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Die Mikroskopie ist eine Methode, die häufig verwendet wird, um die detaillierte Struktur von Proben abzubilden. Optische Mikroskope, die Licht durch eine Reihe von Linsen fokussieren, um Proben zu vergrößern, sind seit Jahrhunderten im Einsatz, wobei das erste zusammengesetzte Mikroskop im 17. Jahrhundert auf den Markt kam. In dieser Zeit war Antonie van Leeuwenhoek die erste, die Bakterien, Hefen, rote Blutkörperchen und die Durchblutung der Kapillargefäße beobachtete, bedeutende wissenschaftliche Beiträge leistete und den Weg für mikroskopische Fortschritte ebnete.
Optische Mikroskope werden auch heute noch in der Forschung und im klinischen Umfeld für die medizinische Diagnose eingesetzt. In den letzten 60 Jahren hat sich jedoch die konfokale Mikroskopie entwickelt, bei der die Probe durch eine Lochblende beleuchtet wird, um die optische Auflösung und den Kontrast zu erhöhen.
In diesem Video werden die Funktionsprinzipien der optischen und konfokalen Mikroskopie veranschaulicht, gezeigt, wie hochauflösende Bilder analysiert werden, und verschiedene Anwendungen der Mikroskopie im Bereich der Biomedizintechnik diskutiert.
Beginnen wir mit der Erörterung der Grundlagen der konfokalen Mikroskopie. Die optische Mikroskopie basiert auf dem Prinzip, Licht auf eine Probe zu fokussieren, um ihre detaillierte Struktur abzubilden. Ein Mikroskop besteht aus zwei Vergrößerungskomponenten; die Objektivlinse, die ein reales Bild eines Objekts fokussiert, und das Okular, das ein vergrößertes virtuelles Bild fokussiert, bevor es vom Auge empfangen wird. Die Gesamtvergrößerung wird durch Multiplikation der Vergrößerungen dieser beiden Linsen erreicht.
Die Fokussierung des Lichts ergibt eine bestimmte Fokusebene, bei der sich die Vergrößerung und das Lampenlicht alle am selben Punkt treffen, was die beste Auflösung im Bild ergibt. Außerhalb der Brennebene ist der Beleuchtungsbereich größer und Lichtstrahlen werden von anderen Teilen der Probe interferiert, wodurch das Bild verschwommen wird. Während Lichtmikroskope die gesamte Probe im Blickfeld beleuchten und abbilden, nutzt ein konfokales Mikroskop ein Nadelloch zwischen dem Probentisch und dem Detektor, so dass jeweils nur ein kleiner Lichtstrahl in einer schmalen Tiefe fokussiert wird.
Folglich ist der einzige sichtbare Bereich der Probe der Fokuspunkt, der ein gut aufgelöstes Bild liefert. Bei höherer Auflösung wird jedoch jeweils nur ein kleiner Teil dieser Probe abgebildet. Durch Verschieben der Probe in der X-Y-Ebene kann ein Rasterscan ihrer Oberfläche durchgeführt werden. Für jeden Punkt des Scans wird der Fokus optimiert, indem die Z-Höhe angepasst wird, um auf verschiedene Fokusebenen zuzugreifen. Dies gewährleistet eine maximale Punkt-für-Punkt-Auflösung der Bildprobe.
Lassen Sie uns nun diese Prinzipien der Mikroskopie und Bildauflösung verwenden, um ein Mäusegehirn sowohl mit einem konfokalen als auch mit einem optischen Mikroskop abzubilden.
Nachdem wir die wichtigsten Prinzipien der Mikroskopie besprochen haben, führen wir nun eine Messung mit einem Konfokalmikroskop durch. Schalten Sie zunächst das Mikroskop am Computerarbeitsplatz ein. Laden Sie dann das Sample auf den Tisch und zentrieren Sie es unter der Linse. Öffnen Sie nun die Imaging-Software und wählen Sie Neuen Auftrag erstellen. Gehen Sie zur Spalte Topographie und wählen Sie die Schaltfläche Assistent. Wählen Sie die niedrigste Vergrößerung, die für dieses Mikroskop 2,5x beträgt. Verwenden Sie dann den 3D-Mikroskop-Manipulator, um die Z-Position der Probe anzupassen und die Probe in den Fokus zu bringen. Drücken Sie den Knopf an der Seite, so dass an den Rändern ein blaues Licht erscheint. Dies ermöglicht eine feinere Z-Bewegung und einen feineren Fokus. Nehmen Sie nun ein Übersichtsbild auf.
Erhöhen Sie langsam die Objektivvergrößerung und passen Sie die Lichtintensität und den Fokus an, um die gewünschte Vergrößerung zu erhalten. Verwenden Sie den 3D-Manipulator in X- und Y-Richtung, um verschiedene interessante Bereiche auf der Probe auszuwählen. Sobald ein Bild mit geringer Vergrößerung aufgenommen wurde, drücken Sie auf Weiter, um einen Referenzpunkt zu setzen. Verwenden Sie entweder den Standardreferenzpunkt oder geben Sie einen neuen Referenzpunkt in der Ecke des Samples an und drücken Sie dann auf "Weiter". Ändern Sie nun nach und nach das Objektiv auf die gewünschte Auflösung für die Probe. Für diese Probe wird ein 20-fach-Objektiv verwendet, um die Zellen im Gehirngewebe der Maus sichtbar zu machen. Stellen Sie sicher, dass Platz vorhanden ist, um den Arbeitsabstand zu verringern.
