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- Bereiten Sie zunächst Agarose vor, indem Sie E3-Medium hinzufügen, das die dechorionierten Embryonen mit Kalzium versorgt, um geschmolzene Agarose zu erhalten. Fügen Sie als nächstes MS222 hinzu, um Embryonen zu betäuben. Kühlen Sie die Agarosemischung auf 38 Grad Celsius ab, damit sie fast fest wird. Wählen Sie einige dechorionierte Embryonen aus, die fluoreszierende Proteine exprimieren, und übertragen Sie sie in die Agarosemischung.
Führen Sie dann einen Kolben vollständig in eine Glaskapillare ein und ziehen Sie einen Embryo heraus, wobei Sie darauf achten, dass er mit dem Kopf voran eintritt. Sobald die Agarose erstarrt ist, halte die Kapillare mit Klebeband aufrecht in einem Becherglas, das E3-Medium enthält. Der offene Kapillarboden fördert den Gasaustausch für die Embryoprobe.
Legen Sie die Kapillare in den Probenhalter eines Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskops. Der Laser bildet ein dünnes Lichtblatt, das es ermöglicht, dass ein Detektionsobjektiv, das senkrecht zur Probe positioniert ist, ein Querschnittsbild aufnehmen kann. Im Beispielprotokoll werden wir Zebrafischembryonen montieren, um das sich entwickelnde Auge abzubilden.
Beginnen Sie mit der Zubereitung der Agarose. Ein vorbereitetes 1 Milliliter Aliquot von 1 % Agarose mit niedrigem Schmelzpunkt in E3-Medium bei 70 Grad Celsius schmelzen. Nach etwa 15 Minuten werden 600 Mikroliter geschmolzene Agarose in ein frisches 1,5-Milliliter-Röhrchen überführt und 250 Mikroliter E3-Medium, 50 Mikroliter 0,4 % MS222 und 25 Mikroliter vortexierte fluoreszierende Bead-Stofflösung hinzugefügt.
Legen Sie das Rohr in einen Heizblock bei etwa 39 Grad Celsius, damit sich die Agarose ihrem Jelling-Punkt nähert. Schieben Sie anschließend die mit Teflon bestückten Kolben bis zum Boden der Glaskapillaren mit einem Innendurchmesser von 1 Millimeter nach unten. Bereiten Sie fünf davon vor.
Wirbeln Sie nun kurz die Agarosemischung vor und übertragen Sie dann fünf Embryonen mit einer minimalen Menge Flüssigkeit hinein. Führen Sie dann eine Kapillare ein und aspirieren Sie einen Embryo mit dem Kopf voran.
Der Kopf muss vor dem Schwanz eintreten und es dürfen keine Luftblasen entstehen. Ziehen Sie so viel Lösung auf, dass sich etwa zwei Zentimeter Agarose über dem Embryo und 1 Zentimeter Agarose darunter befindet.
Ziehen Sie einen Embryo in jede Kapillare, bevor Sie fortfahren. Dieser Schritt erfordert etwas Übung, um ihn zu meistern. Bereiten Sie sich mit nicht wertvollen Embryonen darauf vor.
Wenn die Agarose vollständig erstarrt ist, lagern Sie die Proben in E3-Medium, indem Sie die Kapillaren mit Plastilin an eine Becherwand stützen, wobei die untere Öffnung in Lösung ist. Montieren Sie nun den Probenhalter. Führe zunächst zwei Plastikhüllen in der richtigen Größe gegeneinander in den Stiel ein.
Die Schlitze an den Ärmeln müssen nach außen zeigen. Befestigen Sie anschließend eine Klemmschraube und führen Sie die Kapillare durch die Halterung, bis auf der anderen Seite das schwarze Farbband sichtbar wird. Vermeiden Sie es, den Kolben zu berühren.
Ziehen Sie dann die Klemmschraube fest. Als nächstes drücken Sie einen Zentimeter Agarose aus der Kapillare heraus und schneiden Sie sie ab. Setzen Sie dann den Stiel in die Probenhalterscheibe ein.
Überprüfen Sie vor dem Einlegen der Probendiskette, ob sich der Tisch in der Steuerungssoftware in der obersten Position befindet. Verwenden Sie dann Führungsschienen, um den Halter und die Probe nach unten in das Mikroskop zu gleiten. Stellen Sie sich nun die ausgewählte Probe vor, wie im Textprotokoll beschrieben.