Name: Vorbereitung der Drosophila S2-Zellen für Lichtmikroskopie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-03T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: Lernen Sie die Vorbereitung von Drosophila S2-Zellen für die Lichtmikroskopie. Diese Methode umfasst die Beschichtung mit Lectin zur Zelladhäsion, Fixierung und Immunfärbung für die Fluoreszenzmikroskopie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Diese Arbeit wurde teilweise von der National Cancer Institute P30 CA23074, die American Cancer Society Institutional Research Grant 74-001-31, und der Univ unterstützt. of Arizona GI SPORE (NCI / NIH CA9506O).

<ol><li>Schneider, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lines+derived+from+late+embryonic+stages+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Embryol+Exp+Morphol%22%5BJournal%5D)">Cell lines derived from late embryonic stages of Drosophila melanogaster.</a> J Embryol Exp Morphol. 27, 353-365 (1972).</li>
<li>Rogers, S. L., Rogers, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+Drosophila+S2+cells+and+their+use+for+RNAi-mediated+loss-of-function+studies+and+immunofluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Culture of Drosophila S2 cells and their use for RNAi-mediated loss-of-function studies and immunofluorescence microscopy.</a> Nat Protoc. 3, 606-611 (2008).</li>
<li>Rogers, S. L., Rogers, G. C., Sharp, D. J., Vale, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+EB1+is+important+for+proper+assembly%2C+dynamics%2C+and+positioning+of+the+mitotic+spindle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Drosophila EB1 is important for proper assembly, dynamics, and positioning of the mitotic spindle.</a> J Cell Biol. 158, 873-884 (2002).</li>
<li>Goshima, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+required+for+mitotic+spindle+assembly+in+Drosophila+S2+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Genes required for mitotic spindle assembly in Drosophila S2 cells.</a> Science. 316, 417-421 (2007).</li>
</ol>

Für die Zellbiologie Feld wäre ein ideales System kostengünstig in der Wartung, leicht zu manipulieren, und zugänglich für eine Vielzahl von Techniken. Drosophila S2-Zellen erfüllen diese Anforderungen, und so haben sie schnell das System der Wahl für eine wachsende Zahl von Zellen Biologie-Labors. Wir haben einen kurzen Überblick über die Methoden, die S2-Zellen für die Mikroskopie vorbereitet präsentiert. Eine bemerkenswerte Tugend der S2-Zellen ist die Tatsache, dass sie gut wach...

<table><tbody><tr><td>S2-Zellen</td><td>ATCC</td><td>CRL-1963</td><td>&lt;a href=&quot;http://www.atcc.org/">http://www.atcc.org/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>S2-Zellen</td><td>DGRC</td><td>Bestellnummer 6</td><td>&lt;a href=&quot;https://dgrc.cgb.indiana.edu/">https://dgrc.cgb.indiana.edu/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>S2-Zellen</td><td>Invitrogen</td><td>R690-07</td><td></td></tr><tr><td>Sf900 II</td><td>Invitrogen</td><td>10902-096</td><td>serumfreies Medium</td></tr><tr><td>HyClone SFX-Insect</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>SH30278</td><td>serumfreies Medium</td></tr><tr><td>Insect-Xpress</td><td>BioWhittaker</td><td>12-730</td><td>serumfreies Medium</td></tr><tr><td>Schneider&amp;rsquo;s S2-Medium</td><td>Invitrogen</td><td>11720-034</td><td>10 % (endgültig) hitzeinaktiviertes FBS hinzufügen, um komplettes Medium herzustellen.</td></tr><tr><td>Fetales Rinderserum</td><td>Invitrogen</td><td>10438026</td><td>hitzeinaktiviert</td></tr><tr><td>100× Antibiotikum-Lösung</td><td>MP Biomedicals</td><td>91674049</td><td>enthält Penicillin (10000 U/mL),&lt;br/&gt;Streptomycin (10000 &amp;#x03BC;g/mL) und&lt;br/&gt;Amphotericin B (25 &amp;#x03BC;g/mL)</td></tr><tr><td>Concanavalin A</td><td>MP Biomedicals</td><td>195283</td><td></td></tr><tr><td>Formaldehyd</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>15714</td><td>32%ige Lösung</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Mallinckrodt Baker Inc.</td><td>9049</td><td>wasserfrei, ACS-Reinheit</td></tr><tr><td>Molekularsiebe</td><td>Acros Organics</td><td>19724</td><td>Typ 3A</td></tr></tbody></table>

