$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- Akute lymphatische T-Zell-Leukämie (T-ALL) ist eine Krebsart, die auftritt, wenn Lymphozyten nicht reifen und als unreife Zellen, sogenannte Lymphoblasten, verbleiben. Diese abnormalen Zellen sind bei der Bekämpfung von Infektionen unwirksam. Da sich diese unreifen Zellen schnell teilen, sind sie gesunden Blutzellen zahlenmäßig überlegen und können zu Organen wie Milz, Leber und ZNS gelangen.
Die Tumore im Zebrafisch ähneln denen, die beim Menschen gebildet werden. Daher ist der Zebrafisch das bevorzugte Modell zur Erzeugung von T-ALL-Tumorzellen.
Beginnen Sie mit der Auswahl der transformierten Fische, die Fluoreszenzsignale zeigen, die auf die Ausbreitung von Tumorzellen hinweisen. Entfernen Sie den eingeschläferten Fischkopf und waschen Sie die Körperhöhle mit Heparinlösung, um überschüssige rote Blutkörperchen zu entfernen. Injizieren Sie nun einen geeigneten Puffer in die Körperhöhle. Üben Sie sanften Druck von außen aus und sammeln Sie den Puffer mit den Tumorzellen in einem Mikrofugenröhrchen.
Färben Sie die Zellen mit Trypanblau und betrachten Sie sie unter dem Mikroskop. Lebende Tumorzellen erscheinen fluoreszierend und farblos, wenn sie mit Trypanblau gefärbt sind, da die negativ geladene Zellmembran das negative Trypanblau daran hindert, in die Zelle einzudringen. Trypanblau dringt durch die poröse Membran in abgestorbene Zellen ein und färbt sie blau. Im folgenden Protokoll werden wir GFP-markierte T-ALL-Tumorzellen aus adulten Zebrafischen isolieren.
- Bereiten Sie 20 Milliliter 10 % hitzeinaktiviertes FBS in 0,9X PBS vor. Geben Sie 1 Milliliter der FBS/PBS-Lösung in eine Durchstechflasche mit einem Heparin-Natriumsalz, das 300 Einheiten des Antikoagulans enthält. Wählen Sie dann mit einem Epifluoreszenzmikroskop Fische aus, bei denen Tumorzellen zu 50 % des Körpers eingedrungen sind, oder Fische, bei denen festgestellt wurde, dass sie Schwierigkeiten beim Fressen oder Schwimmen haben.
Euthanasieren Sie den Fisch, indem Sie ihn in eine Lösung von 1 bis 2 Milligramm pro Milliliter Tricain in Fischwasser überführen. Beobachten Sie das Tier auf Kiemenbewegungen und Herzschlag, um die Euthanasie zu bestätigen.
Nachdem Sie den Kopf des Fisches entfernt haben, injizieren Sie mit einer Pipette 100 Mikroliter Heparinlösung in seine Körperhöhle, um überschüssige rote Blutkörperchen zu entfernen. Saugen Sie die gesamte austretende Flüssigkeit ab und pipettieren Sie sie in ein 1,5-Millimeter-Mikrozentrifugenröhrchen. Waschen Sie dann die Körperhöhle mit frischen Pipettenspitzen noch zwei weitere Male oder bis die Waschlösung kein Blut mehr enthält, und entsorgen Sie die bei allen Wäschen gesammelte Flüssigkeit.
Um Leukämiezellen zu sammeln, injizieren Sie 100 Mikroliter FBS-PBS-Lösung in die vorgewaschene Körperhöhle. Unter einem Präpariermikroskop üben Sie mit einer Pipettenspitze leichten Druck auf den Körper des Fisches aus, um die Tumorzellen herauszudrücken. Sammeln Sie die freigesetzte Flüssigkeit in einem 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen. Wiederholen Sie die Isolierung, bis die meisten Tumorzellen entnommen sind.
Sammeln Sie alle Zellen im selben 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen und bewahren Sie die erhaltene Suspension bei Raumtemperatur auf. Mischen Sie dann die isolierten Tumorzellen durch vorsichtiges Pipettieren, um Zellklumpen zu dissoziieren. Filtrieren Sie die Zellsuspension durch einen 40-Mikrometer-Maschenfilter und waschen Sie den Filter ein- bis zweimal mit 100 Mikrolitern FBS-PBS.
Bewahren Sie die Zellen nach dem Filtern bei Raumtemperatur auf. Mischen Sie schließlich in einem neuen Röhrchen 2 Mikroliter der Zellsuspension mit 18 Mikrolitern 0,04% steriler Trypanblaulösung. Laden Sie 10 Mikroliter der erhaltenen Suspension auf ein Hämozytometer und zählen Sie die lebensfähigen fluoreszierenden Tumorzellen.
- Es ist wichtig, eine saubere Probe von T-ALL-Zellen zu entnehmen. Die Konzentration von Hoechst 33342, die hier verwendet wird, basiert auf der Anzahl der entnommenen lebenden Tumorzellen. Zusätzliche Zelltrümmer oder Nicht-Tumorzellen können den Assay beeinträchtigen.