JoVE Encyclopedia of Experiments
Krebsforschung
0 Ansichten • 3:57 Min. • April 30th, 2023
- T-Zellen, eine Klasse von Lymphozyten, spielen eine aktive Rolle bei der Bekämpfung von Infektionen. Neben vielen anderen Blutzelltypen sind immunkompetente T-Zellen in der Milz und den Lymphknoten der Maus vorhanden. Um T-Zellen selektiv zu isolieren, werden Milz und Lymphknoten der Maus entnommen und auf einem Zellsieb mazeriert. Spülen Sie das Gewebe mit einem geeigneten Medium, um eine Einzelzellsuspension zu erhalten.
Fügen Sie Ammoniumchlorid-Kalium oder ACK-Puffer hinzu, um die roten Blutkörperchen zu lysieren. Zentrifuge, um die intakten Blutzellen vom Lysat zu trennen. Den Überstand verwerfen und die Zellen in einem geeigneten Puffer resuspendieren. Behandeln Sie die Suspension mit einer Mischung aus biotinylierten Antimaus-Antikörpern, die auf Blutzellen wie Granulozyten, B-Zellen, NK-Zellen und alle verbleibenden Erythrozyten abzielen. T-Zellen werden nicht angegriffen und bleiben daher unmarkiert.
Fügen Sie als Nächstes der Suspension magnetische Anti-Biotin-Mikrokügelchen hinzu. Alle Biotin-markierten Zellen binden an die Mikrokügelchen. Unter dem Einfluss eines starken Magnetfeldes haften die magnetisch markierten Zellen an der Röhrenwand. Unmarkierte T-Zellen bleiben in Suspension. Sammeln Sie die ungebundenen angereicherten T-Zellen in ein frisches Sammelröhrchen. Im folgenden Protokoll zeigen wir die Isolierung von T-Zellen aus Milz und Lymphknoten der Maus unter Verwendung einer magnetischen Trenntechnik.
- Bündeln Sie die Lymphknoten und die Milz in einem 40-Mikrometer-Porensieb und mazerieren Sie das Gewebe mit einem Spritzenkolben durch die Filter, um die Zellen freizusetzen. Waschen Sie das Sieb und den Kolben mit RPMI-Medium, das mit 1 % FBS versetzt ist, um alle Zellen zu sammeln und die Zellen durch Zentrifugation zu sedimentieren. Geben Sie 5 Milliliter ACK-Lysepuffer zum Zellpellet
.Nach fünf Minuten bei Raumtemperatur die Reaktion mit 5 Millilitern Medium, das mit 1 % FBS versetzt ist, stoppen und die weißen Blutkörperchen durch Zentrifugation pelletieren. Resuspendieren Sie das Pellet in 5 Millilitern MACS-Puffer zum Zählen und verdünnen Sie die Zellen auf eine Konzentration von 2 mal 10 auf 8 Zellen pro Mikroliter in frischem MACS-Puffer. Geben Sie die entsprechende Konzentration von Anti-Erythroid-, Anti-Granulozyten-, Anti-B-Zell- und Anti-NK-Zell-Depletionsantikörpern pro 1 mal 10 zu den 6 Zellen für eine 15-minütige Inkubation bei 4 Grad Celsius.
Am Ende der Inkubation waschen Sie die Zellen mit 10 Millimeter eiskaltem MACS-Puffer und resuspendieren Sie das Pellet in einer Konzentration von 1 mal 10 auf 8 Zellen pro Milliliter in frischem MACS-Puffer. Als nächstes fügen Sie 0,22 Mikroliter Anti-Biotin-Mikrokügelchen pro 1 mal 10 zu den 6 Zellen mit Mischen für eine 15-minütige Inkubation bei 4 Grad Celsius hinzu.
Am Ende der Inkubation waschen Sie die Zellen mit 10 Millilitern eiskaltem MACS-Puffer und sammeln Sie die ungebundenen angereicherten T-Zellen durch magnetische Bead-Trennung mit einem MACS-Express-Separator gemäß den Standard-Bead-Isolationsprotokollen. Am Ende der Trennung sedimentieren Sie die T-Zellen durch Zentrifugation und resuspendieren das Pellet in 5 Millilitern frischem MACS-Puffer zur Zählung.
In diesem Artikel wird ein Protokoll zur Isolierung von T-Zellen aus murinen Milz- und Lymphknoten unter Verwendung magnetischer Trenntechniken beschrieben. Die Methode gewährleistet die selektive Anreicherung von T-Zellen bei gleichzeitiger Ausschleusung anderer Blutzelltypen.
Die Isolierung reiner T-Zell-Populationen ist entscheidend für die Immunologieforschung, die Validierung von Zielstrukturen und die Entwicklung präklinischer Modelle in der Biopharma-Industrie. Die magnetische Trennung ermöglicht eine reproduzierbare Ausschaltung nicht-T-zelliger Populationen und unterstützt so die mechanistische Risikominimierung in der frühen Entdeckungsphase. Diese Technik bietet einen skalierbaren, standardisierten Arbeitsablauf zur Erzeugung krankheitsrelevanter Systeme, die in der Assay-Entwicklung und der Identifizierung von Leitverbindungen eingesetzt werden.
Diese Methode fügt sich nahtlos in den Entdeckungsprozess von der Target-Validierung über die Assay-Entwicklung bis hin zur präklinischen Evaluation ein und ermöglicht zuverlässige Verbindungstests in immunologisch ausgerichteten Pipelines.
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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026