vorbereitung der drosophila s2-zellen für lichtmikroskopie

Preparation of Drosophila S2 cells for Light Microscopy

Die ideale experimentelles System wäre billig und leicht zu pflegen, zugänglich für eine Vielzahl von Techniken und würde durch eine umfangreiche Literatur-und Genom-Sequenz-Datenbank unterstützt werden. Cultured Drosophila S2-Zellen, das Produkt der distanzierte 20-24 Stunden alte Embryonen 1, besitzen alle diese Eigenschaften. Folglich sind S2-Zellen extrem für die Analyse von zellulären Prozessen, einschließlich der Entdeckung der Gene, die molekularen Komponenten des Prozesses oder der Mechanismus von Interesse gut geeignet. Die Features von S2-Zellen, die die größte Verantwortung für deren Nutzen sind, sind die Leichtigkeit, mit der sie gehalten werden, ihren exquisiten Sensibilität für doppelsträngige (ds) RNA-Interferenz (RNAi), und ihre Handhabbarkeit zu Fluoreszenzmikroskopie als entweder live oder feste Zellen. S2-Zellen können in einer Vielzahl von Medien gezüchtet werden, darunter eine Reihe von preiswerten, handelsüblichen, vollständig definierte, Serum-freien Medien 2. Darüber hinaus wachsen sie optimal und schnell auf 21-24 ° C und kann in einer Vielzahl von Containern kultiviert werden. Im Gegensatz zu Säugerzellen tun S2-Zellen benötigen kein geregelter Atmosphäre, sondern tun auch mit normaler Luft und können sogar in verschlossenen Flaschen aufrechterhalten werden. Ergänzend zu der einfachen RNAi in S2-Zellen ist die Fähigkeit, leicht zu analysieren experimentell induzierten Phänotypen von Phase oder Fluoreszenzmikroskopie von festen oder lebenden Zellen. S2 Zellen wachsen in Kultur als eine einzige Monolage aber nicht angezeigt, wenden Sie Hemmung. Stattdessen neigen Zellen in Kolonien in dichten Kulturen wachsen. Bei geringer Dichte, S2 Kulturen auf Glas-oder Gewebekultur-behandelte Kunststoff gewachsen sind rund und lose befestigt. Allerdings kann die Zytologie von S2-Zellen stark durch die sie dazu veranlassen weitgehend flach durch kurzes kultiviert auf einer Fläche mit dem Lektin Concanavalin A (ConA) 3 beschichtet verbessert werden. S2-Zellen können auch stabil mit Fluoreszenz-markierten Marker zu beschriften Strukturen oder Organellen Interesse an Live-oder fixierten Zellen transfiziert werden. Daher ist das Szenario für die mikroskopische Analyse von Zellen: Erstens, S2-Zellen (die Transgene mit Tags Marker zum Ausdruck besitzen) werden durch RNAi behandelt, um ein Zielprotein (s) zu beseitigen. RNAi-Behandlung Zeit kann eingestellt werden, um Unterschiede in Protein zu ermöglichen turn-over-Kinetik und die Zelle Trauma / Tod zu minimieren, wenn das Zielprotein für die Lebensfähigkeit wichtig. Anschließend werden die behandelten Zellen zu einer Schale mit einem Deckglas vorbeschichtet mit conA, um Zellen zu verbreiten induzieren und fest mit dem Glas haften übertragen. Schließlich werden die Zellen mit dem Forscher die Wahl der Mikroskopie-Modi abgebildet. S2 Zellen sind besonders gut für Studien erfordern erweiterte Visualisierung von lebenden Zellen, da diese Zellen bei Raumtemperatur und normaler Atmosphäre gesund zu bleiben.

Drosophila Schneider (S2) Zellen sind ein zunehmend beliebtes System für die Entdeckung und funktionelle Analyse von Genen. Unser Ziel ist es, einige der mikroskopischen Techniken, die S2-Zellen zu machen, wie eine zunehmend wichtige experimentelle System zu beschreiben.

Vorbereitung der Drosophila S2-Zellen für Lichtmikroskopie

Das ideale experimentelle System wäre kostengünstig, leicht zu warten, für eine Vielzahl von Techniken zugänglich und durch eine umfangreiche Literatur gestützt ...

Das allgemeine Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Vorbereitung von Drosophila S2-Zellen für die Lichtmikroskopie zu beschreiben. Dies wird erreicht, indem zunächst Kulturschalen mit Glasboden vorbereitet werden. Der zweite Schritt des Verfahrens besteht darin, den Glasboden mit dem Lektin Conval zu beschichten.A, um die Adhäsion und Flachwerdung der S zwei-Zellen zu fördern. Der dritte Schritt des Verfahrens besteht darin, Kulturmedium und S zwei-Zellen in die Kulturschale zu geben. Der letzte Schritt des Verfahrens ist die Fixierung und Immunfärbung der S zwei-Zellen in der Kulturschale.Schließlich können Ergebnisse erzielt werden, die die Lokalisation von mit Fluoro vier markierten oder immunmarkierten Proteinen des Interesses durch Fluoreszenzmikroskopie von jeweils lebenden oder fixierten S zwei Zellen zeigen. Hallo, ich bin Joey Club aus dem Labor von Greg Rogers am Department für Zellbiologie und Anatomie an der University of Arizona. Ich bin John Nye, ebenfalls aus dem Rogers-Labor.Und ich bin auch Dan Buster, aus dem Labor von Greg Rogers. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur Vorbereitung von Drosophila S zwei Zellen für die Lichtmikroskopie.Wir verwenden dieses

