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Bei jeder Handhabung oder Übertragung einer Probe kann es zu Probenverlusten kommen, was genaue Berechnungen der Konzentration erschwert.
Um die Genauigkeit zu gewährleisten, müssen die Auswirkungen von Probenverlusten durch eine sorgfältige Probenvorbereitung und durch Begrenzung der Anzahl der Probenhandhabungs- und Transferschritte minimiert werden. Probenverluste können jedoch auch aufgrund systematischer Fehler auftreten, wie z. B. unvollständige Probenmanipulation, Matrixeffekte und Variationen im Analyseverfahren.
Diese Verlustquellen können erklärt werden, indem man der interessierenden Verbindung eine bekannte Konzentration einer ähnlichen, aber nicht identischen Art hinzufügt. Dies wird als interner Standard bezeichnet. Alle Probenverluste, die am internen Standard auftreten, sollten für den Analyten ähnlich sein, damit die Konzentration genau berechnet werden kann.
In diesem Video wird die Verwendung eines internen Standards und einer geeigneten Labortechnik veranschaulicht, um Probenverluste bei der Bestimmung der Konzentration einer Unbekannten zu berücksichtigen.
Ein interner Standard ist eine Substanz, die während einer Analyse in einer bekannten Menge zu Standards, Proben und Leerproben hinzugefügt wird.
In der Chromatographie und Spektroskopie wird das Verhältnis des Signals für den internen Standard und den Analyten berechnet. Dieses Verhältnis, der sogenannte Ansprechfaktor, ist proportional zum Verhältnis der Analyt- und der Standardkonzentration.
Der Ansprechfaktor R kann durch die folgende Gleichung ausgedrückt werden, wobei A die analytischen Signale der Probe und des internen Standards und C die Konzentrationen der Probe und des internen Standards darstellt.
Ein interner Standard kann sowohl systematische als auch zufällige Fehler kompensieren. Zum Beispiel sind zufällige Fehler, wie z. B. Inkonsistenzen bei der Messung einer Probe, sowohl für den internen Standard als auch für den Analyten gleich. Daher ändert sich das Verhältnis ihrer Signale nicht.
Bei systematischen Fehlern, wie z. B. Matrixeffekten in Lösung, wird das Verhältnis nicht beeinflusst, solange der Matrixeffekt sowohl für den Standard als auch für den Analyten gleich ist.
Interne Standards bieten zwar einen großen Nutzen, aber es kann schwierig sein, eine geeignete auszuwählen. Ein interner Standard muss ein Signal haben, das dem Analyten ähnlich, aber nicht identisch ist. Es kann auch die Messung des Analyten in keiner Weise beeinflussen.
Schließlich muss die Konzentration gut bekannt sein. Dies wird erreicht, indem sichergestellt wird, dass der interne Standard nicht nativ in der Stichprobe vorhanden ist. Somit ist die einzige Quelle dafür in Lösung die bekannte zugesetzte Konzentration.
Im folgenden Experiment wird die Konzentration von Koffein in einer unbekannten Probe durch Gaschromatographie bestimmt.
Dies wird erreicht, indem eine Kalibrierungskurve unter Verwendung bekannter Koffeinlösungen mit Adenin als internem Standard erstellt wird. Die Steigung der Kalibrierkurve ist gleich dem Ansprechfaktor.
Sobald der Ansprechfaktor bekannt ist, kann die Konzentration des Unbekannten aus seinem gemessenen Chromatogramm-Flächenverhältnis berechnet werden.
Nachdem Sie nun die Grundlagen der internen Standards verstanden haben, werfen wir einen Blick auf das Vorgehen.
Zu Beginn des Verfahrens Wiegen Sie 100 mg des internen Standards Adenin genau in ein sauberes Becherglas.
Lösen Sie es dann in etwa 20 ml Dimethylsulfoxid auf und mischen Sie die Lösung.
Sobald sich das Adenin aufgelöst hat, gießen Sie die Lösung in einen 50-ml-Messkolben.
Spülen Sie das Becherglas und den Rührstab mit 10 ml DMSO aus und gießen Sie die Spülung in den Kolben. Wiederholen Sie diese Spülung zweimal, um einen ordnungsgemäßen Lösungstransfer zu gewährleisten. Füllen Sie bis zur Kalibriermarkierung, wodurch ein interner Standard mit einer Konzentration von 2 mg/ml entsteht.
Wiegen Sie anschließend 100 mg Koffein in ein Becherglas, um eine Stammlösung herzustellen. Löse das Koffein mit einer kleinen Menge Methanol auf. Verwenden Sie dann 3 Spülgänge, um diese Lösung in einen frischen 25-ml-Messkolben zu übertragen. Dies ist die 4 mg/ml-Stammlösung. Verwenden Sie es, um 3 Koffeinstandards herzustellen.
