Name: Spinal Cord Elektrophysiologie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-18T16:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 59 s
Description: Lernen Sie die ventrale Laminektomie zur Isolierung des neonatalen Mausrückenmarks für elektrophysiologische Studien. Diese Methode ermöglicht die Aufzeichnung neuronaler Aktivität mit Elektroden.

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Samuel L. Pfaff ist ein Professor in der Genexpression Laboratories am Salk Institute for Biological Studies und ein Investigator in der Howard Hughes Medical Institute. Diese Arbeit wurde von der Christopher and Dana Reeve Foundation unterstützt. Joe Belcovson, Kent Schnoeker und Mike Sullivan in Multimedia-Ressourcen am Salk Institute unterstützte mit der Fotografie und Bearbeitung.

1. Bereiten künstlichen Liquor (aCSF) 1. Wir bereiten Sie zunächst einen 2 l einer 10-fach Bestand aCSF ohne Magnesium oder Calcium. Reagenzien in millimolaren aufgeführt. Katalog-Nummern beziehen sich auf Sigma / Aldrich. <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="4"> 2 Liter 10X aCSF (ohne Mg oder Ca) </td></tr><tr><td> Reagens </td><td> mM </td><td> g/2L </td><td> Katalog </td></tr><tr><td> KCl </td><td> 40 </td><td> 5,96 </td><td> P-9333 </td></tr><tr><td> NaCl </td><td> 1280 </td><td> 149,61 </td><td> S-7653 </td></tr><tr><td> NaHCO 3 </td><td> 210 </td><td> 35,28 </td><td> S-6297 </td></tr><tr><td> NaH 2 PO 4 </td><td> 5 </td><td> 1,38 </td><td> S-9638 </td></tr><tr><td> Glucose </td><td> 300 </td><td> 108,12 </td><td> D-9434 </td></tr><tr><td colspan="4"> Destilliertem Wasser auf 2L </td></tr></tbody></table> Außerdem bereiten wir 1M Lösungen von MgSO 4 und CaCl 2 in 50 mL Wasser, um Anpassungen in Molarität von Experiment zu Experiment zu ermöglichen und zu gewährleisten, das Kalzium in Lösung bleibt. <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="4"> 1M Calcium und Magnesium Stocks </td></tr><tr><td> Reagens </td><td> M </td><td> g/50mL </td><td> Katalog </td></tr><tr><td> CaCl 2 </td><td> 1 </td><td> 7,35 </td><td> C-5080 </td></tr><tr><td> MgSO 4 </td><td> 1 </td><td> 12,33 </td><td> M-5921 </td></tr></tbody></table> Die aCSF Lösung muss mit Carbogen (95% O2 / 5% CO2) vergast werden, um den pH-Wert vor Zugabe von Calcium oder Calcium wird Niederschlag geringer. <table border="1" cellpadding="0"><tbody><tr><td colspan="2"> 1 Liter aCSF </td></tr><tr><td> Reagens </td><td> Volumen </td></tr><tr><td> 10X aCSF </td><td> 100ml </td></tr><tr><td> 1M CaCl 2 </td><td> 1 mL (Sezieren) 2 ml (Aufnahme) </td></tr><tr><td> 1M MgSO 4 </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td colspan="2"> Fügen Sie ~ 800 ml destilliertem Wasser, Gas mit Carbogen für 2 Minuten, bevor die Zugabe von Calcium </td></tr><tr><td colspan="2"> Add destilliertem Wasser auf 1L. </td></tr></tbody></table> Die Pumpen und Schläuche und seziert Gerichte sollten vor und nach Gebrauch abgespült werden. Zergliederung Während sezieren sollte 1mM Calcium aCSF kontinuierlich mit Carbogen begast werden. Die aCSF kann aus einer Flasche, die sezieren Gericht abgeschöpft werden und pumpte aus dem Sezieren Gericht auf die Flasche oder in den Abfall. Wir verwenden ein Elastomer (Sylgard, Dow Corning) beschichtet Gericht die Dissektion durchzuführen. Das Neugeborenen-Maus ist schnell mit einer scharfen Schere und einen Schnitt mit der Schere durch den ventralen Thorax und Abdomen gemacht enthauptet. Das Tier wird dann ausgeweidet. Die ausgenommene Maus ist mit