Um den Abstand zum Sammeln von Schichten zu definieren, gehen Sie zunächst auf die Seite mit der Messbereichsdefinition und verwenden Sie den 3D-Manipulator, um die Probe schließlich in Z-Richtung anzupassen. Klicken Sie auf "Zuletzt einstellen", wenn der obere Teil des Samples scharf ist, und auf "Zuerst festlegen", wenn der untere Teil des Samples scharf ist. Stellen Sie sicher, dass die Anzahl der berechneten Slices 1.000 nicht überschreitet, da sonst das Programm fehlschlägt. Vergewissern Sie sich, dass keine roten Pixel vorhanden sind, was darauf hinweist, dass die Lichtintensität übersättigt ist.
Drücken Sie abschließend auf Fertig, um das Tomographiebild aufzunehmen. Wenn die Tomographie-Software geöffnet wird, wählen Sie die Registerkarte "Studien", um die Daten in 3D anzuzeigen und 2D- und 3D-Messungen durchzuführen.
Nehmen wir nun ein Bild mit einem digitalen optischen Mikroskop auf. Schalten Sie zunächst das Mikroskop ein und öffnen Sie die Bildgebungssoftware. Laden Sie dann das Sample auf den Tisch und zentrieren Sie es unter der Linse. Wenn die Bildgebungssoftware geöffnet ist, wählen Sie einen Auftrag aus der Liste der Vorlagen aus oder wählen Sie die kostenlose Untersuchung. Erfassen Sie dann ein Übersichtsbild, das die gesamte Bühne zeigt. Verwenden Sie den Controller, um den Fokus und die Bildposition zu ändern.
Sobald die Erfassung abgeschlossen ist, platzieren Sie ein Koordinatensystem auf dem Bild. Das Standardkoordinatensystem befindet sich in der Mitte der Phase. Für mehr Flexibilität können die Koordinaten manuell geändert werden.
Benennen Sie dann das Beispiel und wählen Sie die Kamerataste aus. Drücken Sie die Live-Taste, während Sie durch das Sample navigieren, und verschieben Sie den Fokus nach unten, bis das Sample deutlich scharf ist. Verwenden Sie bei Bedarf die Registerkarte Beleuchtung und Blende, um die Beleuchtung anzupassen. Nehmen Sie dann ein Bild der Probe auf.
Verwenden Sie die Werkzeuge unter dem Bildoptimierungsbedienfeld, z. B. die Neigung des Objektivs, die Beleuchtungsstärke des Samples sowie die Helligkeit und den Kontrast im Bild, um das Bild auf die gewünschte Schärfe zu optimieren. Tippen Sie nun auf das Bleistiftwerkzeug, um Messungen durchzuführen. Verwenden Sie die Abstands- und Flächenwerkzeuge, um die Größe der Zellen in der Stichprobe zu messen.
Gehen Sie abschließend zur Registerkarte Ergebnis-Workflow und konfigurieren Sie das Layout des Berichts. Tippen Sie auf die Schaltfläche Speichern, um den Auftrag für die weitere Analyse zu speichern.
Lassen Sie uns nun die Bilder eines Mäusegehirns analysieren, die mit konfokalen und digitalen optischen Mikroskopen aufgenommen wurden. Das konfokale Bild mit 50-facher Vergrößerung ist hochauflösend und bietet eine Tiefenschärfe mit unterschiedlichen Informationstiefen.
Auf der tomographischen Karte liegt die Höhe dieser Probe zwischen einem und neun Mikrometern. Eigenschaften wie die Amplitude, das Rauheitsprofil und die Kurvenparameter können weiter analysiert werden. Der gesamte Objektträger des geschnittenen Hirngewebes kann jedoch mit einem digital-optischen Mikroskop abgebildet werden.
Das Heranzoomen in einen Ausschnitt zeigt mehr Details der Probe, jedoch mit einer viel geringeren Auflösung als mit einem konfokalen Mikroskop. Diese Probe wurde bei 300-facher Vergrößerung gewonnen. Spezielle Software bietet Werkzeuge zum Messen von Querschnittsabmessungen, wie z. B. dem Durchmesser, sowie zur Berechnung der Innenfläche des Querschnitts.
Digitale, optische und konfokale Mikroskopie sind Standardwerkzeuge, die in verschiedenen biomedizinischen Anwendungen eingesetzt werden. Die Scanning-Laser-Ophthalmoskopie (SLO) ist ein nicht-invasives bildgebendes Verfahren, das in der klinischen Augenheilkunde häufig zur Diagnose und Überwachung der Entwicklung von Netzhauterkrankungen eingesetzt wird.
SLO erzeugt kontrastreiche stereoskopische Bilder, die die Mikroglia sichtbar machen. Die residenten Makrophagen der Netzhaut, die an mehreren Netzhauterkrankungen beteiligt sind. Die konfokale Mikroskopie wird auch in der Bildgebung lebender Zellen eingesetzt, die es Forschern ermöglicht, mikroskopische biologische Zellfunktionen in Echtzeit zu visualisieren.
Diese Technik wird unter anderem zur Untersuchung der Zellmigration und -proliferation sowie der Proteindynamik eingesetzt. Hier wurden Transmembranrezeptoren und Lysosomen mit Fluoreszenzfarbstoffen markiert und ihre Kolokalisation mittels Zeitrafferbildgebung analysiert, um die Rezeptorinternalisierung zu untersuchen.
Sie haben gerade die Einführung von JoVE in die digitale, optische und konfokale Mikroskopie gesehen. Sie sollten nun die Prinzipien der Mikroskopie und Bildauflösung verstehen, wie man sowohl optische als auch konfokale Mikroskope bedient, um biologische Proben abzubilden, und verschiedene Anwendungen ihrer Verwendung im Bereich der Biomedizintechnik.
Danke fürs Zuschauen.