Name: Vorbereitung der Maus Pituitary Immunogen für die Induktion der experimentellen autoimmunen Hypophysitis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-17T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: Lernen Sie die Präparation von Maus-Hypophysenproteinen zur Induktion experimenteller autoimmuner Hypophysitis. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Krankheitsmechanismen und die Entwicklung neuer Therapieansätze.

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Diese Arbeit wurde vom NIH DK080351 zu PC unterstützt.

Experimentelles Protokoll Der erste Schritt in diese experimentelle Protokoll ist eine große Anzahl von Maus-Hypophyse zu sammeln. Der zweite Schritt ist, um die Drüsen zu homogenisieren, um ein Protein Extrakt herzustellen. Der dritte Schritt besteht darin, diese Proteine ​​mit einer öligen Mischung zu emulgieren. Schritt 1: Sammlung und Lagerung von Maus Hypophyse Die Maus Hypophyse sitzt an der Basis des Schädels in einer Vertiefung des Keilbeins genannt der Sella turcica, seitlich durch den Trigeminus-Nerven und nach vorn durch das Chiasma umgeben. Die Drüse ist von einer größeren Vorderlappen und kleineren hinteren und mittleren Lappen zusammengesetzt, und wiegt im Durchschnitt 1,9 mg. Hypophyse sind von Mäusen mit gemischten Stämme, Geschlechter und Altersgruppen, dazu bestimmt, durch die Tierstation eingeschläfert werden gesammelt. Zur Isolierung der Hypophyse wird die Maus getötet, die Haut über den Schädel seziert, und die Schädelknochen aufgeschnitten mit einer Schere. Das Gehirn wird angehoben, um die Hypophyse, die dann von den umgebenden Dura mater ist isoliert aussetzen, schöpfte aus dem Keilbein und in einem Plastikröhrchen auf Trockeneis. In der Regel verwenden wir 300 Maus Hypophyse für ein Protein Vorbereitung, eine Zahl, die von einer Person in 9 Stunden gesammelt werden können. Sobald die Sammlung abgeschlossen ist, wird das Rohr mit der Hypophyse bei -80 ° C bis bereit für den nächsten Schritt gespeichert. Schritt 2. Extraktion von Maus Hypophyse Proteine <ol><li> Fügen Sie die Homogenisierungspuffer um einen 15-ml-Falcon-Röhrchen (Katalog Nr. 352059) gehalten in einem Eisbad mit 250 ul Puffer für alle 100 Hypophyse gesammelt. Verwenden Sie einen Puffer der Ionenstärke, ähnlich dem, das physiologisch im Inneren des Zytoplasma der Zelle (0,2 M) und des physiologischen pH-Wert (7,4) ist. Wir verwenden Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (0,161 M, pH 7,4), ergänzt mit einem Protease-Inhibitor-Cocktail (Sigma-Aldrich, Katalog Nr. P8340-1 ml). </li><li> Fügen Sie die Hypophyse auf den Puffer kurz vor der Homogenisierung und legen Sie dann den Generator (5-mm Durchmesser) der Polytron-Homogenisator an der Unterseite des Falcon-Röhrchen. Homogenisieren bei maximaler Drehzahl für 30 Sekunden, sanft bewegten die Falcon-Röhrchen auf und ab, während man selbst in das Eisbad. Dann ruhen die Homogenat auf Eis für 1 min. Wiederholen Sie die Homogenisierung und Kühlung Schritte zwei weitere Male. Diese sanfte Homogenisierung brechen sollte der Zellen und Freisetzung cytosolische Proteine, ohne dass der Kerne. </li><li> Zum Entfernen Kerne, ungebrochen Gewebe und unlösliche Stoffe (z. B. Bindegewebe und denaturiertes Protein-Komplexe), Zentrifuge das Homogenat bei niedriger