aCSF gespült. Das Tier wird dann mit dem Sezieren Gericht mit Insekten Stifte durch die Vorderbeine und an der Basis des Schwanzes eingefügt merken. Die Wirbelsäule wird durch Ausführen einer ventralen Laminektomie entfernt. Die Wirbelsäule ist mit kleinen Zange gehalten und eine Klinge von kleinen Schere eingeführt wird unmittelbar dorsal der knöchernen Wirbelsäule. Die Lamina ist auf der einen Seite und dann die andere schneiden, während leichtes Anheben der knöchernen Wirbelsäule. Dies wird für die Länge der Wirbelsäule durchgeführt. Das Rückenmark wird durch Schneiden auf beiden Seiten entlang des Rückenmarks auf die Nervenwurzeln zu trennen und schneiden den Hirnhäuten umgeben das Rückenmark entfernt. Wir schneiden auf der linken und rechten Seite, dann schneiden wir die Meningen an der Rückenseite des Rückenmarks um sie zu befreien. Die isolierte Kabel wird dann an das Gericht in der Nähe des aCSF Einlass gute Sauerstoffversorgung zu gewährleisten, wenn zusätzliche Tiere seziert werden merken. Die isolierte Rückenmark ist dann eine Aufnahme Teller mit einem kleinen Löffel oder Spatel übertragen. Hier haben wir versorgen die Vorbereitung mit sauerstoffreichem 2mM Calcium aCSF. Das Rückenmark ist mit dem Elastomer beschichtet Schüssel und Mikromanipulatoren verwendet werden, um extrazelluläre, ganze Wurzel Saugelektroden in der Nähe der Wurzeln zu bewegen merken. Wenn die Spitze der Elektrode in der Nähe des freien root Ende ist, ist sanfte Saugwirkung angewendet an der Wurzel in die Saugelektrode ziehen. Dieser Vorgang kann wiederholt werden, um mehrere Wurzeln gleichzeitig aufgezeichnet werden. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Enthauptung und Ausweiden. A. Schnell enthaupten der Maus mit einer scharfen Schere. Mehr oder weniger Beiträge aus dem Hirnstamm erreicht in Abhängigkeit von der Höhe der geschnitten werden. B. Legen Sie ein Blatt der Schere in die Öffnung der Brusthöhle von der Enthauptung erstellt. Öffnen Sie das ventrale Thorax und Abdomen an der Basis des Schwanzes. Entfernen Sie die Eingeweide und gründlich mit aCSF. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Die Entfernung der Wirbelsäule. A. Setzen Sie die linke Blatt der Schere in den Raum zwischen der Wirbelsäule und des Rückenmarks auf der rechten Seite des Rückenmarks und Durchtrennung der Knochen über ventral am Kabel. Dann legen Sie die richtige Klinge der Schere in den Raum zwischen der Wirbelsäule und des Rückenmarks auf der linken Seite des Rückenmarks und geschnitten. B. Wiederholen Sie diesen Vorgang unter sanftem Zug auf die Wirbelsäule. Achten Sie darauf, Punktion des Rückenmarks, indem Sie die Schere in einem flachen Winkel. <img src="/files/ftp_upload/1660/1660fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Die Entfernung der Spinal Cord. A. Setzen Sie die linke Blatt der Schere in den Raum zwischen dem Rückenmark und die Knochen auf der rechten Seite des Rückenmarks und Durchtrennung der Wirbelsäule Wurzeln und Meningen über seitlich am Kabel. Dann legen Sie die richtige Klinge der Schere in den Raum zwischen dem Rückenmark und die Knochen auf der linken Seite des Rückenmarks und Durchtrennung der Wirbelsäule Wurzeln und Meningen Verlegung seitlich am Kabel. B. Schließlich heben die rostral Kabel und schneiden den Hirnhäuten Anschluss der Dorsalmark der Lamellen. Auch darauf achten, nicht zu durchstechen das Rückenmark, indem Sie die Schere in einem flachen Winkel. Schneiden Sie nicht die Wurzeln zu nahe an das Rückenmark.

