Methodenartikel

Elektroakupunkturtherapie bei kognitiven Beeinträchtigungen nach Rückenmarksverletzung

513 Ansichten

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DOI:

10.3791/69346

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21. November 2025

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1School of Acupuncture, Moxibustion and Tuina, Beijing University of Chinese Medicine, 2Department of Rehabilitation, The Third Affiliated Hospital of Beijing University of Chinese Medicine, 3Department of Rehabilitation, Jiangsu Changshu Second People's Hospital, 4Traditional Chinese Medicine Department, Shenzhen Third People's Hospital, Southern University of Science and Technology

* These authors contributed equally

In diesem Artikel

Zusammenfassung

Diese Studie etablierte ein standardisiertes Elektroakupunkturverfahren zur Behandlung kognitiver Beeinträchtigungen nach Rückenmarksverletzungen. Darüber hinaus wurde das Protokoll zur Durchführung des Y-Labyrinths und neuartiger Objekterkennungsexperimente zur Bewertung der Wirksamkeit der Elektroakupunktur bei der Linderung kognitiver Defizite ausführlich beschrieben.

Zusammenfassung

Die Rückenmarksverletzung (SCI) ist eine stark beeinträchtigende und zerstörerische Erkrankung des zentralen Nervensystems (ZNS), die nicht nur zu motorischen und sensorischen Störungen der Gliedmaßen führt, sondern auch die Struktur und Funktion des Hippocampus und Kortex stört, was zu kognitiven Beeinträchtigungen führt, die die Lebensqualität der Patienten erheblich beeinträchtigen. Daher ist es unerlässlich, wirksame Behandlungsansätze und Bewertungsmethoden zu erforschen. Die Elektroakupunktur (EA) ist eine neuartige Therapie, die traditionelle Akupunktur mit moderner Elektrotherapietechnologie verbindet, die Vorteile hoher Sicherheit und wenige Nebenwirkungen bietet und weit verbreitet bei der Behandlung von SCI eingesetzt wird. Nach der Theorie der traditionellen chinesischen Medizin (TCM) verbindet das Gouverneurgefäß das Gehirn mit dem Rückenmark. Daher kann EA an den Akupunktpunkten auf dem Governor Vessel die Funktionen des Gehirns und des Rückenmarks effektiv wiederherstellen. In diesem Protokoll verwendeten wir Allens Methode, um das SCI-Modell zu konstruieren. Wir führten ein EA-Verfahren ein, das darauf abzielt, kognitive Beeinträchtigungen bei Ratten mit SCI zu behandeln. Darüber hinaus beschrieben wir detailliert den Funktionsprozess des Y-Labyrinths und des neuartigen Objekterkennungs-(NOR)-Experiments, um die Wirksamkeit von EA bei der Linderung kognitiver Defizite bei Ratten zu bewerten. Diese Forschung bietet nicht nur ein Behandlungsprotokoll, das als Referenz für kognitive Beeinträchtigungen nach SCI dient, sondern bietet auch vorläufige experimentelle Unterstützung zur Validierung therapeutischer Strategien für diese Erkrankung und zur anschließenden Forschungsuntersuchung.

Einleitung

Die Rückenmarksverletzung (SCI) ist eine häufige Erkrankung des zentralen Nervensystems (ZNS), die typischerweise durch Schäden am Rückenmark oder seinen umliegenden Strukturen durch äußere Einflüsse verursacht wird. Diese Erkrankung kann zu sensorischen, motorischen und autonomen Nervenstörungen unterhalb der Verletzungsstufe1 führen. Noch wichtiger ist, dass SCI auch sekundäre Komplikationen wie Angstzustände, Depressionen und kognitive Beeinträchtigungen 2,3 hervorrufen können, die der Rehabilitation der Patienten schaden und ihre Lebensqualität erheblich beeinträchtigen. Mehrere epidemiologische Studien haben ergeben, dass das Risiko für Alzheimer (AD) bei SCI-Patienten deutlich höher ist als in der Allgemeinbevölkerung 4,5,6. Eine weitere Studie bestätigte, dass die Häufigkeit kognitiver Beeinträchtigungen bei SCI-Patienten bis zu 60 % erreichen kann. SCI führt nicht nur zur Atrophie des motorischen Kortex, sondern verringert auch die neuronale Aktivität in Hirnregionen, die mit kognitiver Funktionassoziiert sind. Die erhöhte Entzündung im Hippocampus, Thalamus und Kortex nach SCI gilt als bedeutender Beitrag zur kognitiven Beeinträchtigung 9,10,11. Die Verbesserung von Komplikationen im Zusammenhang mit SCI, wie kognitiven Beeinträchtigungen, ist entscheidend, um die Rehabilitation der Patienten zu verbessern und ihre Wiedereingliederung in die Gesellschaft zu erleichtern.