Geschwindigkeit (1000g) für 10 min bei 4 ° C. </li><li> Übertragen Sie den Überstand (jetzt Post-Nuclear Überstand, PNS), um eine neue Falcon-Röhrchen, wobei darauf zu verlassen, das Pellet ungestört, und speichern Sie die PNS auf Eis. </li><li> Das Pellet in das ursprüngliche Volumen des Homogenisierungspuffer (250 ul Puffer für jeweils 100 Hypophyse gesammelt), wie oben zu homogenisieren, zentrifugieren wie oben, und kombinieren Sie die zweite PNS mit dem ersten. </li><li> Aliquot der beiden gepoolten PNS Proben in Reaktionsgefäße und bei -80 ° C bis bereit für den nächsten Schritt. Dieses Protein Präparat kann bei -80 ° C gelagert werden, sondern allmählich verliert seine Wirksamkeit, so empfehlen wir es innerhalb von 6 Monaten der Vorbereitung nutzen. Verwenden Sie eine kleine Teilmenge der Protein-Ausbeute und Konzentration von der BCA-Assay (Pierce Katalog-Nr. 23225), und die Qualität der Proteine ​​mittels Gelelektrophorese zu bestimmen. In der Regel erhalten wir etwa 60 mg Protein von 300 Maus Hypophysen in 1,5 ml Homogenisierungspuffer, bei einer Konzentration um 40 mg / mL. </li></ol> Schritt 3. Herstellung der Emulsion für die Immunisierung <ol><li> Tauwetter schnell die gefrorenen Protein Aliquots für das Experiment benötigt und stellen Sie die Proteinkonzentration auf 20 mg / mL. Dieses Protein-Extrakt wird 1:1 mit komplettem Freund-Adjuvans (CFA, Sigma F-5881) mit 5 mg / ml Hitze abgetötet Mycobacterium tuberculosis (Becton Dickinson, 231141) emulgiert werden. Jede Maus wird 1 mg Hypophysenextrakt in 100 ul der Emulsion zu erhalten. </li><li> Das hier angegebene Beispiel ist für die Immunisierung von 10 Mäusen, in denen jeder Maus mit 100 ul der Emulsion mit 1 mg Hypophyse Proteine ​​injiziert werden. Lassen Sie zwei extra Mäuse für materielle Verluste während der Vorbereitung, so mit 12 mg des Hypophysen-Proteine. Aspire 600 ul der 20 mg / mL Hypophyse Proteinextrakt beschreiben oben mit einem 2,5 mL Hamilton gasdichte Spritze. Resuspendieren CFA durch Schütteln, und streben 600 ul des CFA in ein anderes 2,5 ml Hamilton-Spritze. Befestigen und sichern eine 22-Gauge-Mikro-Emulgieren Nadel auf die Spritze mit CFA gefüllt. Langsam schieben Sie den Kolben der Spritze CFA, so dass die Nadel mit CFA gefüllt ist, dann befestigen und sichern Sie das andere Endedie Nadel auf die Spritze mit Hypophysenextrakt gefüllt. </li><li> Drehen Sie dazu den Kolben der Spritze CFA für die Öl-Komponente in die wässrige Hypophysenextrakt, so dass nur eine kleine Menge gemischt wird, voranzutreiben. Dann drücken Sie den Kolben der Hypophysenextrakt Spritze in den CFA Spritze. Wiederholen Sie diesen Vorgang schrittweise Erhöhung der Menge an Material gemischt. Weiter, bis der gesamte Inhalt der beiden Spritzen gemischt werden. Sie erhalten eine weißliche und gleichmäßig verteilte Lösung, dass das Wasser-in-Öl-Emulsion darstellt. </li><li> Nachdem die Emulsion entsteht, wiederholen Sie die Hin-und Rückwärtsbewegung mindestens 500 Mal, damit die Emulsion gründlich gemischt. Nach dem letzten Mischzyklus, ist die 1:1-Wasser-in-Öl-Emulsion gebrauchsfertig und enthält eine Hypophysen-Protein-Konzentration von 10 mg / mL. Die Emulsion wird injiziert selben Tag subkutan in narkotisierten Mäusen SJL werden, wie in der Begleiter JoVE Artikel beschrieben. </li></ol>