<ol><li>Myers, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cholinergic+input+is+required+during+embryonic+development+to+mediate+proper+assembly+of+spinal+locomotor+circuits%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Cholinergic input is required during embryonic development to mediate proper assembly of spinal locomotor circuits.</a> Neuron. 46, 37-49 (2005).</li>
<li>Goulding, M., Pfaff, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+circuits+that+generate+simple+rhythmic+behaviors+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Development of circuits that generate simple rhythmic behaviors in vertebrates.</a> Curr Opin Neurobiol. 15 (1), 14-20 (2005).</li>
<li>Gallarda, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+axial+motor+and+sensory+pathways+via+heterotypic+trans-axonal+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Segregation of axial motor and sensory pathways via heterotypic trans-axonal signaling.</a> Science. 320, (2008).</li>
<li>Gosgnach, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((V1+spinal+neurons+regulate+the+speed+of+vertebrate+locomotor+outputs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">V1 spinal neurons regulate the speed of vertebrate locomotor outputs.</a> Nature. 440 (7081), 215-219 (2006).</li>
<li>Lanuza, G. M., Gosgnach, S., Pierani, A., Jessell, T. M., Goulding, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+identification+of+spinal+interneurons+that+coordinate+left-right+locomotor+activity+necessary+for+walking+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Genetic identification of spinal interneurons that coordinate left-right locomotor activity necessary for walking movements.</a> Neuron. 42 (3), 375-386 (2004).</li>
<li>Jiang, Z., Carlin, K. P., Brownstone, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+functionally+mature+mouse+spinal+cord+preparation+for+the+study+of+spinal+motor+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">An in vitro functionally mature mouse spinal cord preparation for the study of spinal motor networks.</a> Brain Res. 816 (2), 493-499 (1999).</li>
<li>Ziskind-Conhaim, L., Gao, B. X., Hinckley, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+dual+modulatory+actions+on+spontaneous+postsynaptic+currents+in+spinal+motoneurons%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Ethanol dual modulatory actions on spontaneous postsynaptic currents in spinal motoneurons.</a> J Neurophysiol. 89 (2), 806-813 (2003).</li>
<li>Tabak, J., Rinzel, J., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+activity-dependent+network+depression+in+the+expression+and+self-regulation+of+spontaneous+activity+in+the+developing+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The role of activity-dependent network depression in the expression and self-regulation of spontaneous activity in the developing spinal cord.</a> J Neurosci. 21 (22), 8966-8978 (2001).</li>
<li>Chub, N., Mentis, G. Z., O'Donovan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloride-sensitive+MEQ+fluorescence+in+chick+embryo+motoneurons+following+manipulations+of+chloride+and+during+spontaneous+network+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Chloride-sensitive MEQ fluorescence in chick embryo motoneurons following manipulations of chloride and during spontaneous network activity.</a> J Neurophysiol. 95 (1), 323-330 (2006).</li>
</ol>

Tierpflege<br /&gt;<br /&gt; Experimente an Tieren wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften her von The Salk Institute for Biological Studies AIACUC gesetzt durchgeführt.

Die isolierten neonatalen Rückenmark stellt eine gefügig Methode zur Untersuchung des Nervensystems Entwicklung1, 2. Im Lumbalmark der Neugeborenen-Nagetiere, kann central pattern Erzeugung Schaltung fiktiven Fortbewegung in Gegenwart von Neurotransmittern zu produzieren. Diese fiktive Lokomotion besteht aus rhythmischen Anstieg der Aktivität, Bursts, dass bei 0,2 bis 0,5 Hz erzeugt werden. Diese Ausbrüche sind so organisiert, links-rechts abwechselnd entlang der Länge des Kabels und der Beuger-Strecker Wechsel (ipsilat...