Akupunktur ist ein bedeutender Bestandteil der traditionellen chinesischen Medizin (TCM) und bekannt für ihre bemerkenswerte klinische Wirksamkeit. Die Elektroakupunktur (EA) stellt eine innovative Therapie dar, die traditionelle Akupunktur mit modernen Elektrotherapietechniken integriert12. Es stimuliert Nerven und Muskeln, indem es Niederspannungsstrom an spezifische Akupunkte anwendet, was therapeutische Vorteile für die funktionelle Genesung nach chronischen Schmerzen und Verletzungen des Nervensystems bietet 13,14,15. Zahlreiche Studien haben gezeigt, dass EA die neurologische funktionelle Genesung nach SCI fördern und Komplikationen wie neuropathische Schmerzen, neurogene Blase und Spastizitätabmildern kann. Nach der Theorie der TCM ist das Governor Vessel mit Gehirn und Rückenmark verbunden und beeinflusst deren Funktionen20. Wir haben festgestellt, dass EA an den Dazhui (GV14) und Mingmen (GV4) Akupunkten am Governor Vessel die Neuroentzündung lindern und die Bildung glialer Narben hemmen kann, wodurch die motorische Erholung nach SCI21 gefördert wird. Darüber hinaus haben unsere Untersuchungen festgestellt, dass EA an den Akupunkten von Baihui (GV20) und Yintang (GV29) auf dem Governor Vessel die kognitiven Fähigkeiten bei AD-Modellmäusenverbessern kann. Dennoch ist das Potenzial von EA bei der Behandlung kognitiver Beeinträchtigungen nach SCI weiterhin unzureichend erforscht.

In dieser Studie beschreiben wir die operativen Methoden von EA zur Behandlung kognitiver Beeinträchtigungen bei SCI-Ratten, einschließlich Akupunkturauswahl, Akupunkturwinkel, Behandlungsdauer und weiteren Details. Zusätzlich verwendeten wir die Y-Maze- und NOR-Tests zusammen mit pathologischen Untersuchungen, um die Wirksamkeit von EA bei der Behandlung kognitiver Beeinträchtigungen zu bewerten. Diese Studie soll als Referenz für die klinische Behandlung dieser Erkrankung dienen.

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Protokoll

Alle experimentellen Verfahren wurden in strikter Übereinstimmung mit den Richtlinien des National Institutes of Health für die Pflege und Nutzung von Labortieren durchgeführt und vom Tierethikkomitee der Beijing University of Chinese Medicine genehmigt (Zulassungs-ID: BUCM-2024042505-2065).

1. Tiervorbereitung

  1. Wählen Sie für das Experiment männliche erwachsene Sprague Dawley (SD) Ratten mit einem Gewicht von 220,0 g ± 20,0 g aus.
  2. Halten Sie die Tiere im Versuchszentrum der Pekinger Universität für Chinesische Medizin bei kontrollierter Temperatur (24 ± 2 °C) und einem 12-Stunden-Dunkel-/Lichtzyklus, mit sterilem Trinkwasser und einer standardmäßigen Pellet-Diät ad libitum.
  3. Gewöhnen Sie alle Tiere für 7 Tage an die Umwelt, bevor sie experimentieren.
  4. Teilen Sie 24 SD-Ratten zufällig in drei Gruppen auf (n = 8 pro Gruppe): die Sham-Operationsgruppe (Sham), die SCI-Modellgruppe (Modell) und die Elektroakupunkturgruppe (EA). Das Zeitachsendiagramm des experimentellen Designs ist in Abbildung 1 dargestellt.