<ol><li>Caturegli, P., Newschaffer, C., Olivi, A., Pomper, M. G., Burger, P. C., Rose, N. R. Autoimmune Hypophysitis Endocr Rev. 26, 599-614 (2005).</li>
<li>Blansfield, J. A., Beck, K. E., Tran, K., Yang, J. C., Hughes, M. S., Kammula, U. S., Royal, R. E., Topalian, S. L., Haworth, L. R., Levy, C., Rosenberg, S. A., Sherry, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytotoxic+T-lymphocyte-associated+antigen-4+blockage+can+induce+autoimmune+hypophysitis+in+patients+with+metastatic+melanoma+and+renal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunother%22%5BJournal%5D)">Cytotoxic T-lymphocyte-associated antigen-4 blockage can induce autoimmune hypophysitis in patients with metastatic melanoma and renal cancer.</a> J Immunother. 28, 593-598 (2005).</li>
<li>Tzou, S. C., Lupi, I., Landek, M., Gutenberg, A., Tzou, Y. M., Kimura, H., Pinna, G., Rose, N. R., Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+Hypophysitis+of+SJL+mice%3A+Clinical+Insights+from+a+New+Animal+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Autoimmune Hypophysitis of SJL mice: Clinical Insights from a New Animal Model.</a> Endocrinology. 149, 3461-3469 (2008).</li>
<li>Goudie, R. B., Pinkerton, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anterior+hypophysitis+and+Hashimoto%27s+disease+in+a+woman%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pathol+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Anterior hypophysitis and Hashimoto's disease in a woman.</a> J Pathol Bacteriol. 83, 584-585 (1962).</li>
<li>Caturegli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+hypophysitis%3A+an+underestimated+disease+in+search+of+its+autoantigen%28s%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Autoimmune hypophysitis: an underestimated disease in search of its autoantigen(s).</a> J Clin Endocrinol Metab. 92, 2038-2040 (2007).</li>
</ol>

Trotz der Tatsache, dass der erste Patient mit Autoimmun-Hypophysitis in 1962 4 wurde berichtet, bleiben die pathogenen Hypophyse Autoantigene identifiziert 5 sein. Tiermodelle können sehr nützlich sein, um diese Autoantigene zu identifizieren, Beihilfe zur Entdeckung von Biomarkern, die übersetzbar Patientenversorgung leisten. Dieser Artikel hat eine einfache Verfahrensweise zur Herstellung von Hypophysen-Proteine ​​in einer Form, die geeignet für Induktion autoimmune Hypophysitis bei Versuchstier...

<table><tbody><tr><td>15-ml-Falcon-Röhrchen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puffer zur Homogenisierung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Proteaseinhibitorcocktail</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polytron-Homogenisator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>BCA-Assay</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>Vollständiges Freund&amp;rsquo;sche Adjuvans (CFA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F-5881</td><td></td></tr><tr><td>Mycobacterium tuberculosis</td><td>BD Biosciences</td><td>231141</td><td></td></tr><tr><td>2,5-mL-Hamilton-Gasspritze</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>22-Gauge-Mikroemulgier-Nadel</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

vorbereitung der maus pituitary immunogen für die induktion der experimentellen autoimmunen hypophysitis

Preparation of Mouse Pituitary Immunogen for the Induction of Experimental Autoimmune Hypophysitis

Autoimmune Hypophysitis ist eine chronische Entzündung der Hypophyse verursacht oder begleitet von Autoimmunität 1. Es ist traditionell eine seltene Erkrankung, aber die Berichterstattung hat sich in den letzten Jahren zugenommen. Hypophysitis in der Tat entwickelt sich nicht selten als &quot;Nebenwirkung&quot; bei Krebspatienten mit Antikörpern, die hemmenden Rezeptoren auf T-Lymphozyten, wie CTLA-4 2 und PD-1-Rezeptoren exprimiert Block behandelt. Autoimmune Hypophysitis kann experimentell durch die Injektion von Mäusen mit Hypophysen-Proteine ​​mit einem Adjuvans 3 gemischte induziert werden. In diesem Video-Artikel werden wir zeigen, wie Proteine ​​aus Maus Hypophyse und wie man sie in eine geeignete Form für die Induktion autoimmune Hypophysitis in SJL Mäusen vorbereiten zu extrahieren.