<table><tbody><tr><td>KCl</td><td></td><td>P-9333</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td>S-7653</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-6297</td><td></td></tr><tr><td>NaH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>S-9638</td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td></td><td>D-9434</td><td></td></tr><tr><td>CaCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>C-5080</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td></td><td>M-5921</td><td></td></tr><tr><td>Große Schere</td><td>Fine Science Tools</td><td>14070-12</td><td></td></tr><tr><td>Pinzette</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Feinschere</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>Insektennadeln</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard 184 (Dow-Corning)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1-Liter-Messkolben</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>100-mL-Messkolben</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

spinal cord elektrophysiologie

Spinal Cord Electrophysiology

Das Neugeborenen-Maus Rückenmark ist ein Modell für die Untersuchung der Entwicklung von neuronalen Schaltungen und Fortbewegung. Wir zeigen das Rückenmark Dissektion und Vorbereitung der Aufnahme Bad künstlichen Liquor des Bewegungsapparates Studien verwendet. Nachdem seziert, kann das Rückenmark ventral Nervenwurzeln, um eine Aufnahme Elektrode angebracht werden, um die elektrophysiologische Signale des zentralen Muster erzeugen Schaltung innerhalb Lendenmark aufzunehmen.

Eine Demonstration der Isolierung von Neugeborenen Maus Rückenmark für elektrophysiologische Untersuchungen.

Spinal Cord Elektrophysiologie

Das Rückenmark neonataler Mäuse ist ein Modell zur Untersuchung der Entwicklung von neuronalen Schaltkreisen und der lokomotorischen Bewegung. Wir demonstrieren das Rückenmark ...

Okay. Hallo, mein Name ist Alan Meyer und ich bin wissenschaftlicher Mitarbeiter im Faf-Labor am Salk-Institut. Heute zeige ich Ihnen, wie man eine ventrale Laminektomie durchführt, um das Rückenmark einer Maus zu isolieren. Außerdem zeige ich Ihnen, wie man das Rückenmark an eine Elektrode anbringt, um seine neuronale Aktivität aufzuzeichnen. Für das Rückenmark müssen Sie zwei Lösungen vorbereiten: eine für die Dissektion und eine andere für das Ableitbad.Der einzige Unterschied zwischen den beiden Lösungen liegt in der Konzentration von Calciumchlorid. Zunächst müssen Sie eine Lösung von 10 X-A-C-S-F herstellen. Dazu benötigen Sie die unten aufgeführten Reagenzien.Beginnen Sie damit, 100 Milliliter der 10 X-A-C-S-F in einen einliterigen Messkolben zu geben. Füllen Sie anschließend den Kolben mit Wasser, lassen Sie jedoch Platz, um ein Überlaufen zu vermeiden. Wenn Gas zugeführt wird, gase die Lösungen mit einer Gas-Konzentration von 5 %CO2 und 95 %O2.Um den pH-Wert zu senken und die Lösung zu oxygenieren, fügen Sie ein Milliliter einer einmolaren Magnesiumsulfatlösung hinzu. Als Nächstes geben Sie ein Milliliter einer einmolaren Calciumchloridlösung zur Dissektionslösung und zwei Milliliter einer einmolaren Calciumchloridlösung zur Aufzeichnungslösung. Mäuse im Alter von E 16,5 bis P 4 können für diese Experimente verwendet werden.Beginnen Sie die Dissektion der Maus, indem Sie sie zuerst schnell mit einer scharfen Schere enthaupten. Schneiden Sie anschließend entlang der ventralen Mittellinie, bis Sie zum Schwanz gelangen. Entfernen Sie dann mit einer Pinzette die Eingeweide der Maus und spülen Sie diese mit der A-CSF-Lösung ab.Verwenden Sie die einkristalline Calciumchlorid-A-CSF-Lösung, um die Dissektion durchzuführen. Legen Sie die Maus in die Dissektionschale und fixieren Sie sie, indem Sie je einen Pin in ihre vier Pfoten und einen Pin an der Basis des Schwanzes anbringen. Unser Ziel in diesem Abschnitt besteht darin, das Rückenmark zu isolieren, indem entlang der roten gestrichelten Linie geschnitten und die Wirbelsäule von der Lamina getrennt wird, die das Rückenmark umgibt.Dadurch können Sie das Rückenmark freilegen. Gehen Sie dann entlang der Linie, um die Häute und Rückenwurzeln auszuschneiden und das Rückenmark zu lösen. Lokalisieren Sie die Wirbelsäule und greifen Sie mit einer Hand mit einer Pinzette fest die Wirbelsäule, während Sie die andere Hand mit einer kleinen Schere verwenden.Um das Rückenmark zu entfernen, halten Sie die Schere in flachem Winkel. Um zu vermeiden, dass die Scherspitzen das Rückenmark verletzen, dissezieren wir nun das Rückenmark. Entlang der roten Linie schneiden Sie die Hirnhäute und die Spinalwurzeln durch.Um das Rückenmark zu entfernen, können Sie entlang beider Seiten des Marks schneiden und anschließend entlang der ventralen Mittellinie schneiden. Es ist wichtig, die Schere in einem flachen Winkel zu halten, um das Rückenmark nicht zu verletzen. Achten Sie darauf, die Wurzeln nicht zu dicht am Rückenmark durchzutrennen.Überführen Sie anschließend das Rückenmark in das Ableitbad und verbinden Sie die Elektroden mit den Rückenwurzeln. Positionieren Sie die Elektrode in der Nähe der Wurzel. Ziehen Sie dann mithilfe von Saugung vorsichtig den Nerv in die Elektrode hinein.Vielen Dank fürs Zuschauen und ich hoffe, dass dieses Video bei Ihren zukünftigen Experimenten hilfreich sein wird.