2. Einführung des SCI-Modells

HINWEIS: Die Ratten wurden vor der Operation 8 Stunden lang von Wasser und Nahrung beraubt, und die chirurgischen Instrumente wurden mit Hochtemperaturdampf sterilisiert. Das SCI-Modell wurde mit einer Modifikation von Allens Methode24 konstruiert.

  1. Setzen Sie die Ratte in die Anästhesie-Induktionsbox und leiten Sie sie mit Sauerstoff ein, der 4 % Isofluran (1 L/min) enthält, bis die Ratte vollständig betäubt ist.
  2. Nehmen Sie die Ratte aus der Induktionsbox und positionieren Sie Nase und Mund an die Anästhesiemaske. Stellen Sie die Isoflurankonzentration auf 1,5 % bis 2 % an, um die Anästhesie aufrechtzuerhalten.
    HINWEIS: Während des Rattenanästhesieprozesses ist es unerlässlich, den Zustand der Ratte genau zu überwachen. Wenn die Ratte flache und schnelle Atmung zeigt oder die Körpertemperatur sinkt, sollte die Isoflurankonzentration reduziert werden, um eine Übernarkose zu vermeiden.
  3. Rasieren Sie die Haare vom Rücken der Ratte, um den Operationsbereich vollständig freizulegen. Sterilisieren Sie den Operationsbereich mit Iodophor und Alkohol.
  4. Lokalisieren Sie den zehnten Thoraxwirbel (T10). Erzeugen Sie einen 2,5 cm großen mittleren Längsschnitt, der auf T10 zentriert ist.
  5. Verwenden Sie chirurgische Klingen, um die Rückenmuskeln zu trennen und so den Dornvorsatz sowie die an den Brustwirbeln angrenzenden Muskeln freizulegen. Entfernen Sie den Stachelvorgang und die Lamina von T10 mit einer hämostatischen Pinzette, wodurch etwa ein 10 mm großes Segment des Rückenmarks freigelegt wird.
  6. Die freiliegende Dura Mater (200 Kilodyne) werden mit einem modifizierten Allen-Gerät präzise getroffen, um eine moderate Prellung zu induzieren.
    HINWEIS: Der Erfolg des SCI-Modells ist gekennzeichnet durch Verstopfung und Ödem der Dura Mater an der Verletzungsstelle sowie durch die Schwanzspasmus-Schwung. Bei der Sham-Gruppe unterzogen sich die Ratten demselben chirurgischen Eingriff, einschließlich der Entfernung der Wirbelsäulenlamina, aber das Rückenmark wurde nicht beschädigt.
  7. Decken Sie die Dura Mater mit einem Gelatineschwamm ab und nähen Sie die Wunde Schicht für Schicht.
  8. Legen Sie die Ratte auf ein Heizkissen mit konstanter Temperatur, die auf 37 °C eingestellt ist, und beobachten Sie sie, bis sie wieder zu Bewusstsein kommt.
  9. Verabreichen Sie einmal täglich für drei Tage nach der Operation eine Penicillin-Natriuminjektion in den Muskel der Ratte, um eine Infektion zu verhindern. Zusätzlich sollten Sie der Ratte 2-3 Mal täglich eine Blasenmassage geben, um das Wasserlassen zu erleichtern.

