Routinemäßige intraoperative Fluoreszenzlymphographie mit Indocyanin Green während der Speiseröhre: Eine Machbarkeitsstudie

Zusammenfassung

Dieses Manuskript beschreibt eine intraoperative Fluoreszenzlymphographie unter Verwendung von Indokyaningrün während der Ösophagektomie, um den Thoraxgang (Kollateralen) sichtbar zu machen.

Zusammenfassung

Bei resectablem Speiseröhrenkrebs empfehlen die wichtigsten onkologischen Zentren eine transthorakale Ösophagektomie mit einer En-bloc-mediastinalen Lymphadenektomie, die die Entfernung des Thoraxkanals einschließt. Die Resektion des Thoraxkanals kann jedoch das Risiko eines postoperativen Chylus-Lecks aufgrund von Verletzungen am Hauptkanal, Kollateralen oder Seitenästen erhöhen. Die intraoperative, Echtzeit-Fluoreszenzlymphographie mit Indocyaningrün (ICG) hat sich als vielversprechende Technik erwiesen, um die Sichtbarkeit des Thoraxkanals, der Seitenäste und der Kollateralen während der Ösophagektomie zu verbessern. Diese Studie zielt darauf ab, die Machbarkeit einer routinemäßigen Fluoreszenzlymphographie mit ICG während der Ösophagektomie bei Krebs zu untersuchen, um den Thoraxgang und seine Kollateralen genau sichtbar zu machen.

Bei der Fluoreszenzlymphographie werden 2 ml ICG-Lösung (2,5 mg ICG/mL) beidseitig in den leistenalen Lymphknoten verabreicht, vor der thorakalen Phase der Ösophagektomie oder kurz vor dem Bauchverschluss in die mesenteriale Wurzel des Dünndarms. Eine Nahinfrarotkamera (NIR) wird verwendet, um die Fluoreszenzlymphographie zu beurteilen. Bei der Fluoreszenz-Visualisierung ist der Thoraxgang distal auf Höhe des Bogens der Azygosvene doppelt geschnitten und proximal 4–5 cm oberhalb des Zwerchfells geschnitten und blockübergreifend mit der Ösophagektomie durchschnitten. Zusätzliches Abschneiden oder eine Nahtligation erfolgt im Falle eines Chyle-Lecks des Hauptkanals oder aller verbleibenden Seitenrohre/Seitenzweige.

Bei 20 Patienten wurde eine Fluoreszenzlymphographie durchgeführt, die sich einer Speiseröhrenkrebsentfernung unterzogen. Der Thoraxgang wurde bei 18 Patienten (90 %) erfolgreich sichtbar gemacht. Bei 67 % der Patienten, bei denen eine erfolgreiche Fluoreszenzlymphographie durchgeführt wurde, führte dies zu einem Behandlungswechsel, zum Beispiel zum Einsatz zusätzlicher Clips. Die Fluoreszenzlymphographie mit ICG hilft, den Thoraxgang und seine Kollateralen sichtbar zu machen und eine intraoperative Chyle-Leckage zu erkennen, was oft zu einer Änderung der operativen Behandlung führt. Eine weitere Weiterentwicklung der Studie ist erforderlich, um die Technik zu verfeinern und ihre Anwendung zur Verhinderung postoperativer Chyle-Leckage zu bestätigen.

Einleitung

Die kurative Behandlung von resektablem Speiseröhrenkrebs umfasst in der Regel eine neoadjuvante Chemotherapie oder Chemoradiotherapie, gefolgt von einer Speiseröhrenentfernung¹. Eine häufig angewandte neoadjuvante Behandlungsstrategie besteht aus fünf Zyklen von Carboplatin und Paclitaxel mit gleichzeitiger Strahlentherapie (41,4 Gy in 23 Fraktionen), gefolgt von einer Ösophagektomie nach einem 6-10-Wochen-Intervall. Eine radikale transthorakale Ösophagektomie in unserem Zentrum umfasst routinemäßig eine en-bloc Resektion des Thoraxkanals für eine angemessene mediastinale Lymphadenektomie, was durch die anatomische Lage des Gangs zwischen der Azygosvene und der absteigenden thorakalen Aorta gerechtfertigt ist, die sowohl Lymphknoten als auch Lymphknotenmetastasen ^2,3,4 beherbergt.