Autoimmune Hypophysitis kann in Mäusen durch Injektion ein Auszug aus Maus Hypophyse Proteine ​​reproduziert werden.

Vorbereitung der Maus Pituitary Immunogen für die Induktion der experimentellen autoimmunen Hypophysitis

Die autoimmune Hypophysitis ist eine chronische Entzündung der Hypophyse, die durch Autoimmunität verursacht wird oder mit dieser einhergeht1. Traditionell wurde sie als eine ...

Die autoimmune Hypophysitis ist gekennzeichnet durch eine Vergrößerung der Hypophyse und einen Mangel an einem oder mehreren Hypophysenhormonen. Die ursächlichen Autoantigene sind weiterhin unbekannt. Hier wird ein Protokoll zur Herstellung von Maus-Hypophysenproteinen zur Untersuchung dieser Erkrankung vorgestellt.Zunächst werden Hypophysen von euthanasierten Mäusen isoliert. Anschließend werden die Hypophysen homogenisiert, um die Zellen mechanisch zu zerstören und zytoplasmatische Proteine freizusetzen. Das Homogenat wird durch Zentrifugation bei niedriger Geschwindigkeit geklärt und hinsichtlich der Menge mittels kolorimetrischem BCA-Assay sowie hinsichtlich der Qualität durch Polyacrylamid-Gelelektrophorese analysiert.Schließlich wird der wässrige Proteinhomogenat mit einem öligem Adjuvans vermischt. Diese Mischung wird anschließend in Mäuse injiziert, um ein Mausmodell zu erzeugen, das einer autoimmunen Hypophysitis ähnelt. Wie im begleitenden Video gezeigt, wurden vier Techniken zur Induktion einer Hypophysitis bei Versuchstieren beschrieben.Die in diesem Artikel vorgestellte Technik, bei der ein Gemisch von Hypophysenproteinen mit Influenza-Adjuvans injiziert wird, ist die älteste und stammt aus den 1960er Jahren. Andere Ansätze waren die Injektion löslicher Glykoproteine des Rötelnvirus im Jahr 1992, die stereotaktische Injektion eines Adenovirus direkt in die Hypophyse im Jahr 2002 sowie die Transplantation einer Hypophyse von einer Rattenstamm unter die Nierenkapsel eines anderen Rattenstamms im Jahr 2010. Der Hauptvorteil des Verfahrens mit Florenz-Adjuvans liegt darin, dass es heutzutage weniger invasiv ist, konsistenter und vor allem genauer bei der Induktion einer Erkrankung, die der menschlichen Erkrankung eng ähnelt.Obwohl die Fremdadjuvanztechnik bereits seit den 1960er Jahren beschrieben wurde, erwies sie sich als wenig wirksam zur Induktion einer Hypophysitis. Als ich meine Doktorarbeit begann, konnte ich mit dem veröffentlichten Fremdadjuvanzprotokoll nur eine geringe Inzidenz und Schwere einer Hypophysitis erzielen. Die Situation verbesserte sich signifikant, als mir die Idee kam, die Menge an Hypophysenproteinen im EM-Emulsion um das Zehnfache zu erhöhen.Obwohl diese Methode Einblicke in die Pathogenese der autoimmunen Hypophysitis ermöglichen kann, lässt sie sich auch zur Untersuchung anderer Autoimmunerkrankungen anwenden, bei denen die Autoantigene noch nicht identifiziert wurden. Im Allgemeinen haben Personen, die neu in dieser Methode sind, vor allem bei dem letzten Schritt, der Herstellung des Randes, Schwierigkeiten, da dieser manuelle Geschicklichkeit, Zeit und Engagement erfordert. Eine visuelle Demonstration ist daher entscheidend, um zu verstehen, wie eine geeignete Emulsion hergestellt werden sollte.Die Bedeutung dieser Technik reicht über den Bereich der Autoimmunität hinaus. Die Kenntnis der Herstellung des Antigens für die Immunisierung kann auch bei der Produktion monoklonaler Antikörper oder beim Testen neuer Impfstoffe genutzt werden. Diese Technik wird von S. Zoo Heroic Ura und Mayland al Gato aus meinem Labor demonstriert.Die Maushypophyse ist eine zylindrisch geformte Drüse, die an der Schädelbasis in einer Vertiefung des Keilbeins