3. EA-Behandlung

  1. Führen Sie die EA-Intervention 24 Stunden nach erfolgreicher Etablierung des SCI-Modells durch.
  2. Bereiten Sie Einweg-sterile Akupunkturnadeln vor (Durchmesser: 0,30 mm; Länge: 25 mm).
  3. Nach TCM-Theorie und klinischer Erfahrung wählen Sie Baihui (GV20), Dazhui (GV14) und Mingmen (GV4) Akupunkte für die EA-Behandlung aus.
  4. Bereite schwarze Seidenstrümpfe vor. Führe die Ratte, in die schwarzen Strümpfe zu bohren. Binde die Ratte mit einem Binder an ein Brett und befestige sie.
    HINWEIS: Das Seil sollte moderat festgezogen werden, um zu verhindern, dass die Ratte zu fest anbindet oder durch übermäßig lockere Bindungen entkommt.
  5. Lokalisieren Sie den GV20-Akupunkt im Zentrum des Parietalbeins, an der Schnittstelle der Mittellinie der Stirn und der Mitte der Linie, die die beiden Ohrspitzen verbindet. Lokalisieren Sie GV14 zwischen dem siebten Halswirbel (C7) und dem ersten Thoraxwirbel (T1) auf der mittleren Rückenlinie. Lokalisieren Sie GV4 in der Vertiefung unter dem Spinusfortsatz des zweiten Lendenwirbels (L2), auf der medianen Linie des Rückens (Abbildung 2).
  6. Desinfizieren Sie die Akupunkte mit medizinischem Iodophor und 75 % medizinischem Alkohol.
  7. Führen Sie die Nadeln schräg nach unten in einem Winkel von 15° bis zu einer Tiefe von 2–3 mm am GV20 ein. Führen Sie die Nadeln in die Spitzen von GV14 und GV4 in einem Winkel von 45° mit einer Tiefe von 5–7 mm (Abbildung 3A).
  8. Verbinden Sie die Nadeln mit einer Frequenz von 2 Hz und einer Intensität von 1 mA an das EA-Therapieapparat. Wählen Sie die Wellenform als kontinuierliche Welle aus (Abbildung 3B, C).
    HINWEIS: Diese EA-Intervention wurde täglich über 28 Tage durchgeführt, wobei jede Sitzung 20 Minuten dauerte. Ratten in den Sham- und Model-Gruppen erhielten keine Behandlung, wurden aber jeden Tag 20 Minuten auf die gleiche Weise wie in der EA-Gruppe bewegungsunfähig gemacht.

4. Bewertung der motorischen Funktion (Abbildung 4)

HINWEIS: Am 1., 7., 14., 21. und 28. Tag nach der Operation wurde die motorische Funktion der Ratten in jeder Gruppe anhand des Basso-, Beattie- und Bresnahan-(BBB)-Scores bewertet.

  1. Stellen Sie die Ratte an einen offenen und ruhigen Ort, um freie Bewegung zu ermöglichen.
  2. Beobachten Sie die Hintergliedmaßenbewegungen der Ratte und bewerten Sie sie nach der festgelegtenSkala 25.
    HINWEIS: Zwei Forscher, die die Gruppierung der Ratten nicht erkannten, vergaben unabhängig voneinander die Punktzahl, und die Endpunktzahl für jede Ratte wurde als Durchschnitt ihrer Bewertungen berechnet.

5. Durchführung des Y-Labyrinth-Experiments (Abbildung 5)

HINWEIS: Am ersten Tag nach der EA-Intervention (dem 29. Tag des Experiments) wurde das Y-Labyrinth-Experiment durchgeführt, einschließlich eines spontanen Wechseltests und eines neuartigen Arm-Explorationstests. Das experimentelle Verfahren des Y-Labyrinths ist in Abbildung 5A dargestellt.