preparation-of-drosophila-s2-cells-for-light-microscopy

Research

Forschung

JoVE Journal

Biology

Biologie

Eine einfache, kostengünstige und effektive Methode zur Herstellung von Drosophila-Embryonen für die Live-imaging-Analyse vorgestellt. Unser Protokoll sieht vor Feuchtigkeit und Gasaustausch und komprimiert nicht die Drosophila-Embryo. Diese Methode eignet sich für GFP-basierte Live-Darstellung von Drosophila-Embryonen mit einem Stereomikroskop oder aufrecht zusammengesetzte Mikroskop.

Die Herstellung Drosophila Embryonen für Live-Imaging mit dem Hanging-Drop-Protokoll

Wir beschreiben ein Verfahren zur Fixierung, Einbettung, Schneiden und Bildgebung von...

Vorbereitung der Embryonen für Elektronenmikroskopie der Drosophila Embryonale Herz Rohr

Erstellung von Entwicklungs-und Adult Drosophila Brains und retinae für Live Imaging

Wir beschreiben das Verfahren zur Vorbereitung...

Visualisierung des embryonalen Nervensystems in Whole-mount Drosophila Embryos

Vorbereitung von Adult Drosophila Augen für Thin Schnitte und mikroskopische Untersuchung

Drosophila S2-Zellen und kultivierten Neuronen sind große Systeme für die Bildgebung von motorbetriebenen Organellentransport in vivo. Hier beschreiben wir ausführliche Protokolle für die Kultivierung beider Zelltypen, die Abbildung und Analyse des Verkehrs.

Organell-Transport in kultivierten Drosophila Zellen: S2-Zelllinie und primären Neuronen.

Diese Arbeit beschreibt eine Standard-Immunhistochemie-Methode zur Visualisierung von Motor-Neuronen-Projektionen von späten Stadium-16 Drosophila Melanogaster Embryonen . Die gefilterte Präparation von festen Embryonen, die mit FasII-Antikörper gefärbt wurden, bietet ein leistungsfähiges Werkzeug, um die Gene zu charakterisieren, die für die motorische Axon-Pathfindung und die Zielerkennung während der neuronalen Entwicklung erforderlich sind.

Visualisierung des axonalen Projektionsmusters der embryonalen motorischen Neuronen in<em&gt; Drosophila</em

SEM-Analyse ist eine effektive Methode um Speziesidentifizierung oder phänotypischen Diskriminierung zu unterstützen. Dieses Protokoll beschreibt die Methoden zur Untersuchung der morphologischer Besonderheiten der drei repräsentative Arten von Organismen und zur Untersuchung der Eigenschaften von vielen organismal breit anwendbar wäre und Gewebetypen.

Vorbereitung der prokaryotischen und eukaryotischen Organismen mit chemischen Trocknung für die morphologische Analyse in Rasterelektronenmikroskopie (SEM)

Hier wird ein Protokoll zur Mikroinjektion und gleichzeitigen Abbildung mehrerer Drosophila-Embryonen während der embryonalen Entwicklung mit einem plattenbasierten, hochinhaltigen Imager vorgestellt.

Drosophila Embryo Vorbereitung und Mikroinjektion für die Live-Zellmikroskopie mit einem automatisierten High Content Analyzer durchgeführt

Die Lichtbogen-basierte Fluoreszenzmikroskopie ist das wertvollste Werkzeug in der Entwicklungsbiologie. Ein wichtiges Thema in vergleichenden Studien ist die Varianz der Umgebung. Unser Protokoll beschreibt ein experimentelles Framework für die gleichzeitige Live-Bildgebung mehrerer Proben und befasst sich daher proaktiv mit diesem Problem.

Gleichzeitige Live-Bildgebung mehrerer Insektenembryonen in probenkammerbasierten Lichtbogenfluoreszenzmikroskopen

In dieser Arbeit wird ein Protokoll für die Implementierung der Expansionsmikroskopie in frühen Drosophila-Embryonen vorgestellt, um eine hochauflösende Bildgebung mit einem konventionellen konfokalen Laser-Scanning-Mikroskop zu erreichen.

Verwendung von Expansionsmikroskopie zur physikalischen Vergrößerung ganzer Drosophila-Embryonen für hochauflösende Bildgebung

Lernen Sie die Vorbereitung von Drosophila S2-Zellen für die Lichtmikroskopie. Diese Methode umfasst die Beschichtung mit Lectin zur Zelladhäsion, Fixierung und Immunfärbung für die Fluoreszenzmikroskopie.

Vorbereitung der Drosophila S2-Zellen für Lichtmikroskopie

Weitere Videos entdecken