Protein-DNA-Wechselwirkungen untermauern essentielle zelluläre Prozesse. Das Verständnis dieser Wechselwirkungen ist entscheidend für die Aufklärung der molekularen Mechanismen verschiedener Signalwege. Schlüsselfaktoren wie die Struktur, Sequenz und Länge eines DNA-Moleküls können die Proteinbindung maßgeblich beeinflussen. Die Bioschichtinterferometrie (BLI) ist eine markierungsfreie Technik, die die Bindungskinetik zwischen Molekülen misst und einen einfachen und präzisen Ansatz zur quantitativen Untersuchung von Protein-DNA-Wechselwirkungen bietet. Ein großer Vorteil von BLI gegenüber herkömmlichen gelbasierten Methoden ist die Fähigkeit, Echtzeitdaten über die Bindungskinetik zu liefern, was eine genaue Messung der Gleichgewichtsdissoziationskonstante (KD) für dynamische Protein-DNA-Wechselwirkungen ermöglicht. In diesem Artikel wird ein grundlegendes Protokoll zur Bestimmung desKD-Wertes der Wechselwirkung zwischen einem DNA-Replikationsprotein, dem Replikationsprotein A (RPA) und einem einzelsträngigen DNA-Substrat (ssDNA) vorgestellt. RPA bindet ssDNA mit hoher Affinität, muss aber auch leicht verdrängt werden, um nachfolgende Proteininteraktionen innerhalb biologischer Signalwege zu erleichtern. Im beschriebenen BLI-Assay wird biotinylierte ssDNA auf einem Streptavidin-beschichteten Biosensor immobilisiert. Anschließend wird die Bindungskinetik (Assoziation und Dissoziation) von RPA an die Biosensor-gebundene DNA gemessen. Die resultierenden Daten werden analysiert, um mit Hilfe von Systemsoftware genaue Werte für die Assoziationsratenkonstante (ka), die Dissoziationsratenkonstante (kd) und die Gleichgewichtsbindungskonstante (KD) abzuleiten.