Zählung von koloniebildenden Einheiten (KBE): Quantifizierung von Bakterien aus Fliegenkörpern

0 Ansichten3:55 Min. • April 30th, 2023

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- Sammeln Sie zunächst Fliegen im gewünschten Entwicklungsstadium und legen Sie sie in ein steriles Röhrchen. Um nur die innere Mikrobiota zu zählen, sterilisieren Sie das Äußere der Fliegen, indem Sie sie in 70%iges Ethanol tauchen. Um sowohl die innere als auch die äußere Mikrobiota zu messen, überspringen Sie diesen Sterilisationsschritt. Zerkleinern Sie die Fliegen anschließend in einem kleinen Volumen bakterieller Wachstumsmedien mit Keramikkügelchen und einem Gewebehomogenisator oder manuell mit einem Stößel. Es sollte darauf geachtet werden, dass keine Bakterien aus externen Quellen eingeschleppt werden, um eine Kontamination der Proben zu vermeiden.

Sie sollten jetzt eine homogene Mischung mit Bakterien haben, die Sie kultivieren können. Das Volumen des Homogenats wird mit flüssigem Bakterienmedium erhöht. Führen Sie serielle Verdünnungen des Homogenats durch und plattieren Sie ein konstantes Volumen dieser Verdünnungen auf dem geeigneten festen Wachstumsmedium für Ihre Bakterien. Wenn die Bakterien wachsen, bilden sich Kolonien auf der Platte. Ermitteln Sie die Verdünnung mit einem Bereich von 10 bis 100 Kolonien, um die koloniebildenden Einheiten (KBE) der Probe zu bestimmen.

Im Beispielprotokoll werden wir sterile Fliegen mit einer gnotobiotischen oder definierten Bakterienkultur beimpfen und KBE sammeln und messen.

- Verwenden Sie Filterspitzen, um 100 Mikroliter Wachstum über Nacht in ein steriles Mikrofuge-Röhrchen zu übertragen. Übertragen Sie als Nächstes 200 Mikroliter jeder Kultur auf eine 96-Well-Platte. Entnehmen Sie die Proben aus der Biosicherheitswerkbank und zentrifugieren Sie sie, um die Bakterien zu pelletieren. Messen Sie nach der ein-, zwei- und vierfachen Verdünnung die optische Dichte oder OD600 mit einem Multiwell-Plattenablese-Spektralphotometer.

Entfernen Sie nach Erhalt des OD600 den Überstand mit einer Pipettenspitze und verwenden Sie frisches mMRS, um das Pellet wieder zu suspendieren. Mischen Sie die verdünnten Bakterienstämme in gleichen Verhältnissen, um einen Multi-Spezies-Cocktail zu kreieren. Füllen Sie 50 Mikroliter des Cocktails in die konischen Röhrchen mit der sterilen Diät und den dechorionierten Eiern. Achten Sie darauf, die Bakterien nach dem Eitransfer hinzuzufügen, um eine Kontamination zwischen den Fläschchen zu vermeiden. Legen Sie dann die beimpften Röhrchen in einen Inkubator.

Um die koloniebildenden Einheiten oder KBEs zu messen, geben Sie fünf Fliegen in ein 1,7-Milliliter-Mikrofuge-Röhrchen, das 125 Mikroliter Keramikkügelchen und 125 Mikroliter mMRS-Brühe enthält. Homogenisieren Sie die Fliegen mit einem Gewebehomogenisator. Es sollten keine ganzen Stücke von der Fliege übrig bleiben. Als nächstes verdünnen Sie das Homogenat mit 875 Mikrolitern mMRS, wirbeln Sie das Homogenat fünf Sekunden lang vor und pipettieren Sie 120 Mikroliter in die erste Vertiefung einer Mikrotiterplatte.

Entnehmen Sie 10 Mikroliter aus der ersten Vertiefung und geben Sie sie in die zweite Vertiefung mit 70 Mikrolitern MRS. Mischen Sie den Inhalt der zweiten Vertiefung gründlich. Übertragen Sie dann 10 Mikroliter aus der zweiten Vertiefung in die dritte Vertiefung mit 70 Mikrolitern MRS und mischen Sie gründlich. Übertragen Sie 10 Mikroliter jeder Verdünnung auf eine mMRS-Platte. Neigen Sie die Schale leicht, um die Verdünnung mehrere Millimeter auf der Oberfläche des Agars zu verteilen, und lassen Sie die Flüssigkeit trocknen, bevor Sie die Platte bewegen. Nehmen Sie die Platten aus dem Inkubator, sobald unterschiedliche Einzelvölker sichtbar sind, und zählen Sie sie aus einer Verdünnung mit 10 bis 100 isolierten Völkern. Berechnen Sie abschließend die KBE pro Fliege.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026