Die Funktion des Thoraxkanals besteht darin, die Lymphe von der linken und rechten Körperseite unterhalb des Zwerchfells zurück in den Kreislauf zu transportieren, über die Verbindung der linken Subclaviavene und der venaris jugularis interna, der Vene subclavia oder der Vena jugularis^{interna 5,6}. Eine der Funktionen des Lymphsystems ist es, Chyle (lymphatische Flüssigkeit mit Chylomikronen aus dem Magen-Darm-Trakt, die Proteine, weiße Blutkörperchen (hauptsächlich Lymphozyten), fettlösliche Vitamine, Glukose und Verdauungsprodukte transportiert) vom Verdauungstrakt in das Kreislaufsystem zu transportieren.

Zwischen den Patienten gibt es große Unterschiede in der Anatomie des thorakalen Ganges. Die Häufigkeit physiologischer Varianten und das Vorhandensein mehrerer Seitenäste und Kollateralen machen den Gang anfällig für unbeabsichtigte Verletzungen während der Operation, was möglicherweise postoperativ zu Chyle-Leckage führen^{kann 7}. Der Thoraxgang ist während der Ösophagektomie generell anfällig für Traumata, und die Resektion des thorakalen Ganges wurde historisch mit einem höheren Risiko für postoperative Chylus-Leckage^assoziiert. Chyle-Leckage ist eine häufige Komplikation nach der Ösophagektomie, wobei die Häufigkeit in der Literatur weit von 2 % bis 21 % liegt, bedingt durch die Verwendung unterschiedlicher Definitionen sowie die große Vielfalt der chirurgischen Techniken und das Ausmaß der Lymphadenektomie ^9,10,11,12. Das Auftreten von Chyle-Leckage ist mit unangenehmen Ernährungseinschränkungen, verlängertem Thoraxdrainage, erneuten Interventionen und längerer Krankenhausaufnahme^{verbunden 11,12}. Kürzlich wurde festgestellt, dass Chyle-Leckage auch mit einer verringerten Gesamtüberlebensfähigkeit assoziiert ist, vermutlich infolge von Hyponatriämie, Hyperproteinämie, verminderter Ernährung und verminderter Immunfunktion¹³.

Um maximale onkologische Sicherheit mit einer ausreichenden mediastinalen Lymphadenektomie zu erreichen und unbeabsichtigte Verletzungen zu verhindern, die zu postoperativem Chylusleck führen, ist ausreichende Wachsamkeit während der Resektion des Thoraxkanals und seiner Kollateraläste unerlässlich. Der intraoperative Nachweis von Chyle-Lecks kann schwierig sein, da Patienten, die sich einer Ösophagektomie unterziehen, ausgehungert sind, was zu niedrigem Chylenfluss und einem kleineren Thoraxkanaldurchmesser führt. Daher wird Chyle-Leckage meist am zweiten oder dritten Tag postoperativ festgestellt, wenn die enterale Ernährung verstärkt wird. Indocyanin Green (ICG) ist ein ungiftiger Farbstoff, der stark an Proteine bindet, die durch das Lymphsystem transportiert werden und mit nahezu infrarotem Licht sichtbar gemacht werden kann. Dies ermöglicht eine Echtzeit-Verstärkung des Kanals mit fluoreszenzgesteuerter Kontrolle der Anatomie und der intraoperativen Erkennung jeglicher Verletzungen, die direkt behandelt werden können. Eine intraoperative verbesserte Erkennung des Thoraxkanals, der Seitenäste und Kollateralen sowie der Nachweis möglicher Chyle-Lecks durch eine Echtzeit-intraoperative Fluoreszenzlymphographie mit ICG können zu einer reduzierten postoperativen Chyle-Leckrate^führen.

