$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Histon-posttranslationale Modifikationen (hPTMs) sind zentrale Regulatoren der Chromatinorganisation und Genexpression. Ihre Dysregulation ist mit Entwicklung, Krebs und Alterung verbunden. Obwohl Massenspektrometrie die bevorzugte Methode zur Untersuchung von hPTMs ist, sind die meisten Protokolle für Massenproben konzipiert und können die Zell-zu-Zell-Variabilität nicht auflösen. Die Erweiterung der Histon-PTM-Analyse auf Einzelzellniveau ist daher essenziell, aber technisch anspruchsvoll, da Histone gering in der Häufigkeit, Lysinreich und stark modifiziert sind.
Hier beschreiben wir einen automatisierten Single-Cell-Proteomik-Workflow für die Histon-PTM-Analyse mittels Nano-Flüssigkeitshandhabung. Das System ermöglicht eine nanoliter-basierte Verarbeitung einzelner Zellen mit minimaler Handhabung und hoher Reproduzierbarkeit. Der Arbeitsablauf beinhaltet die Verdauung mit ArgC Ultra-Protease, die an Arginin-Resten spaltet und die üblicherweise in der Histonproteomik erforderlichen Lysin-blockierenden Derivatisierungsschritte vermieden. Um einen quantitativen Vergleich zwischen den Bedingungen zu ermöglichen, wenden wir eine Zwei-Plex-Markierungsstrategie mit propionischem Anhydrid und seinem deuteraten Analogon propionanhydrid-d10 an. Diese Kombination aus automatisierter Probenvorbereitung, Isotopenmultiplexing und ArgC-Ultra-Verdauung führt zu einem schlanken und sensiblen Protokoll für die PTM-Analyse einzelzelliger Histon.
Die Methode ermöglicht die Untersuchung der Chromatinheterogenität und der Auswirkungen epigenetischer Störungen bei Einzelzellauflösung. Um den Arbeitsablauf zu demonstrieren, erzeugten wir Sphäroide aus HepG2/C3A-hepatozellulären Karzinomzellen und behandelten sie mit Natriumbutyrat, einem Histondeacetylaseinhibitor, der Hyperacetylierung induziert.