Name: Muscle-Rezeptor-Organe in der Crayfish Abdomen: Ein Schülerlabor Übung in Propriozeption (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-18T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 50 s
Description: Erfahren Sie die Präparation und elektrophysiologische Ableitung primärer sensorischer Neuronen aus dem Abdomen von Flusskrebsen zur Untersuchung propriozeptiver Mechanismen. Diese Methode veranschaulicht die Korrelation von Gelenkbewegungen mit neuronaler Aktivität.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Unterstützt von der University of Kentucky, Department of Biology, Office of Undergraduate Studies and College of Arts &amp; Sciences.

<ol><li>Alexandrowicz, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+receptor+organs+in+the+abdomen+of+Homarus+vulgaris+and+Palinurus+vulgaris%5BTitle%5D)+AND+%22Q.+J.+Microsc.+Sci%22%5BJournal%5D)">Muscle receptor organs in the abdomen of Homarus vulgaris and Palinurus vulgaris.</a> Q. J. Microsc. Sci. 92, 163-199 (1951).</li>
<li>Brown, H. M., Ottoson, D., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crayfish+stretch+receptor%3A+An+investigation+with+voltage-clamp+and+ion-sensitive+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Crayfish stretch receptor: An investigation with voltage-clamp and ion-sensitive electrodes.</a> J. Physiol. 284, 155-179 (1978).</li>
<li>Burgess, P. R., Wei, J. Y., Clark, F. J., Simon, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+of+kinesthetic+information+by+peripheral+sensory+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Signaling of kinesthetic information by peripheral sensory receptors.</a> Ann. Rev. Neurosci. 5, 171-187 (1982).</li>
<li>Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proprioceptive+neurons+of+chordotonal+organs+in+the+crab%2C+Cancer+magister+Dana+Decapoda%2C+Brachyura%29%5BTitle%5D)+AND+%22Crustaceana%22%5BJournal%5D)">Proprioceptive neurons of chordotonal organs in the crab, Cancer magister Dana Decapoda, Brachyura).</a> Crustaceana. 81, 447-475 (2008).</li>
<li>Cooper, R. L., Govind, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axon+composition+of+the+proprioceptive+PD+nerve+during+growth+and+regeneration+of+lobster+claws%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">Axon composition of the proprioceptive PD nerve during growth and regeneration of lobster claws.</a> J. Exp. Zool. 260, 181-193 (1991).</li>
<li>Cooper, R. L., Ward, E., Braxton, R., Li, H., Warren, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+serotonin+and+ecdysone+on+primary+sensory+neurons+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Microscopy+Res.+Technique%22%5BJournal%5D)">The effects of serotonin and ecdysone on primary sensory neurons in crayfish.</a> Microscopy Res. Technique. 60, 336-345 (2003).</li>
<li>Donelan, J. M., McVea, D. A., Pearson, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force+regulation+of+ankle+extensor+muscle+activity+in+freely+walking+cats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Force regulation of ankle extensor muscle activity in freely walking cats.</a> J. Neurophysiol. 101, 360-371 (2009).</li>
<li>Eckert, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reflex+relationships+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish.+I.+Feedback+inhibition+of+the+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. I. Feedback inhibition of the receptors.</a> J. Cell. Comp. Physiol. 57, 149-162 (1961).</li>
<li>Eckert, R. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reflex+relationships+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish.+II.+Stretch+receptor+involvement+during+the+swimming+reflex%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Reflex relationships of the abdominal stretch receptors of the crayfish. II. Stretch receptor involvement during the swimming reflex.</a> J. Cell. Comp. Physiol. 57, 163-174 (1961).</li>
<li>Edwards, C., Ottoson, D., Rydqvist, B., Swerup, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+permeability+of+the+transducer+membrane+of+the+crayfish+stretch+receptor+to+calcium+and+other+divalent+cations%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci%22%5BJournal%5D)">The permeability of the transducer membrane of the crayfish stretch receptor to calcium and other divalent cations.</a> Neurosci. 6, 1455-1460 (1981).</li>