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Biologie

Eine Demonstration der Herstellung und Verwendung einer extrazellulären Saugelektrode zur elektrophysiologischen Ableitungen von Neugeborenen Nagetier Rückenmark...

Spinal Cord Elektrophysiologie II: Extrazelluläre Saugelektrode Fabrication

Das Video demonstriert die funktionelle Regeneration propriospinaler Verbindungen mit einem Multi-Electrode Array (MEA)-basierten Assay. Die Rückenmarksschnitte werden auf die MEA gelegt und dürfen verschmelzen. Die verschmolzenen Scheiben werden mechanisch getrennt, indem eine Läsion entsteht, wodurch propriospinale Neuronen über die Läsion wachsen und die Scheiben verbinden. Die elektrische Aktivität der Schichten wird bewertet, um die Regeneration von Funktionszusammenhängen zu...

Untersuchung der Regeneration funktioneller Verbindungen zwischen Rückenmarksschnitten mit Hilfe eines Mehrelektrodenarrays

Dieses Video zeigt elektrophysiologische Aufzeichnungen von organotypischen Co-Kulturen von Rückenmarksschnitten, die mit einem Multi-Elektroden-Array oder MEA-Gerät aufgenommen wurden. Diese Aufzeichnungen beurteilen die neuronale Regeneration zwischen den Schnitten. Die beobachtete synchronisierte elektrische Aktivität bestätigt die erfolgreiche neuronale Regeneration.

Elektrophysiologische Aufzeichnungen zur Beurteilung neuronaler Regenerationen in co-kultivierten Rückenmarksschnitten

GABAergen präsynaptischen Hemmung ist ein leistungsfähiges hemmende Mechanismus im Rückenmark wichtig für die motorische und sensorische Signalintegration in Rückenmark-Netzwerke. Basiswert primären afferenten Depolarisation kann durch die Aufnahme von Hinterwurzel Potentiale (DRP) gemessen werden. Hier zeigen wir ein Verfahren zur in-vivo-Aufnahme von DRP in Mäusen.