Die Identifikation des Thoraxgangs mit ICG wurde zuvor als machbar, wirksam und nicht zeitaufwendig bei Reoperationen wegen Chyluslecks nach thorakoskopischer Lungen- und Speiseröhrenoperation, während der zervikalen Lymphadenektomie wegen Schilddrüsenkrebs oder Melanom sowie während minimalinvasiver Ösophagektomie ohne routinemäßige Thoraxgangresektion bei Plattenepithelkarzinom^erwiesen 15,16,17,18 . Ob die routinemäßige Anwendung während der Ösophagektomie mit Standardresektion des Thoraxkanals erfolgreich ist, ist noch unbekannt. Daher ist das Hauptziel in dieser Pilotstudie, die Machbarkeit einer routinemäßigen intraoperativen Fluoreszenzlymphographie während der Ösophagektomie mit der routinemäßigen Resektion des Thoraxkanals zu untersuchen, um den Thoraxgang, seine Kollateralen und anatomische Variationen sichtbar zu machen. Zweitens wird untersucht, ob diese Visualisierung zu einer Änderung des operativen Managements führt (z. B. zusätzliches Clipping als anschließende Behandlung für intraoperative Leckage). Das ultimative Ziel ist es, die Häufigkeit postoperativer Chyle-Leckage nach der Ösophagektomie sowie deren klinische Folgen (verlängerte Thoraxdrainage, längere Krankenhausaufenthalte, Notwendigkeit zusätzlicher Interventionen, diätetische Einschränkungen und verkürztes Gesamtüberleben) zu verringern.

Protokoll

Alle Patienten gaben schriftlich informierte Einwilligung zur Nutzung ihrer klinischen Daten gemäß dem institutionellen Ethics Committee für Medizinische Forschung und Humanforschung. Das Protokoll ist vollständig im Kontext einer totalen minimalinvasiven Speiseröhre verfasst. Die Abfolge der Protokollschritte hängt vom Verfahren ab: Ivor Lewis (zweistufige Ösophagektomie; zuerst abdominale Phase, gefolgt von thorakaler Phase) versus McKeown-Ösophagektomie (dreistufige Ösophagektomie; zuerst thorakale Phase, gefolgt von abdominaler und zervikaler Phase). Das Protokoll wird hauptsächlich im Kontext der Ivor-Lewis-Ösophagektomie verfasst; im HINWEIS nach Schritt 11 werden die Abfolge und zusätzliche Schritte für die McKeown-Ösophagektomie beschrieben. Bei der Ivor-Lewis-Ösophagektomie wird die ICG entweder am Ende der Bauchphase an der Basis des Dünndarmmesenteriums verabreicht oder der Ultraschall beidseitig in den leistenalen Lymphknoten geleitet, bevor die thorakale Phase eingeleitet wird. Bei der McKeown-Ösophagektomie wird die ICG zu Beginn der Operation beidseitig mit Ultraschall in den leistenalen Lymphknoten durchgeführt.

1. Patienten

1. Um für diese Studie in Frage zu kommen, stellen Sie sicher, dass ein Patient alle folgenden Einschlusskriterien erfüllt: Alter von 18 Jahren und älter; eine vollständige minimalinvasive oder roboterassistierte Ivor-Lewis- oder McKeown-Ösophagektomie; bei resectablem (cT1-4a, N0-3, M0) Speiseröhren- oder gastroösophagealen Übergangskarzinom.
2. Setzen Sie folgende Ausschlusskriterien fest: Allergie gegen ICG, Iodid oder Natriumiodid; Hyperthyreose oder gutartiger Schilddrüsentumor; Schilddrüsenuntersuchung mittels radioaktivem Jodid <1 Woche; Frühere Vorgeschichte einer inguinalen Lymphadenektomie.