<li>Elekes, K., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+types+of+synaptic+connections+in+crayfish+stretch+receptor+organs%3A+an+electron+microscopic+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurocytol%22%5BJournal%5D)">New types of synaptic connections in crayfish stretch receptor organs: an electron microscopic study.</a> J. Neurocytol. 16, 613-626 (1987).</li>
<li>Elekes, K., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunocytochemical+evidence+for+the+GABAergic+innervation+of+the+stretch+receptor+neurons+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci%22%5BJournal%5D)">Immunocytochemical evidence for the GABAergic innervation of the stretch receptor neurons in crayfish.</a> Neurosci. 22, 1111-1122 (1987).</li>
<li>Erxleben, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stretch-activated+current+through+single+ion+channels+in+the+abdominal+stretch+receptor+organ+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Stretch-activated current through single ion channels in the abdominal stretch receptor organ of the crayfish.</a> J. Gen. Physiol. 94, 1071-1083 (1989).</li>
<li>Mill, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crustacean+abdominal+and+thoracic+muscle+receptor+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Structure+and+function+of+proprioceptors+in+the+invertebrates%22%5BJournal%5D)">Crustacean abdominal and thoracic muscle receptor organs.</a> Structure and function of proprioceptors in the invertebrates. , Chapman & Hall. New York. 65-114 (1976).</li>
<li>Florey, E., Florey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microanatomy+of+the+abdominal+stretch+receptors+of+the+crayfish+Astacus+fluviatilis+L%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Microanatomy of the abdominal stretch receptors of the crayfish Astacus fluviatilis L.</a> J. Gen. Physiol. 39, 69-85 (1955).</li>
<li>Hartman, H. B., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+and+molting+effects+on+the+proprioceptor+organ+in+the+Dungeness+crab%2C+Cancer+magister%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Regeneration and molting effects on the proprioceptor organ in the Dungeness crab, Cancer magister.</a> J. Neurobiol. 25, 461-471 (1994).</li>
<li>Hunt, C. C., Wilkerson, R. S., Fukami, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ionic+basis+of+the+receptor+potential+in+primary+endings+of+mammalian+muscle+spindles%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Ionic basis of the receptor potential in primary endings of mammalian muscle spindles.</a> J. Gen. Physiol. 71, 683-698 (1978).</li>
<li>Kuffler, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+activation+and+motor+control+of+stretch+receptors+in+lobster+and+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of activation and motor control of stretch receptors in lobster and crayfish.</a> J. Neurophysiol. 17, 558-574 (1954).</li>
<li>Kuffler, S. W., Eyzaguirre, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+inhibition+in+an+isolated+nerve+cell%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Synaptic inhibition in an isolated nerve cell.</a> J. Gen. Physiol. 39, 155-184 (1955).</li>
<li>Macmillan, D. L., Patullo, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Insights+for+robotic+design+from+studies+of+the+control+of+abdominal+position+in+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Bull%22%5BJournal%5D)">Insights for robotic design from studies of the control of abdominal position in crayfish.</a> Biol. Bull. 200, 201-205 (2001).</li>
<li>Marino, B. F., Stucchi, N., Nava, E., Haggard, P., Maravita, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distorting+the+visual+size+of+the+hand+affects+hand+pre-shaping+during+grasping%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Distorting the visual size of the hand affects hand pre-shaping during grasping.</a> Exp. Brain Res. , 202-202 (2010).</li>
<li>McCarthy, B. J., MacMillian, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+the+muscle+receptor+organ+in+the+control+of+the+abdominal+extension+in+the+crayfish+Cherax%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of the muscle receptor organ in the control of the abdominal extension in the crayfish Cherax.</a> J. Exp. Biol. 198, 2253-2259 (1995).</li>
