zellen zu induzieren (Abbildung 1A). Es wird jedoch dringend empfohlen, die neu generierten iMSCs mindestens zweimal zu passieren. Dies trägt nicht nur dazu bei, die Notwendigkeit von gelatinebeschichteten Platten z.......

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Diskussion

In diesem Protokoll werden iTenozyten durch drei Hauptschritte erzeugt: (1) Induktion von iPS-Zellen zu iMSCs, (2) Überexpression von SCX unter Verwendung eines lentiviralen Vektors und (3) Reifung von Zellen durch uniaxiale 2D-Spannung.

Das vorgestellte Protokoll zur Differenzierung von iPS-Zellen in iMSCs wurde bereits von unserer Gruppe2 beschrieben. Seit dieser Veröffentlichung wurden zahlreiche Protokolle entwickelt, darunter ein etabliertes Protokoll für die Verwe.......

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Offenlegungen

Alle Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.

Danksagungen

Diese Studie wurde teilweise vom NIH/NIAMS-K01AR071512 und CIRM DISC0-14350 an Dmitriy Sheyn unterstützt. Die beiden Lentivirus-Verpackungsplasmide waren ein Geschenk des Simon-Knott-Labors (Department of Biomedical Sciences, Cedars-Sinai Medical Center).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
2-Mercaptoethanol Sigma AldrichM3148
AccutaseStemCell Technologies7920Reagenz für Zelldissoziation
Antibiotisch-antimykotische LösungThermofisher15240096
Anti-CD105Ancell326-050
APC Maus Anti-Human-CD44BD Biosciences559942
APC Maus IgG2 K IsotypkontrolleBD Biosciences555745
BenchMark fötales RinderserumGeminiBio100-106
BiglycanThermofisherHs00959143_m1
Rinderserum AlbuminMillipore SigmaA3733
Kollagen Typ I alpha 1 Kette human Taqman PrimerThermofisherHs00164004_m1
Kollagen Typ III alpha 1 Kette human Taqman GrundierungThermofisherHs00943809_m1
DimethylsulfoxidMillipore SigmaD8418
DMEM, niedriger Glukosespiegel, Pyruvat, kein Glutamin, kein PhenolrotThermofisher11054020
Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)ATCC30-2003
Fibronektin RinderplasmaSigma AldrichF1141
FITC Maus Anti-Mensch CD90BD Biosciences555595
Gelatine aus SchweinehautSigma AldrichG1890
Ziege Anti Maus IgG1-PEBio-RadSTAR117
HEK 293T/17ATCCCRL-11268
IMDM, kein PhenolrotThermofisher21056023
iPSCs: 83i-cntr-33n1Cedars-Sinai iPSC Core FacilityN/Ahttps://biomanufacturing.cedars-sinai.org/product/cs83ictr-33nxx/
Isotyp-Kontrolle Antikörper, Maus IgG2a-FITCMiltenyi Biotec130-113-271
KnockOut-SerumersatzThermofisher10828010
L-AscorbinsäureSigma AldrichA4544
L-GlutaminThermofisher2503081
MatrigelCorning354230Basalmembran-Matrix
MechanoCulture FXCellScaleN/
MEM-Lösung für nicht-essentielle AminosäurenThermofisher11140050
Mohawk humane Taqman-PrimerThermofisherHs00543190_m1
mTeSR PlusStemCell Technologies100-0276
PBSThermofisher10010023
Thrombozyten-abgeleiteter Wachstumsfaktor-Rezeptor Ein humaner Taqman-PrimerThermofisherHs00998018_m1
Poly(2-hydroxyethylmethacrylat)Sigma Aldrich192066
Polybrene Infektions-/TransfektionsreagenzienMillipore SigmaTR-1003
Rekombinant human  TGF-beta 1 Protein human Taqman PrimerRnD Systems240-B
Scleraxis human Taqman PrimerThermofisherHs03054634_g1
SCXA (SCX) (NM_00108050514) human tagged ORF KlonOriGeneRC224305L4
SilikonplattenCellScaleN/A
NatriumazidMillipore SigmaS2002
Tenascin C humaner Taqman-PrimerThermofisherHs00370384_m1
Tenomodulin humaner Taqman-PrimerThermofisherHs00223332_m1
Thrombospondin 4 humaner Taqman-PrimerThermofisherHs00170261_m1
Transfektionsreagenz, BioTBioland Scientific LLCB01-01
Trypsin-EDTA (0,25%)Thermofisher25200072
Tubulinpolymerisationsförderndes Protein, Familienmitglied 3ThermofisherHs03043892_m1
Y-27632 DihydrochloridBiogems1293823
A-Streckgerät

Referenzen

  1. Lim, W. L., Liau, L. L., Ng, M. H., Chowdhury, S. R., Law, J. X. Current progress in tendon and ligament tissue engineering. Tissue Engineering and Regenerative. 16 (6), 549-571 (2019).
  2. Sheyn, D., et al.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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