liegt, die als Sella turcica bezeichnet wird. Die Drüse wird seitlich von den Nervi trigemini und anterior vom Chiasma opticum begrenzt. Sie besteht aus einem größeren vorderen Lappen sowie kleineren mittleren und hinteren Lappen.Um die Hypophyse zu isolieren, den euthanasierten Mäuserücken mit einer Schere abtrennen und dann parallele Schnitte von der Rückseite zur Vorderseite des Schädels führen. Das Gehirn anheben und nach hinten umklappen, um die Hypophyse freizulegen, die als Zylinder im Kontext eines gleichschenkligen Dreiecks erscheint. Die Hypophyse bildet dabei die Basis, die Nervi trigemini die Seiten und die Chiasma optica den Scheitelpunkt.Umkreisen Sie die Drüse mit den Spitzen geschlossener Pinzetten, um die umgebende Hirnhaut zu durchtrennen. Fassen Sie dann mit einer feinen Pinzette die Hypophyse aus der Zelle von Turca und legen Sie sie in ein Plastikröhrchen auf Trockeneis. Sammeln Sie für eine Präparation 300 Hypophysen von Mäusen.Diese Sammlung erfordert ungefähr neun Personenstunden. Sobald die Sammlung abgeschlossen ist, lagern Sie die Hypophysen bei minus 80 Grad Celsius, bis sie benötigt werden. Stellen Sie ein 15-Milliliter-Falcon-Röhrchen in ein Eisbad.Fügen Sie dem Reagenzglas 250 Mikroliter Homogenisierungspuffer hinzu. Geben Sie für jeweils 100 kurz vor der Homogenisierung gesammelte Hypophysen die Hypophysendrüsen der Maus in den Puffer. Anschließend platzieren Sie die Spitze des Polytron-Homogenisators, einen Generator mit fünf Millimeter Durchmesser, auf den Boden des Falcon-Röhrchens, das die Hypophysen der Maus und den Puffer enthält, und homogenisieren 30 Sekunden lang mit maximaler Geschwindigkeit.Vorsichtiges Bewegen des Röhrchens auf und ab, während es weiterhin auf Eis gehalten wird. Anschließend das Homogenat eine Minute lang auf Eis ruhen lassen. Die Homogenisierung und Abkühlung noch zweimal wiederholen.Diese schonende Homogenisierung sollte die Zellen zerstören und die Proteine freisetzen, ohne die Kerne zu zerstören. Zentrifugieren Sie das Homogenat bei niedriger Geschwindigkeit, etwa 1000 G für 10 Minuten bei vier Grad Celsius, um die Kerne, nicht aufgelöstes Gewebe sowie unlösliche Materialien wie Bindegewebe und denaturierte Protein-Komplexe zu sedimentieren. Achten Sie darauf, den Pellet nicht aufzuwirbeln.Überführen Sie das SNA, das nun als postnukleäres Homogenat oder PNS bezeichnet wird, in ein neues Falcon-Röhrchen. Bewahren Sie das PNS auf Eis auf, resuspendieren Sie das Pellet mit dem gleichen Volumen Puffer für die Homogenisierung wie zuvor, homogenisieren und zentrifugieren Sie erneut wie zuvor. Nach dem Vereinen der beiden PNS-Proben pipettieren Sie die Lösung in mehrere Mikrozentrifugenröhrchen. Lagern Sie die Mikrozentrifugenröhrchen bei minus 80 Grad Celsius, bis sie benötigt werden. Diese Proteinpräparation ist bei minus 80 Grad Celsius stabil, verliert jedoch allmählich ihre Wirksamkeit. Daher wird empfohlen, sie innerhalb von sechs Monaten nach der Herstellung zu verwenden.Behalten Sie eine kleine Aliquotprobe des PNS zurück, um die Proteinmenge und -konzentration mittels der Biuret-Reaktion zu bestimmen. Anschließend wird die Proteinqualität durch Gelelektrophorese aus 300 Maushypophysen überprüft, die ein durchschnittliches Gesamtgewicht von etwa 570 Milligramm aufweisen. Erwarten Sie eine Ausbeute von 60 Milligramm Hypophysenproteinen, also ein Milligramm Protein pro 10 Milligramm Gewebe.Die Protein-Konzentration liegt typischerweise bei etwa 40 Milligramm pro Milliliter. Das hier dargestellte Beispiel dient der Immunisierung von 10 Mäusen. Planen Sie ein, jede Maus mit 100 Mikrolitern Emulsion zu injizieren, die