2. Anästhesieprotokoll

1. Präoperativ wird der Patient unter Voll- und Regionalanästhesie gebracht, entweder mit einem thorakalen Epiduralanästhesie (Schritte 2.1.1-2.1.5) oder einem paravertebralen Katheter (Schritte 2.1.6-2.1.10).
   1. Führen Sie die Platzierung eines epiduralen Katheters auf Wirbelsäulenebene zwischen T5 und T8 mit der Widerstandsverlusttechnik durch.
   2. Innerhalb der ersten Stunde nach der Einleitung verabreichen Sie 5–10 ml Bupivacain mit 0,25 % Bolus epidural.
   3. Danach beginnen Sie mit kontinuierlicher epiduraler Analgesie mit Bupivacain 0,125 % und Sufentanil 0,5 μg/mL und dosieren Sie sie zum Komfort des Patienten.
   4. Geben Sie Fluchtmedikamente gemäß dem örtlichen Protokoll der Institution.
   5. Entfernen Sie den PDA-Katheter am dritten postoperativen Tag.
   6. Lokalisieren Sie den paravertebralen Raum auf beiden Seiten des Spinalkanals und setzen Sie den Katheter im rechten subpleuralen Raum auf Höhe von T4-5 unter direktem thorakoskopischem Sehen mit einer 18-19 G Tuohy-Nadel.
   7. Verabreichen Sie zu Beginn der Thorakoskopie einen Bolus von 20 ml Bupivacain 0,125 %.
   8. Setzen Sie die paravertebrale Analgesie mit Bupivacain mit 0,125 % 8–12 mL/h je nach Gewicht fort und dosieren Sie sie nach Komfort des Patienten.
   9. Zusätzlich wird eine patientenkontrollierte intravenöse Analgesie gemäß dem lokalen Protokoll des Zentrums angeboten.
   10. Entfernen Sie den paravertebralen Katheter am dritten postoperativen Tag.
2. Intubieren Sie den Patienten mit einer Doppel-Lumen-Endobronchialtube (Ivor Lewis) oder einer Ein-Lumen-Tube (Ivor Lewis) oder ohne (McKeown) Bronchialblocker.

3. Antibiotikaprotokoll

1. Verabreichen Sie prophylaktische Antibiotika 1 Stunde vor Beginn der Operation (1.000 mg Cefazolin und 500 mg Metronidazol intravenös; wiederholen Sie dies nach 6 Stunden Operation).

4. Bauchphase der Ösophagektomie

1. Positioniere den Patienten in der Rückenlage. Desinfizieren und sterile Belichtung.
2. Fügen Sie einen 12-mm-Trokar und eine Kamera supraumbilisch ein.
3. Erzeugen Sie Pneumoperitoneum mit einem maximalen Druck von 10–12 mmHg CO₂.
4. Setzen Sie einen 10-mm- und zwei 5-mm-Trokaren sowie einen Nathanson-Laparoskopischen Leberretraktor ein.
5. Öffne das hepatogastrische Band. Mobilisiere den ösophagogastrischen Übergang im Hiatus, einschließlich der linken und rechten parakardialen Lymphknotenstationen.
6. Durchführung einer Lymphadenektomie über das hepatogastrische Band, entlang des hepatoduodenalen Bandes, der arteria hepatica common arteria, der Milzarterie, der linken Magenarterie und rund um den Zöliakie-Stamm, mit Ligation der Vena coronaria und der linken Magenarterie.
7. Mobilisieren Sie die größere Krümmung und erhalten Sie die rechte gastroepiploische Arteria und Vene.
8. Ligatizieren Sie die linke gastroepiploische Arteria und Vene und schneiden Sie die kurzen Magenarterien durch. Skelettisieren Sie die kleinere Krümmung auf Höhe des Angulus und erhalten Sie die rechte Magenarterie.
9. Einen Magenkanal schaffen, indem man längs vom Angulus zum Fundus heftet, um eine 3–4 cm breite Magensonde zu schaffen. Übernähen Sie die Klammerstränge mit unterbrochenen, absorbierbaren, geflochtenen 3-0-Nähten.
10. Erstelle eine Fütterungs-Jejunostomie 20 cm distal von Treitz. Befestigen Sie die Jejunostomie mit einer Taschennaht mit absorbierbaren, geflochtenen 3-0-Nähten an der Bauchwand und mit nicht absorbierbaren geflochtenen Nähten an der Haut. Setzen Sie zwei Antirotationsnähte ein.
11. Teste die Magensonde, um keine Undichtigkeiten und gute Durchlässigkeit zu erkennen.
    HINWEIS: Im Fall einer Ivor-Lewis-Ösophagektomie mit mesenterieller Wurzelverabreichung wird das Protokoll mit den Abschnitten 5 und 6 fortgeführt; Abschnitt 7 wird übersprungen. Im Fall einer Ivor-Lewis-Ösophagektomie mit ICG-Verabreichung des inguinalen Lymphknotens wird Abschnitt 5 übersprungen und das Protokoll mit den Abschnitten 6 und 7 fortgesetzt.

