JoVE Encyclopedia of Experiments
Biologie
0 Ansichten • 3:23 Min. • April 30th, 2023
- Bereiten Sie konische Injektionsnadeln vor, indem Sie dünnwandige Glaskapillaren mit einem Nadelabzieher ziehen. Halten Sie eine Nadel unter ein Mikroskop und brechen Sie die Spitze, wobei Sie darauf achten, dass die Öffnung gerade groß genug ist, um die Nagelhaut der erwachsenen Fliege zu durchstechen, ohne sie mehr als nötig zu verletzen. Messen Sie das Injektionsvolumen, indem Sie Ihre Nadel mit einer sterilen Farb- und Salzpufferlösung beladen und dann auf einen Tropfen Mineralöl auf einem Tischmikrometer ausstoßen. Verwenden Sie die Skala am Mikrometer, um den Durchmesser des ausgestoßenen Tröpfchens zu messen, anhand dessen das abgegebene Volumen berechnet werden kann, und kalibrieren Sie Ihre Injektoreinstellungen entsprechend.
Befüllen Sie die Nadel mit Ihrer Injektionslösung und montieren Sie sie auf eine Injektionsdüse. Betäuben Sie Ihre Fliegen mit CO2 und ordnen Sie sie auf einem CO2-Fliegenpad an, das sie betäubt. Sobald sich die Fliegen in der richtigen Ausrichtung für Ihr Experiment befinden, fahren Sie mit den Injektionen fort. Im Beispielprotokoll werden wir adulten Fliegen fluoresceinmarkierte Partikel für die in vivo-Bildgebung injizieren.
- Nachdem Sie dünnwandige Glaskapillaren mit einem Nadelabzieher gezogen haben, halten Sie die Nadel mit einem Mikrometer unter ein Mikroskop und brechen Sie die Spitze mit einer Pinzette aus Edelstahl mit fünf feinen Spitzen auf einen Durchmesser von 100 Mikrometern. Um das Flüssigkeitsvolumen zu messen, das in jede Fliege injiziert wird, laden Sie eine Kapillarnadel mit steriler 5%iger Lebensmittelfarbe in PBS und stoßen Sie die Flüssigkeit auf einen Tropfen Mineralöl auf einem 0,01-Millimeter-Tischmikrometer aus.
Geben Sie 10 Mikroliter mit 1,6 Milligramm pro Milliliter Partikel auf ein kleines Quadrat Parafilm und ziehen Sie die Flüssigkeit in die Nadel. Montieren Sie die Nadel in die Injektordüse und richten Sie die anästhesierten Fliegen entlang des dafür vorgesehenen Bereichs auf dem Fliegenkissen aus, mit der Bauchseite nach oben, wobei die Köpfe zur Vorderseite des Polsters ausgerichtet sind. Platzieren Sie die Fläschchen in den entsprechenden Bereichen auf der Bank und injizieren Sie die Fliegen in der oberen Ecke des Bauches mit fünf 100-Millisekunden-Pumpstößen Flüssigkeit, um insgesamt etwa 10 Nanoliter Partikel zu fördern. Übertragen Sie jede Fliege nach der Injektion in die entsprechende Durchstechflasche und notieren Sie die Uhrzeit auf der Durchstechflasche.
Laden Sie anschließend eine neue Nadel mit 0,4 % iger Trypanblau-Lösung und stellen Sie den pneumatischen Injektor auf "Gated", damit ein konstanter Luftstrom die Flüssigkeit aus der Nadel drücken kann. 30 Minuten nach der ersten Injektion injizieren Sie jeden Fliegenbauch mit Trypanblau, bis die Bauchmuskeln voll und aufgebläht sind. Montieren Sie die Fliegen mit Isolierband mit der Bauchseite nach unten auf Objektträger und schieben Sie die Flügel an die Seite der Fliege, um sie am Klebeband zu befestigen. Schieben Sie dann den Kopf vorsichtig in das Klebeband, um sicherzustellen, dass sich die Fliege nicht bewegt.
In diesem Artikel wird ein Protokoll zur Injektion erwachsener Fliegen mit fluoreszeinmarkierten Partikeln für die In-vivo-Bildgebung beschrieben. Die Methode umfasst die Herstellung konischer Injektionsnadeln und die Anästhesierung der Fliegen, um präzise Injektionen zu ermöglichen.
Die gezielte Verabreichung von Substanzen bei Modellorganismen ermöglicht die mechanistische Absicherung therapeutischer Zielstrukturen und unterstützt die Entwicklung von Assays in frühen Entwicklungsstadien. Diese Methode bietet einen skalierbaren Ansatz zur Einführung markierter Verbindungen oder Biologika in adulte Drosophila, wodurch phänotypische Bildschirmschaltungen und die Validierung von Zielstrukturen erleichtert werden. Durch die Standardisierung des Injektionsvolumens und die Minimierung von Gewebeschäden wird die Reproduzierbarkeit in Entdeckungsbiologie-Pipelines verbessert.
Diese Methode fügt sich in die Entdeckungskontinuum von der Testung von Zielhypothesen bis hin zur Identifizierung von Leitverbindungen ein, insbesondere wenn die Lokalisation einer Verbindung oder die Modulation eines Targets in vivo visualisiert werden muss.
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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026