ein Milligramm Hypophysenprotein enthält. Um Materialverluste während der Vorbereitung einzuplanen, werden hier für zwei zusätzliche Mäuse 12 Milligramm Proteinemulsion hergestellt.Beginnen Sie mit dem schnellen Auftauen der gefrorenen Proteinportionen, indem Sie diese in den Händen erwärmen. Stellen Sie die Protein-Konzentration mit PBS auf 20 Milligramm pro Milliliter ein. Ziehen Sie anschließend 600 Mikroliter des Hypophysen-Proteinextrakts, entsprechend 12 Milligramm, in eine 2,5-Milliliter-Gas-Tite-Hamilton-Spritze auf und resuspendieren Sie den kompletten FRONS-Adjuvans oder CFA, der fünf Milligramm pro Milliliter hitzeabgetötetes Mycobacterium tuberculosis enthält, durch manuelles Schütteln.Ziehen Sie anschließend 600 Mikroliter der CFA in eine weitere 2,5-Milliliter-Hamilton-Spritze auf. Bringen Sie eine 22-Gauge-Mikroemulgier-Nadel an der mit CFA gefüllten Spritze an und befestigen Sie sie sicher. Drücken Sie langsam den Kolben, sodass die Nadel mit CFA gefüllt wird.Befestigen und sichern Sie dann das andere Ende der Nadel an der anderen Spritze, die mit Hypophysen-Proteinextrakt gefüllt ist. Vermeiden Sie es, Luftblasen in den Spritzen einzuschließen. Bewegen Sie langsam den Kolben der CFA-Spritze, um die Ölkomponente in den wässrigen Hypophysen-Extrakt zu drücken, sodass nur eine geringe Menge vermischt wird.Danach den Kolben der Hypophysenextrakt-Spritze in die CFA-Spritze zurückschieben. Diesen Vorgang wiederholen, um schrittweise die Menge des gemischten Materials zu erhöhen, bis der gesamte Inhalt vermischt ist. Dieses weißliche und gleichmäßig verteilte Material stellt die Wasser-Öl-Emulsion dar.Einmal gebildet, den kompletten Hin- und Herbewegungszyklus mindestens 500 Mal wiederholen. Nach dem letzten Zyklus enthalten die Spritzen eine Emulsion aus Wasser und Öl im Verhältnis eins zu eins, bei der die Hypophysenproteinkonzentration nun 10 Milligramm pro Milliliter beträgt. Die Emulsion ist gebrauchsfertig; um die Qualität der Emulsion zu prüfen, einen Tropfen davon in ein Becherglas mit Wasser geben. Falls die Emulsion korrekt hergestellt wurde, bleibt der Tropfen auf der Oberfläche kompakt und zusammengehalten.Wenn die Emulsion von schlechter Qualität ist, breitet sie sich aus und zerfällt in kleinere Tröpfchen. Die Emulsion wird am selben Tag ihrer Herstellung in SJL-Mäuse injiziert, um eine experimentelle autoimmune Hypophysitis auszulösen. Dieses Protokoll ist in der begleitenden JoVE-Ausgabe detailliert beschrieben.Nachdem die Hypophyse gesammelt wurde und die Techniken beherrscht sind, kann man die Proteinisierung innerhalb einer Stunde durchführen, wobei man daran denken sollte, schnell und auf Eis zu arbeiten. Während dieses Schritts, während der Vorbereitung der Einweichung, die ungefähr eine Stunde erfordert. Denken Sie daran, in der anfänglichen Mischphase langsam und geduldig zu arbeiten, nach ihrer Entwicklung.Diese Technik ebnete den Weg für Forscher im Bereich der Autoimmunität, um die Mechanismen zu untersuchen, durch die autoreaktive Lymphozyten das Zielorgan erkennen und infiltrieren. Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man einen Proteinauszug aus der Hypophyse der Maus herstellt und wie man ihn mit Crohn's aju ones mischt, um eine Emulsion herzustellen, die als Immunogen verwendet werden kann. Vergessen Sie nicht, dass das Arbeiten mit Spritzen und complete flu edge ones, die inaktiviertes und trockenes mikrobakterielles Tuberkulose enthalten, gefährlich sein kann, wenn Sie sich versehentlich verletzen.Verwenden Sie daher immer G-Glows und entsorgen Sie die Nadeln ordnungsgemäß, während Sie diesen Vorgang durchführen.