  1. Stellen Sie die Versuchskäfige vor dem Test in die Versuchsumgebung und gewöhnen Sie sich für 30 Minuten daran.
  2. Reinigen Sie das Y-Labyrinth-Gerät mit Alkohol und stellen Sie zufällig die drei Arme des Y-Labyrinths als Startarm, Romanarm und anderen Arm ein.
  3. Während der Phase des spontanen Wechsels bedecken Sie den neuen Arm mit einer Schutzwandlung.
  4. Setze die Ratte vorsichtig ans Ende des Startarms und lass sie 10 Minuten lang frei in beiden Armen erkunden. Notieren Sie die Zeiten, Entfernung und Verweilzeit der Ratte, die in den Startarm und den anderen Arm eintritt.
  5. Entfernen Sie alle Ausscheidungen in der Kammer, nachdem jede Ratte den Test abgeschlossen hat. Reinigen Sie das Innere der Kammer mit 75 % medizinischem Alkohol und trocknen Sie es mit sauberem Gaze, um Interferenzen durch Gerüche früherer Testsubjekte zu vermeiden. Halten Sie die Innenräume während des gesamten Experiments ruhig.
  6. Entfernen Sie die Blende und führen Sie das neuartige Arm-Explorationsexperiment 4 Stunden nach dem spontanen Wechselexperiment durch.
  7. Platziere die Ratte vorsichtig ans Ende des Startarms und lasse sie 5 Minuten lang frei in den drei Armen erkunden.
  8. Notieren Sie die Reihenfolge, Anzahl der Eingänge, Entfernung und Verweilzeit der Ratte beim Betreten jedes Arms innerhalb von 5 Minuten.

6. Durchführung des neuen Objekterkennungs-(NOR)-Experiments (Abbildung 6)

HINWEIS: Am zweiten Tag nach der EA-Intervention (dem 30. Tag des Experiments) wurde das NOR-Experiment durchgeführt. Das experimentelle NOR-Verfahren ist in Abbildung 6A dargestellt.

  1. Bereiten Sie ein experimentelles Setup vor, bestehend aus einer Box von 70 cm × 60 cm × 30 cm, blauen kubischen Objekten und roten zylindrischen Objekten.
  2. Führe die Ratte in die Versuchsbox und lass sie 10 Minuten lang frei die Umgebung erkunden.
  3. Nachdem das obige Experiment für 1 Stunde abgeschlossen ist, platzieren Sie zwei identische kubische Objekte symmetrisch in zwei Ecken der Versuchsbox, etwa 10 cm von den Wänden entfernt.
  4. Führe die Ratte in die Versuchsbox ein, wobei ihr Kopf vom Objektblock weg ausgerichtet ist. Erlaube der Ratte, ihre Umgebung 10 Minuten lang frei zu erkunden, um sich mit dem Objektblock vertraut zu machen.
  5. Nach Abschluss des Versuchs jeder Ratte wird die Versuchsbox gründlich mit Alkohol abgewischt, um die Auswirkungen von Restgerüchen auf das Verhalten der nachfolgenden Ratten zu minimieren. Sobald die Kiste trocken ist, lege die nächste Ratte hinein.
  6. Nachdem das obige Experiment für 4 Stunden abgeschlossen ist, ersetzen Sie den rechten Objektblock durch ein zylindrisches Objekt.
  7. Führen Sie die Ratte mit dem Kopf von der Wand des Objektblocks weg in die Versuchsbox ein. Lass die Ratte 5 Minuten lang frei in der Box erkunden.
  8. Erfassen Sie die Zeit, die Sie mit der Erkundung der zylindrischen und kubischen Objekte verbracht haben, sowie die gesamte Entfernung und Zeit. Berechnen Sie den Präferenzindex mit folgender Formel: (Erkundungszeit für neue Objekte – Zeit der Erkundung alter Objekte)/(Erkundungszeit für neue Objekte + Zeit der Erkundung alter Objekte) × 100%.

7. Durchführung des Saccharose-Präferenztests

HINWEIS: Ein-Käfig-Wohnungen werden genutzt, um sozialen Wettbewerb um Wasser zu verhindern, was das Trinkverhalten beeinträchtigen könnte.