5. Mesenterienwurzel-Verabreichung von ICG

1. Lösen Sie 25 mg ICG in 10 ml steriles Wasser auf, wodurch eine Lösung von 2,5 mg ICG pro ml entsteht.
2. Injizieren Sie 2 ml (5 mg) in die mesenteriale Wurzel auf Höhe der geplanten Jejunostomiestelle.

6. Ende der Bauchphase

1. Entfernen Sie die Trokaren und den Leberretraktor unter direkter Visualisierung.
2. Im Fall einer Ivor-Lewis-Ösophagektomie schließen Sie Wunden: Faszie mit absorbierbaren geflochtenen 0-Nähten und Haut mit intrakutan synthetischen, resorbierbaren Monofilamentnähten 4-0.

7. Inguinale Verabreichung des ICG

1. Lösen Sie 25 mg ICG in 10 ml steriles Wasser auf, wodurch eine Lösung von 2,5 mg ICG/ml entsteht. Teilen Sie dies in zwei 2-mL-Spritzen auf, wodurch zwei 2-mL-Spritzen mit jeweils 5 mg ICG erhalten.
2. Verwenden Sie Ultraschall als Leitfaden, um einen oberflächlichen leistenalen Lymphknoten beidseitig zu lokalisieren. Verabreichen Sie einen Bolus von 2 ml ICG-Lösung (2,5 mg ICG/mL, insgesamt 5 mg) per Kutan in einen rechten leistenalen und einen oberflächlichen Lymphknoten im linken Leisten unter Ultraschallleitung.

8. Thorakale Phase der Speiseröhre

1. Drehen Sie den Patienten in die Bauchlage. Desinfizieren und sterile Belichtung.
2. Offene Einführung auf Höhe der hinteren Achsellinie, also an der Spitze des Schulterblatts, mit einem 12-mm-Trokar und Kamera. Erzeugen Sie einen rechtsseitigen Pneumothorax mit einem maximalen CO2-Druck_von 6–8 mmHg.
3. Führe zwei 12-mm-Trokaren und einen 5-mm-Trokar entlang der Schulterblatt und einen weiteren distal (Interkostalraum 8 oder 9) ein.
4. Sezieren Sie das rechte Pulmonalband. Legen Sie das Perikard frei, von der rechten Lungenvene bis zur linken Lungenvene.
5. Analysieren Sie die Pause. Führen Sie eine Subcarinal-Lymphknotendissektion durch.
6. Isolieren und ligatieren Sie den Bogen der Azygosvene mit einem Gefäßklammer.
7. Führen Sie eine untere paratracheale Lymphknotendissektion an der linken und rechten Seite sowie im aortopulmonalen Fenster durch.

