Drosophila In Vivo Calcium Imaging: Eine Methode zur funktionellen Bildgebung neuronaler Aktivität

0 Ansichten4:02 Min. • April 30th, 2023

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- Um eine In-vivo-Kalziumbildgebung im Drosophila-Nervensystem durchzuführen, zielen Sie auf die Expression eines genetisch kodierten Kalziumindikators wie GCaMP auf die interessierenden Neuronen ab. Wenn Neuronen ein Aktionspotential abfeuern, führt eine schnelle Depolarisation der Membran dazu, dass sich spannungsgesteuerte Kalziumkanäle öffnen, was zu einem Einstrom von extrazellulärem Kalzium in die Zelle führt.

GCaMP ist ein Fusionsprotein, bei dem das verstärkte grün fluoreszierende Protein (EGFP) modifiziert und mit dem M13-Fragment der Myosin-Leichtkette am N-Terminus und mit dem Calcium-bindenden Protein Calmodulin am C-Terminus fusioniert wird. Calcium bindet an Calmodulin, löst Konformationsänderungen in GCaMP aus, was zu einer Erhöhung der Fluoreszenz des Proteins führt.

Um Veränderungen der GCaMP-Fluoreszenz als Proxy für die neuronale Aktivität in vivo abzubilden, belichten Sie die Region des Nervensystems mit der erwarteten Aktivität. Verwenden Sie dann ein Fluoreszenzmikroskop, das die GCaMP-Dynamik erfassen kann und mit einem Stimulusabgabe-Setup ausgestattet ist. Geben Sie den Stimulus, z. B. einen Geruch, ab, während Sie die GCaMP-Fluoreszenz in reagierenden Neuronen aufzeichnen.

Im Beispielprotokoll sehen wir, wie die funktionelle Bildgebung von GCaMP verwendet wird, um Reaktionen in den Pilzkörpern des Gehirns während des olfaktorischen assoziativen Lernens zu visualisieren.

- Für die Visualisierung der GFP-basierten Kalziumindikatoren stellen Sie den Laser eines Multiphotonenmikroskops, das mit einem Infrarotlaser und einem Wasserimmersionsobjektiv ausgestattet ist und auf einem schwingungsisolierten Tisch installiert ist, auf eine Anregungswellenlänge von 920 Nanometern ein und installieren Sie einen GFP-Bandpassfilter. Scannen Sie mit dem groben Z-Einstellknopf durch die Z-Achse des Gehirns, um die gewünschte Gehirnregion zu lokalisieren. Verwenden Sie die Zuschneidefunktion, um den Scanvorgang nur auf den interessierenden Bereich zu fokussieren, um die Scanzeit zu minimieren, und drehen Sie die Scanansicht so, dass der vordere Teil des Kopfes nach unten zeigt. Passen Sie dann die Framegröße auf 512 x 512 Pixel an und wählen Sie die zu scannende Region unter Berücksichtigung der berechneten Scanzeit für jeden Frame aus, um eine Framerate von mindestens 4 Hertz zu erreichen.

Für die störungsevozierte transiente Visualisierung von Kalzium initiieren Sie ein vorprogrammiertes Makropaket, das die Bilderfassungssoftware und das Geruchsabgabeprogramm verknüpfen kann, und starten Sie die Messung in der Mikroskopsoftware für 6,25 Sekunden, um einen F0-Ausgangswert zu ermitteln. Geben Sie im Geruchsabgabesystem einen 2,5-sekündigen Geruchsreiz ab, der hier durch das Aufleuchten von LEDs angezeigt wird, ausgelöst durch das Öffnen und Schließen bestimmter Geruchsbecherventile, gefolgt von einer 12,5-sekündigen Aufzeichnung am Ende des Geruchsversatzes. Wiederholen Sie dann die Verabreichung für ein zweites und drittes Odorant auf die gleiche Weise.

Um eine assoziative Konditionierung in diesem Aufbau durchzuführen, verwenden Sie das computergesteuerte Geruchsabgabesystem, um den konditionierten Reiz plus Geruch 60 Sekunden lang zusammen mit 12 90-Volt-Elektroschocks zu präsentieren. Nach einer Pause von 60 Sekunden präsentieren Sie den Zustandsreiz minus Geruch allein für 60 Sekunden ohne elektrischen Schlag. Messen Sie die geruchsevozierten Kalziumtransienten nach dem Training erneut, indem Sie das Geruchsstimulationsprotokoll vor dem Training 3 Minuten nach Beendigung der Trainingsphase wiederholen. Speichern Sie dann die Imaging-Dateien in einem geeigneten Format für die spätere Bildanalyse.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026