preparation-mouse-pituitary-immunogen-for-induction-experimental

Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Dieses Video zeigt, wie autoimmune Hypophysitis in SJL Mäusen und wie sie ihre Strenge durch Histopathologie beurteilen zu induzieren.

Induktion der experimentellen autoimmunen Hypophysitis in SJL Mäuse

Dieses Video zeigt eine effiziente Homogenisierungstechnik zur Erzeugung einer Antigen-adjuvanten Emulsion zur Induktion einer experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis (EAE) in einem Mausmodell. Die Emulsion enthält ein Autoantigen – Myelin-Oligodendrozyten-Glykoprotein (MOG) – in der Wasserphase, umgeben von einer kontinuierlichen Ölphase, die aus einem inaktivierten pathogenen Bakterium besteht. Die Emulsion sorgt für eine anhaltende Freisetzung von Antigenen für eine verlängerte...

Herstellung einer Antigen-Adjuvans-Emulsion zur Induktion der autoimmunen Enzephalomyelitis

Das Video zeigt die Induktion einer experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis in einem Mausmodell durch Injektion einer Kombination aus Myelin-Oligodendrozyten-Glykoproteinen und inaktiviertem Mycobacterium tuberculosis. Das Modell ermöglicht es Forschenden, Krankheitsmechanismen zu untersuchen und therapeutische Interventionen zu testen.

Induktion einer experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis im Mausmodell

In diesem Video wird ein Mausmodell für Multiple Sklerose mit Hilfe der experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis (EAE) erstellt. Der Maus wird eine Emulsion injiziert, die ein neuronales Peptid und ein Adjuvans enthält, wodurch eine Immunantwort ausgelöst wird, die autoreaktive T-Zellen aktiviert. Darauf folgt eine Injektion von Pertussis-Toxin (PTX), um die Durchlässigkeit der Blut-Hirn-Schranke zu erhöhen, so dass die autoreaktiven T-Zellen das Gehirn infiltrieren können. Diese...