Mess Spinal Präsynaptische Hemmung bei Mäusen durch Spinalgan Mögliche Aufnahme<em&gt; In Vivo</em

Der zentrale Atemantrieb befindet sich im Hirnstamm. Die spontane respiratorische Leistung aus einem isolierten Hirnstamm-Rückenmark wird aufgezeichnet, indem eine Elektrode an der vierten ventralen Wurzel platziert wird. Dieser experimentelle Ansatz ist wertvoll für pharmakologische Untersuchungen oder die Beurteilung von respiratorischen Herausforderungen und genetischen Manipulationen des rhythmischen motorischen Verhaltens.

Elektrophysiologie auf isolierte Hirnstamm-Rückenmarks Zubereitungen aus Newborn Nagetiere Ermöglicht Neural Atem Netzwerk Output Recording

Hier präsentieren wir ein Protokoll, das am Rückenmark Scheiben auf Multielektrodenarrays kultiviert, um funktionelle Regeneration propriospinale Verbindungen in vitro-Studie basiert.

Untersuchung funktionelle Regeneration im Organotypische Spinal Cord Co-Kulturen auf Multi-Elektroden-Arrays Grown

Wir zeigen, wie schräge Scheiben des Rückenmarks in jungen Mäusen vorzubereiten. Diese Herstellung ermöglicht die Stimulation der ventralen Wurzeln.

Die Herstellung von Oblique Spinal Cord Slices für Ventralwurzel Stimulation

Dieses Manuskript beschreibt Verfahren zur elektrophysiologischen Aufnahmen von spinalen Neuronen Zebrabärblingembryonen und Larven. Die Herstellung hält Neuronen in situ und beinhaltet oft minimale Dissektion. Diese Verfahren ermöglichen die elektro Untersuchung einer Vielzahl von spinalen Neuronen, von der ersten elektrischen Erregbarkeit Erwerb durch den frühen Larvenstadien.

Zebrafisch<em&gt; In Situ</em&gt; Spinal Cord Vorbereitung für elektrophysiologische Aufzeichnungen von Spinal Sensory and Motor Neurons

Die kombinierte Verwendung von Mikroelektroden-Array-Technologie und 4-Aminopyridin-induzierter chemischer Stimulation zur Untersuchung der nozizeptiven Aktivität auf Netzwerkebene im Rückenmarksdorsalhorn wird skizziert.

Aufzeichnung der Netzwerkaktivität in spinalen nozizeptiven Schaltkreisen unter Verwendung von Mikroelektrodenarrays

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode, bei der eine Patch-Clamp verwendet wird, um die elektrischen Reaktionen von Motoneuronen auf die Rückenmarkstimulation (SCS) mit hoher räumlich-zeitlicher Auflösung zu untersuchen, was Forschern helfen kann, ihre Fähigkeiten bei der Trennung des Rückenmarks und der gleichzeitigen Aufrechterhaltung der Zelllebensfähigkeit zu verbessern.

Die Ex vivo Präparation eines Rückenmarksschnitts für die Ganzzell-Patch-Clamp-Aufnahme in Motoneuronen während der Rückenmarkstimulation

Wir beschreiben ein Protokoll für die extrazelluläre Aufzeichnung der spinalen Mehrkanal neben der Aufzeichnung der Herzfunktion und der Analyse der kardialgesperrten Neuronen des Spinalhorns. Diese Methode bietet einen zeitlich synchronisierten Rahmen für die Untersuchung der Wirbelsäulenmechanismen, die den durch Akupunktur induzierten viszeralen Funktionsveränderungen des Brustkorbs zugrunde liegen.

Untersuchung der kodierenden Profile der somatischen Stimulation auf kardio-gesperrte neuronale Reaktionen im Spinalhorn der Ratte

Lernen Sie die ventrale Laminektomie zur Isolierung des neonatalen Mausrückenmarks für elektrophysiologische Studien. Diese Methode ermöglicht die Aufzeichnung neuronaler Aktivität mit Elektroden.

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