  1. Bereiten Sie eine Flasche mit 1% Saccharoselösung und eine Flasche mit Leitungswasser vor.
  2. Stellen Sie die Zuckerlösung und die Leitungswasserflaschen in den Käfig und tauschen Sie alle 12 Stunden die Positionen.
  3. Lassen Sie die Ratte sich 48 Stunden lang an das Zucker- und Leitungswasser gewöhnen. Beraube der Ratte anschließend 24 Stunden lang das Trinkwasser ohne Fasten.
  4. Bring eine Flasche Zuckerwasser und eine Flasche Leitungswasser zurück in den Käfig. Ändere die Position der Flaschen nach 2 Stunden und dokumentiere den Konsum jeder Flüssigkeit über einen Zeitraum von 4 Stunden. Berechnen Sie den Prozentsatz der Saccharosepräferenz mit der Formel: (Saccharoselösungsaufnahme/(Saccharoselösungsaufnahme + Wasseraufnahme) × 100 %).

8. HE-Färbung des Hippocampus

  1. Nach dem Verhaltenstest wird die Ratte mit 3 % Phenobarbitalnatrium (2,0 mL/kg) betäubt. Führen Sie eine kardiale Perfusion mit Paraformaldehyd durch. Nehmen Sie das Gehirngewebe und legen Sie es in Paraffin ein. Bereite Scheiben mit einer Dicke von 5 μm vor.
    VORSICHT: Paraformaldehyd ist ein Reizstoff und muss in einer gut belüfteten Umgebung behandelt werden.
  2. Deparaffinisieren Sie die Scheiben mit Xylol (I) und Xylen (II) für 10 Minuten nacheinander. Weichen Sie die Scheiben zur Dehydrierung in Alkoholgradienten ein, wobei jeder Gradient 3 Minuten hält. Zum Schluss tauchen Sie die Scheiben für 2 Minuten in destilliertes Wasser.
  3. Färbe die Scheiben 10 Minuten mit Hämatoxylinlösung. Spüle die überschüssige Lösung 1–3 Minuten mit Wasser ab. Tauchen Sie die Objektträger schnell 5–10 Sekunden lang in Salzsäure-Ethanol ein. Spülen Sie den Rutsch erneut mit Wasser ab.
  4. Übertragen Sie die Scheiben in eine schwache alkalische wässrige Lösung für den blauen Rückfluss. Spüle die Scheiben 1–3 Minuten mit Wasser ab. Die Scheiben 3–5 Minuten in 85 % Ethanol eintauchen.
  5. Färben Sie die Scheiben 3-5 Minuten mit Eosinlösung und dehydrieren Sie sie nach dem Waschen mit Gradientalkohol. Die Scheiben 5–10 Minuten in Xylol geben. Zum Schluss verwenden Sie neutrales Harz, um die Scheiben zu versiegeln.
  6. Untersuchen Sie die gefärbten Objektträger unter einem Lichtmikroskop mit 400× Vergrößerung.

9. ELISA-Analyse

  1. Nach dem Verhaltenstest wird die Ratte mit einer intraperitonealen Injektion von Pentobarbitalnatrium (200 mg/kg) eingeschläfert. Entnehmen Sie das Gewebe des Hippocampus.
  2. Wiegen Sie das Hippocampusgewebe und übertragen Sie es in ein vorgekühltes Homogenisierungsrohr.
  3. Homogenisiere die Gewebe auf Eis mit einem Gewebehomogenisierer.
  4. Zentrifugieren Sie das Homogenat bei 5000 × g für 10 Minuten bei 4 °C. Sammeln Sie das Supernatant und bestimmen Sie die gesamte Proteinkonzentration.
  5. Bestimmen Sie die Konzentration von IL-1β und IL-6 im Hippocampus mit ELISA-Kits.

10. Statistische Analyse

  1. Verwenden Sie eine geeignete Software zur statistischen Analyse. Drücken Sie die Daten als Mittelwert ± Standardabweichung aus.
  2. Führen Sie eine zweiseitige Varianzanalyse (ANOVA) mit wiederholten Messgrößen und dem Least Significant Difference (LSD)-Test durch, um Unterschiede zwischen den Gruppen in den BBB-Scoredaten zu analysieren.
  3. Führen Sie eine Einweg-ANOVA mit der LSD-Methode durch, um die Variabilität zwischen Gruppen in anderen Studien zu vergleichen, wenn die Daten normalverteilt oder homogen variiert waren. Andernfalls führen Sie den nichtparametrischen Test durch.
  4. Wenn die Daten einer Normalverteilung entsprechen, führen Sie eine Pearson-Korrelationsanalyse durch. Ansonsten führen Sie eine Spearman-Korrelationsanalyse durch.
  5. Betrachten Sie statistisch signifikante Unterschiede, wenn P < 0,05 liegt.

