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Alle in dieser Studie verwendeten Daten stammen aus öffentlich zugänglichen Datenbanken (TCGA, GEO und METABRIC). Es waren keine menschlichen Teilnehmer oder Tiere beteiligt; daher waren keine Genehmigung des Prüfungsausschusses und eine informierte Zustimmung erforderlich.
Datenerfassung und Vorverarbeitung
Genexpressionsdaten im Zusammenhang mit Tamoxifen-Resistenz wurden aus der Gene Expression Omnibus (GEO)-Datenbankabgerufen 10. Der GSE67916-Datensatz (Affymetrix Human Genome U133 Plus 2.0 Array) umfasst 18 Brustkrebszellproben: 8 unbehandelte Kontrollproben und 10 tamoxifenresistente Proben, die durch langfristige Medikamentenexposition erzeugt wurden. RNA-Sequenzierungsdaten und entsprechende klinische Nachbeobachtungsdaten für die Breast Invasive Carcinoma-Kohorte (TCGA-BRCA) wurden aus dem Cancer Genome Atlas (TCGA)11 heruntergeladen.
Rohe Microarray-CEL-Dateien wurden in R (Version 4.4.2) mit dem affy-Paket verarbeitet. Hintergrundkorrektur und Normalisierung wurden mit dem Robust Multi-array Average (RMA)-Algorithmus durchgeführt, einschließlich log2-Transformation und Quantilnormalisierung. Sonden-IDs wurden mithilfe von Plattform-Annotationsdateien auf Gensymbole abgebildet; Für Gene mit mehreren Sonden wurde der durchschnittliche Expressionswert verwendet. Für TCGA RNA-seq-Daten wurden Transkripte pro Million (TPM)-Werte log2-transformiert [log2(TPM + 1)]. Proben mit unvollständigen Überlebensinformationen oder fehlenden klinischen Variablen wurden ausgeschlossen.
Identifikation unterschiedlich exprimierter Gene
Die differenzielle Expression zwischen tamoxifenresistenten und Kontrollproben wurde mit dem Limma-R-Paket12 mit empirischer Bayes-Moderation bewertet. Gene mit |log2-facher Veränderung| > 1 und ein angepasster P-Wert < 0,05 (Benjamini–Hochberg FDR) wurden als differentiell exprimierte Gene (DEGs) definiert.
Funktionale Anreicherungsanalyse
Gene Ontology (GO)13und die Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)14 Analysen wurden mit dem clusterProfiler15 R-Paket durchgeführt. Zu den GO-Kategorien gehörten biologischer Prozess (BP), zelluläre Komponente (CC) und molekulare Funktion (MF). Bereinigte P-Werte < 0,05 wurden als signifikant angesehen.
Feature-Auswahl basierend auf maschinellem Lernen
Drei Machine-Learning-Algorithmen wurden angewandt, um Hub-Gene zu identifizieren: (1) LASSO-Regression16 (glmnet-Paket) mit 10-facher Kreuzvalidierung zur Auswahl des optimalen Strafparameters (lambda.min); (2) Unterstützung der vektormaschinell-rekursiven Merkmalselimination (SVM-RFE)17 (e1071-Gehäuse) mit fünffacher Kreuzvalidierung, um die minimale Gen-Teilmenge mit dem geringsten Klassifikationsfehler zu identifizieren; (3) Random Forest (RF)18 (randomForest-Paket) mit 500 Bäumen (ntree = 500); Gene wurden von MeanDecreaseGini bewertet. Gene, die mit allen drei Methoden identifiziert wurden, wurden als Hubgene definiert.
Konstruktion des prognostischen Risikomodells
Ein multigen-prognostisches Risikomodell wurde unter Verwendung von TCGA-BRCA-Genexpressions- und Überlebensdaten erstellt. Überlebensassoziierte Gene wurden mittels univariater Cox-Regression gescreent, gefolgt von multivariater Cox-Regression, um die endgültige Signatur zu entwickeln. Die Risiko-Score-Formel wurde berechnet wie folgt: Risiko-Score = (0,01297 × CAMK1D) + (0,03021 × CHAC1) + (0,02018 × KIAA0513) + (0,00647 × MED13) + (0,00108 × NDRG1) + (0,04551 × STXBP5). Die Patienten wurden basierend auf dem Median-Risikowert in Hoch- und Niedrigrisikogruppen eingeteilt.
Bewertung und Validierung des prognostischen Modells
Die Überlebensunterschiede zwischen den Gruppen wurden mit der Kaplan–Meier-Analyse und dem Log-Rank-Test bewertet. Die prädiktive Leistung wurde mittels ROC-Kurven (pROC-Paket) und zeitabhängiger ROC-Analyse (timeROC-Paket) bewertet. Ein Nomogramm, das Risikoscores und klinische Variablen integriert, wurde mit dem rms-Paket erstellt. Kalibrierungskurven bewerteten die Übereinstimmung zwischen vorhergesagten und beobachteten Überlebenswahrscheinlichkeiten. Die externe Validierung erfolgte in der unabhängigen Kohorte19 des Molecular Taxonomy of Breast Cancer International Consortium (METABRIC) mit derselben Formel und Grenzwert.
Immuninfiltrationsanalyse
Die Infiltration von Immunzellen wurde mit CIBERSORT20 mit 1.000 Permutationen auf Basis von TCGA-Daten geschätzt. Proben mit P < 0,05 waren enthalten. Unterschiede in der Zusammensetzung von Immunzellen zwischen Hoch- und Niedrigrisikogruppen wurden mit dem Wilcoxon-Rangsummentest bewertet, und Korrelationen zwischen Hub-Genexpression und Immunzellenhäufigkeit wurden anhand der Spearman-Rangkorrelation bewertet.
Statistische Analyse
Alle Analysen wurden in R durchgeführt. Kontinuierliche Variablen wurden mit dem Wilcoxon-Rangsummentest verglichen und kategoriale Variablen mit dem Chi-Quadrat-Test. Zweiseitiges P < 0,05 wurde als statistisch signifikant angesehen.