9. Resektion des Thoraxkanals

1. Verwenden Sie die Nahinfrarotkamera (NIR) zur Beurteilung der Fluoreszenzlymphographie. Bewerten Sie die fluoreszierende Verstärkung des Thoraxkanals durch die Pleura.
2. Öffnen Sie die mediastinale Pleura entlang der Azygovene. Isolieren Sie den Thoraxgang zirkumferentiel distal, auf Höhe des Bogens der Azygovene.
3. Bei der Fluoreszenzvisualisierung wird der Thoraxgang auf Höhe des Bogens der Azygosvene (Ivor Lewis) oder auf Höhe des Thoraxeinlaufs (McKeown) mit zwei Metallklammern doppelt geclippt. Schneiden Sie den Thoraxgang zwischen den Clips.
4. Im Rahmen der Fluoreszenz-Visualisierung wird der Thoraxgang en bloc mit der Speiseröhrenprobe vom Gewebe zwischen der Azygovene und der thorakalen absteigenden Aorta proximal bis zu mehreren Zentimetern oberhalb des Zwerchfells zerschnitten.
5. Bei der Fluoreszenzvisualisierung wird der Thoraxgang 4–5 cm über dem Membranniveau mit einem Metallclip befestigt. Schneiden Sie den Thoraxgang zwischen den Clips.
   HINWEIS: Der thorakale Gang ist nun en bloc mit dem Speiseröhrenexemplar zerschnitten, und die absteigende Aorta ist vollständig freigelegt.
6. Sowohl 10 als auch 30 Minuten nach Abschluss der Resektion des Thoraxkanals inspizieren Sie den Arbeitsbereich auf Chyle-Leckage. Wenn Chyle-Leckage festgestellt wird, schneiden Sie auch die undichten Kanäle/Kollateralgefäße ab.

10. Anastomose

1. Zieh die Magensonde in den Brustkorb.
2. Schneiden Sie die Speiseröhre auf Höhe des Bogens der Azygosvene. Luxiere das Exemplar in der Wunde.
3. Sezieren Sie die Probe vollständig vom Magenrohr mit dem linearen Tacker.
4. Setzen Sie den Amboss (25 oder 29 mm) mit einer Taschennaht in den Speiseröhrenstumpf ein. Messen Sie die Länge des Magenrohrs.
5. Stecken Sie den Tacker in das Magenrohr und durchbohren Sie mit der Tackerspitze die Magenleitungswand. Richte die Tackerteile aus und schließe den Tacker. Zünde den Tacker an und überprüfe die Donuts. Schließe das Magenrohr mit dem linearen Tacker.
6. Markiere das Exemplar. Bringen Sie die Probe zum Pathologen.
7. Übernähte die Tacker-Übergänge mit unterbrochener resorbierbarer geflochtener Naht 3:0.
8. Fixieren Sie die Spitze des Magenleitungs unterhalb der Pleuraflache. Führen Sie eine Omentoplastik durch.

11. Ende der Thorakoskopie

1. Am Ende der Thorakoskopie wird eine einzelne Silikon-27 French-Thoraxdrainage in die rechte Pleurahöhle zur Drainage von verbleibendem_CO2 und eine Jackson-Pratt-Drainage für den postoperativen Flüssigkeitsabfluss eingesetzt.
2. Entfernen Sie Trokaren bei direkter Visualisierung.
3. Geschlossene Wunden: Faszie mit absorbierbaren, geflochtenen 0-Nähten und Haut mit intrakutan synthetischen, resorbierbaren Monofilamentnähten 4-0.
   HINWEIS: Im Fall einer McKeown-Ösophagektomie wird nach Abschnitt 3 das Protokoll mit den Abschnitten 7, 8 und 9 fortgesetzt. Während der thorakalen Phase wird eine zusätzliche Lymphadenektomie der oberen paratrachealen Lymphknotenstationen durchgeführt. Anschließend wird das Protokoll mit den Abschnitten 11, 4 und 6 fortgeführt. Nach der Bauchphase wird das Protokoll mit Abschnitt 12 fortgesetzt, der nur für die McKeown-Ösophagektomie, den zervikalen Schnitt bei der Anastomose, gilt. Die Abschnitte 5 und 10 des Ivor-Lewis-Protokolls sind auf die McKeown-Speiseröhre nicht anwendbar.