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Ergebnisse

EA verbessert die motorische Funktion von SCI-Ratten
Amersten Tag nach dem SCI-Betrieb wurden die BBB-Werte der Modellgruppe mit 0 verzeichnet, was auf die erfolgreiche Etablierung des SCI-Modells hinweist. Während der 1., 7., 14., 21. und 28. Tage nach Betrieb lagen die BBB-Werte der Modellgruppe deutlich niedriger als die der Sham-Gruppe (P < 0,01). Bemerkenswert ist, dass am 7., 1...

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Diskussion

SCI ist ein belastendes Ereignis, das schwere Traumata an der Physiologie und Psychologie der Patienten verursacht und nicht nur zu motorischen und sensorischen Störungen, sondern auch zu kognitiven Beeinträchtigungenführt. Wieberichtet 4, ist das Risiko eines kognitiven Abbaus nach SCI 13-mal höher als bei gesunden Personen. Die mittelalten und älteren Patienten mit SCI zeigen eine höhere Anfälligkeit für AD im Vergleich zu ihren Altersgen...

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Offenlegungen

Alle Autoren haben keine potenziellen Interessenkonflikte angegeben.

Danksagungen

Diese Forschung wurde von der National Natural Science Foundation of China (Nr. 82374593, 82305381), dem Shenzhen High-level Hospital Construction Fund (Nr. 24275G1001) sowie dem unterstützten Projekt des Changshu Medical and Health Science and Technology Plan (Nr. CSWSQ202302) sowie das unabhängige Forschungsprojekt für Postgraduierte an der Beijing University of Chinese Medicine (Nr. ZJKT2025016).

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
0,9 % KochsalzlösungBeijing suolaibao technology Co., Ltd.IN9000, P1022-10
4 % ParaformaldehydBeyotimeP0099
75 % medizinischer Alkohol, IodophorBeijing oubei biology science and technology Co., LtdOB40126-1, HX0098AZur Desinfektion verwendet
AkupunkturnadelnZhongyan Taihe Co., LtdZY500
Anästhesiemaschine für kleine TiereShanghai Yuyan Instruments Co., LtdABM
TierverhaltensanalysesystemBeijing zhong Shi di Chuang technology Co., LtdZS-XWT-II
ZentrifugalmaschineEppendorf, Deutschland5811FR080384
ElektroakupunkturgerätShantou Medical Instrument Factory Co., Ltd6805-DGebraucht  für die Behandlung der Elektroakupunktur
ELISA-BausätzeJianglai Biologie Wissenschaft und Technologie GmbH, GmbHJL18365, JL20896Zur Erkennung von IL-1- und IL-6-Spiegeln verwendet
GelatineschwammJiangxi Xiang'en Medical Technology Development Co., Ltd24092901
Hämatoxylinlösung, Eosin-LösungSigma-Aldrich03971Verwendet für HE-Flecken
Unendlicher Horizont-ImpaktorLexington, KY, Vereinigte StaatenIH-0400Verwendet zur Erstellung eines Rückenmarksverletzungsmodells
IsofluraneShenzhen Ruiwode Life Science and Technology Co., LtdR510-22-10
MikroskopOLYMP
PenicillinnatriumCoolaberCP8271-5g
PhenobarbitalnatriumSigma-AldrichP3761
SD-RattenSibeifu (Beijing) Biology Technology Co., LtdSCXK2019-0010
SPSSIBMVersion 26.0Statistiksoftware
SaccharoseBeijing Solarbio Technology Co., LtdS8271
XylolShanghai Aladdin Biochemical Technology Co., LtdX112050

Referenzen

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