Die Transplantation von neuronalen Stammzellen / Vorläuferzellen (NPCs) hält große Versprechungen in der regenerativen Neurologie. Die systemische Verabreichung von NPCs ist in effektive, invasiv und therapeutisch sehr wirksam Protokoll wandte sich Stammzellen im Gehirn und Rückenmark von Nagern und Primaten durch experimentelle chronisch entzündliche Schädigung des zentralen Nervensystems betroffen zu liefern.

Die systemische Injektion von Neural Stem / Progenitor-Zellen in Mäusen mit chronischer EAE

In diesem Bericht stellen wir ein Protokoll vor, das es dem Prüfarzt ermöglicht, ein Mausmodell der intraokularen Uveitis zu erstellen. Dieses etablierte Modell, das gemeinhin als experimentelle Autoimmun-Uveitis (EAU) bezeichnet wird, erfasst viele Aspekte menschlicher Erkrankungen. Im Folgenden beschreiben wir, wie das Fortschreiten der Krankheit mit mehreren Ablesungen induziert und überwacht werden kann.

Experimentelle autoimmune Uveitis: Ein intraokulares entzündliches Mausmodell

Das vorliegende Protokoll beschreibt die Induktion einer experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis in einem Mausmodell unter Verwendung von Myelin-Oligodendrozyten-Glykoprotein und die Überwachung des Krankheitsprozesses mit einem klinischen Scoring-System. Experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis-bezogene Symptome werden mittels Mausfemur-Mikro-Computertomographie und Freilandtest analysiert, um den Krankheitsprozess umfassend zu beurteilen.

Induktion und diverse Bewertungsindikatoren der experimentellen autoimmunen Enzephalomyelitis

Es wurden mehrere Arten von Tiermodellen der Hashimoto-Thyreoiditis etabliert, ebenso wie die spontane Autoimmunthyreoiditis bei der NOD-Maus. H-2h4-Mäuse sind ein einfaches und zuverlässiges Modell für die HT-Induktion. Dieser Artikel beschreibt diesen Ansatz und bewertet den pathologischen Prozess für ein besseres Verständnis des SAT-Mausmodells.

Generierung eines Mausmodells für spontane Autoimmunthyreoiditis

Um eine experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis, ein Tiermodell für Multiple Sklerose, zu induzieren, werden Mäuse mit einer Wasser-in-Öl-Emulsion immunisiert, die ein Autoantigen und ein komplettes Freund-Adjuvans enthält. Während für die Herstellung dieser Emulsionen mehrere Protokolle existieren, wird hier ein schnelles, einfaches und standardisiertes Homogenisierungsprotokoll für die Emulsionsherstellung vorgestellt.

Eine schnelle, einfache und standardisierte Homogenisierungsmethode zur Herstellung von Antigen/Adjuvans-Emulsionen zur Induktion experimenteller autoimmuner Enzephalomyelitis

Die experimentelle autoimmune Enzephalomyelitis ist eines der am weitesten verbreiteten murinen Modelle der Multiplen Sklerose. Im aktuellen Protokoll werden C57BL/6J-Mäuse beiderlei Geschlechts mit dem Myelin-Oligodendrozyten-Glykoproteinpeptid immunisiert, was hauptsächlich zu einer aufsteigenden Parese des Schwanzes und der Gliedmaßen führt. Hier besprechen wir das Protokoll der EAE-Induktion und -Auswertung.

Modellierung der Multiplen Sklerose bei beiden Geschlechtern: MOG35-55-induzierte experimentelle Autoimmunenzephalomyelitis

Lernen Sie die Präparation von Maus-Hypophysenproteinen zur Induktion experimenteller autoimmuner Hypophysitis. Diese Methode ermöglicht die Untersuchung von Krankheitsmechanismen und die Entwicklung neuer Therapieansätze.

Vorbereitung der Maus Pituitary Immunogen für die Induktion der experimentellen autoimmunen Hypophysitis

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