12. Zervikaler Schnitt zur Anastomose (im Fall einer McKeown-Ösophagektomie)

1. Führen Sie einen linken Halswirbelschnitt durch. Mobilisieren Sie die Halsösophagus unter Berücksichtigung der Lage der rezivierenden Kehlkopfnerven auf beiden Seiten.
2. Teile die Speiseröhre. Führen Sie eine kleine Laparotomie durch. Wundschutz einsetzen. Luxiere das Exemplar in der Wunde.
3. Sezieren Sie die Probe vollständig vom Magenrohr mit dem linearen Tacker. Markiere das Exemplar. Bringen Sie die Probe zum Pathologen.
4. Nähen Sie die Kreuzungen der Klammerlinie mit unterbrochenen PDS 3-0-Nähten.
5. Führen Sie den Magenkanal in den Halswirbelbereich vor der Wirbelwinde. Erzeugen Sie eine Anastomose mit drei Tackern (modifizierte Collard-Technik). Setzen Sie eine Nasogastrische Sonde in die Magenleitung.
6. Geschlossene Halswunden: Musculus platysma mit absorbierbaren geflochtenen 3-0-Nähten und Haut mit intrakutan synthetischen, resorbierbaren Monofilament-4-0-Nähten.
7. Erstelle eine Fütterungs-Jejunostomie 20 cm distal von Treitz. Befestigen Sie die Jejunostomie mit einer Taschennaht mit absorbierbaren geflochtenen 3-0-Nähten an der Bauchwand und mit nicht resorbierbaren geflochtenen Nähten an der Haut.
8. Setzen Sie zwei Antirotationsnähte ein.
9. Teste die Magensonde, um keine Undichtigkeiten und gute Durchlässigkeit zu erkennen.
10. Geschlossene Bauchwunden: Faszie mit resorbierbaren geflochtenen 0-Nähten und Haut mit intrakutan synthetischen, resorbierbaren Monofilament-4-0-Nähten.

13. Postoperative Versorgung und Überwachung

1. Detubieren Sie den Patienten im Operationssaal.
2. Postoperativ wird der Patient für eine Nacht zur Überwachung in die PACU (Post Anesthesia Care Unit) gebracht.
3. In der PACU wird eine Röntgenaufnahme des Brustkorbs durchgeführt, um einen Pneumothorax zu überprüfen. Halten Sie den Thoraxschlauch bei -10 cmH 2O-Saugkraft bis nach dem Röntgenbild. Wenn kein Luftaustritt oder kein Pneumothorax vorhanden ist, setze den Brustdrain auf H₂O-Lock.
4. Entfernen Sie die Thoraxdrainage am postoperativen Tag 1, wenn keine Luft austritt und kein Pneumothorax vorhanden ist.
5. Entferne den JP-Drain auf der Station, wenn die Produktion eine klare Fläche hat und weniger als 200 mL/24 H beträgt.

Ergebnisse

An unserer Einrichtung ist die ICG-Fluoreszenzlymphographie der Standard der klinischen Behandlung während der Speiseröhrenentfernung bei Speiseröhrenkrebs, basierend auf veröffentlichten Evidenzen und etablierter Praxis in internationalen Expertenzentren. Routinemäßig unterziehen sich alle Patienten einer Ösophagektomie mit intraoperativer Fluoreszenzlymphographie und Thoraxgangresektion gemäß diesem Protokoll. Zum Zeitpunkt des Schreibens wurde bei 20 Patienten eine Fluoreszenzlymphogr...

Diskussion

Kritische Schritte im Protokoll sowie Änderungen und Fehlersuche der Technik

Einer der wichtigsten Schritte im Protokoll ist die erfolgreiche Injektion von ICG. Bei den ersten 10 Patienten war der Thoraxgang bei 20 % nicht sichtbar. Nach Diskussionen mit erfahrenen Chirurgen auf internationalen Konferenzen und im Lichte der verfügbaren Literatur wurde die ICG-Verabreichung mittels mesenteriale Injektion eingeführt¹⁹. An...

Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien

Name	Unternehmen	Katalognummer	Kommentare
spezifisch für ICG-Fluoreszenzlymphographie
Arietta V70 Ultraschall	Hitachi		Ultraschallgerät mit linearer Sonde
da Vinci Chirurgen-Konsole	Intuitive Chirurgie	SS999	Zur Steuerung des chirurgischen Roboters verwendet
da Vinci Vision Cart	Intuitive Chirurgie	VS999	Der Vision-Wagen beherbergt fortschrittliche Vision- und Energietechnologien und stellt Kommunikation über die Komponenten des da Vinci-Systems bereit
da Vinci Xi	Intuitive Chirurgie	K131861	Der chirurgische Roboter: 'Patientenseitenwagen'
da Vinci Xi Endoskop mit Kamera, 8 mm, 30 mm Durchmesser;	Intuitive Chirurgie	470027	Die Kamera des da Vinci-Roboters
Fluoreszenzkamerasystem (Stryker PINPOINT, 1688 AIM 4K Plattform, Optik im 30-Grad-Winkel mit Videokamera-Drape oder Spy-PHI mit Drape	Stryker
Freka Connect ENFit/ProNeo Spritze 60 mL	Freka	3044683	Enteralcreme verabreichen
Hem-o-lock große Clips			Zum Abschneiden des Thoraxkanals
Indocyanin grünes Farbpulver 25 mg flacon & nbsp;	Diagnostisch Grün	PICG0025NL	Indocyanin-grünes Pulver
Lendenwirbelnadeln Spinocan 20G x 3 1/2" 0,9 x 88 mm (2x)	BBraun	4509900-01	Um die Leistenknoten zu durchbohren
Metallklammern		ER320	Zum Abschneiden des Thoraxkanals
Nutridrink Compact 50 ml & nbspoon;	Nutricia	62173	Enteralcreme zur Anregung des Chylenflusses
Pajunk SonoPlex Nadel 22G x 50 mm (2x)	Pajunk	001185-74	Um die leistenalen Knoten zu durchbohren
Rote Ziehnadel			Um eine ICG-Lösung zu schaffen
Steriles Wasser zur Injektion 10 mL	Fresenius Kabi		Zum Auflösen von ICG-Pulver
Spritze 10 mL	BD	300912	Um eine ICG-Lösung zu schaffen
Spritzen 3 mL (2x)	BD	309658	Verwaltung der ICG-Lösung
Bietet Ösophagektomie allgemein
1000 mg Cefazolin
10 x 10 sterile Mullbinden
18-19 Gauche Ruohy-Nadel
1x Ethibond 2/0 (Korrektur. Jejunostomie)
1x PDS 2/0 SH (Faszie)
1x Vicryl 0 MH (Faszie)
1x Vicryl 0 UR-6 (Faszie)
1x Vicryl 0 UR-6 (Faszie)
1x Vicryl 3/0 SH (Jejunostomie)
1x Vicryl 3/0 SH (Subcutis)
1x Vicryl 3/0 SH-1 14 cm&nlffel;
1x V-Locke 23 cm (Anastomose)
2x Monocryl 4/0 (Skin)
2x Monocryl 4-0 (Skin)
2x Vicryl 2/0 SH (Fixierung 27 Abfluss)
3 x 5 mm Trokar
500 mg Metronidazol
5 x 12 mm Trokar
Blauer Endo-Haken
Bupivacain 0,125 %
Bupivacain 0,25 %
Kamera
Kapitel-27-Abfluss
Crush hechtingen Ethibond 0 EN-3
Diathermie
Einweg-Laparoskopie-Schere
Doppel-Lumen-Endobronchialröhrchen
Endo-Augen-HD-Optik
Endoloop
Endostitch
Epiduralkatheter
Gastroskopiesystem
Gastroskopieturm
Jejunostomie-Ernährungskatheter
Laparoskopischer Mini-Leberretraktor
Ligaclip 10 mm
Ligasure stumpfe Spitze
Mikroperlenmatratze
Paravertebraler Katheter
Angetriebener Echelon Rundtacker 25 und 29 mm
Motorisierter Echelon Flex 60 mm Tacker
Nachladen 60mm Echelon Weiß/Blau/Grün
Saug- und Rauchabweichungssystem
Sufentanil 0,5 mcg/mL
Verres-Nadel
Videoturm