Geben Sie anschließend 0,2 ml des internen Standards, Adenin, in jeden Kolben. Füllen Sie jedes bis zum endgültigen Volumen mit Methanol. Übertragen Sie jede Lösung in ein Probenfläschchen.
Lassen Sie jeden Koffeinstandard durch einen Gaschromatographen laufen. Berechnen Sie das Verhältnis der Peakbereiche für den Koffein- zum Adeninstandard.
Wiegen Sie zunächst 2 g Kaffee in ein 100-ml-Becherglas und notieren Sie das Gewicht.
Fügen Sie anschließend 20 ml Methanol hinzu, um das Koffein aus dem Kaffee zu extrahieren. Die Lösung 20 Min. rühren lassen.
Mit einem B?chner Trichter den Kaffeesatz herausfiltrieren. Spülen Sie das Becherglas mit einer kleinen Menge Methanol und gießen Sie diese Spülung in den Trichter. Wiederholen Sie das Spülen zweimal.
Messen Sie das Endvolumen des Filtrats; es sollte ungefähr 35 ml betragen.
Um die Probe für die Analyse vorzubereiten, geben Sie 1 ml des Kaffeeextrakts in ein Probenfläschchen. Fügen Sie dann 0,2 ml des internen Adeninstandards hinzu und stellen Sie das Fläschchen in das Autosampler-Rack des Instruments.
Führen Sie eine gaschromatographische Analyse der Probe durch und stellen Sie sicher, dass die Bedingungen so sind, dass Koffein und Adenin getrennt sind.
Berechnen Sie nach Abschluss der Analyse die Peakfläche sowohl für den internen Standard als auch für den Analyten.
Sobald alle Proben analysiert wurden, kann die Standardkalibrierungskurve für die Koffein/Adenin-Lösungen bestimmt werden, indem die Verhältnisse der Peakbereiche gegenüber den Verhältnissen der Konzentrationen aufgetragen werden. Die Steigung dieser Linie, die den Antwortfaktor darstellt, betrug 1,8.
Als nächstes werden die GC-Daten aus der extrahierten Kaffeeprobe analysiert. Das Verhältnis der Peakflächen wurde mit 1,78 berechnet. Unter Verwendung des Ansprechfaktors und der bekannten Konzentration des internen Standards Adenin wurde die Koffeinkonzentration in der unbekannten Probe auf 0,33 mg/ml berechnet.
Viele verschiedene Arten von Reaktionen verschiedener wissenschaftlicher Jünger verwenden interne Standards, um die Auswirkungen von Fehlern und Probenverlusten zu minimieren.
Die Auswirkungen von Probenverlusten, die während der Probenvorbereitung auftreten, können durch interne Standards minimiert werden, wobei das Konzentrationsverhältnis nahezu konstant bleibt.
In diesem Beispiel wurden bioaktive Lipide aus lysierten Zellen mit Hilfe eines Flüssig-Flüssig-Extraktionsverfahrens extrahiert. Zu Beginn der Extraktion wurden interne Standards für stabile Isotope hinzugefügt, um Fehler bei der Probenvorbereitung zu berücksichtigen.
Interne Standards waren nicht nur für die Herstellung der bioaktiven Lipide, sondern auch für die Analyse entscheidend. Die Lipide wurden mittels Hochleistungsflüssigkeitschromatographie getrennt und mittels Massenspektrometrie analysiert.
In der Spektroskopie können interne Standards helfen, zufällige Fehler aufgrund von Änderungen der Lichtquellenintensität zu korrigieren. Wenn eine Lampe oder eine andere Lichtquelle eine variable Leistung hat, wirkt sich dies auf die Absorption und damit auf die Emission einer Probe aus. Das Verhältnis eines internen Standards zu einem Analyten bleibt jedoch konstant, auch wenn die Lichtquelle dies nicht tut.
In der Chromatographie ist eine der größten Fehlerquellen die Injektion. Autosampler helfen, dies zu minimieren, aber der Fehler kann immer noch 1,2 % relative Standardabweichung betragen.
In diesem Beispiel wurden Dampfstandards, die einen internen Standard enthielten, mittels Gaschromatographie analysiert, um eine Kalibrierkurve zu erstellen. Sobald dies abgeschlossen war, konnte die unbekannte Probe gemessen und die Verluste aufgrund der Volatilität der Probe berücksichtigt werden.
Sie haben gerade die Einführung von JoVE in interne Standards gesehen. Sie sollten jetzt die Best Practices zur Minimierung von Probenverlusten, internen Standards und Reaktionsfaktoren verstehen.
Danke fürs Zuschauen!