<li>Mill, P. J., Lowe, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fine+structure+of+the+PD+proprioceptor+of+Cancer+pagurus.I.+The+receptor+strand+and+the+movement+sensitive+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+R.+Soc.+Lond.+B%22%5BJournal%5D)">The fine structure of the PD proprioceptor of Cancer pagurus.I. The receptor strand and the movement sensitive cells.</a> Proc. R. Soc. Lond. B. 184, 179-197 (1973).</li>
<li>Nakajima, Y., Onodera, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+properties+of+the+stretch+receptor+neurons+of+crayfish+with+particular+reference+to+mechanisms+of+sensory+adaptation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Membrane properties of the stretch receptor neurons of crayfish with particular reference to mechanisms of sensory adaptation.</a> J. Physiol. 200, 161-185 (1969).</li>
<li>Nakajima, Y., Takahashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Post-tetanic+hyperpolarization+and+electrogenic+Na+pump+in+stretch+receptor+neurone+of+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Post-tetanic hyperpolarization and electrogenic Na pump in stretch receptor neurone of crayfish.</a> J. Physiol. 187, 105-127 (1966).</li>
<li>Pasztor, V. M., MacMillan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+actions+of+proctolin%2C+octopamine+and+serotonin+on+the+crustacean+proprioceptors+show+species+and+neurone+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">The actions of proctolin, octopamine and serotonin on the crustacean proprioceptors show species and neurone specificity.</a> J. Exp. Biol. 152, 485-504 (1990).</li>
<li>Patel, M., Fransson, P. A., Karlberg, M., Malmstrom, E. M., Magnusson, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Change+of+body+movement+coordination+during+cervical+proprioceptive+disturbances+with+increased+age%5BTitle%5D)+AND+%22Gerontol%22%5BJournal%5D)">Change of body movement coordination during cervical proprioceptive disturbances with increased age.</a> Gerontol. 56, 284-290 (2010).</li>
<li>Patullo, B., Faulkes, Z., Macmillan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+receptor+organs+do+not+mediate+load+compensation+during+body+roll+and+defense+response+extensions+in+the+crayfish+Cherax+destructor%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">Muscle receptor organs do not mediate load compensation during body roll and defense response extensions in the crayfish Cherax destructor.</a> J. Exp. Zool. 290, 783-790 (2001).</li>
<li>Purali, N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Mechanisms+of+adaptation+in+a+mechanoreceptor.+A+study+of+mechanical+and+ionic+factors+in+the+crayfish+stretch+receptors+%5B%5D%22">Mechanisms of adaptation in a mechanoreceptor. A study of mechanical and ionic factors in the crayfish stretch receptors [dissertation]</a>. , Karolinska Institutet. Stockholm, Sweden. (1988).</li>
<li>Purali, N., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Block+of+potassium+outward+currents+in+the+crayfish+stretch+receptor+neurons+by+4-aminopyridine%2C+tetraethylammonium+chloride+and+some+other+chemical+substances%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Block of potassium outward currents in the crayfish stretch receptor neurons by 4-aminopyridine, tetraethylammonium chloride and some other chemical substances.</a> Acta Physiol. Scand. 146, 67-77 (1992).</li>
<li>Rabin, E., Muratori, L., Svokos, K., Gordon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tactile%2Fproprioceptive+integration+during+arm+localization+is+intact+in+individuals+with+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Lett%22%5BJournal%5D)">Tactile/proprioceptive integration during arm localization is intact in individuals with Parkinson's disease.</a> Neurosci. Lett. 470, 38-42 (2010).</li>
<li>Rydqvist, B., Purali, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potential-dependent+potassium+currents+in+the+rapidly+adapting+stretch+receptor+neuron+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Potential-dependent potassium currents in the rapidly adapting stretch receptor neuron of the crayfish.</a> Acta Physiol. Scand. 142, 67-76 (1991).</li>
<li>Rydqvist, B., Swerup, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulus-response+properties+of+the+slowly+adapting+stretch+receptor+neuron+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiol.+Scand%22%5BJournal%5D)">Stimulus-response properties of the slowly adapting stretch receptor neuron of the crayfish.</a> Acta Physiol. Scand. 143, 11-19 (1991).</li>
<li>Rossignol, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Locomotion+and+its+recovery+after+spinal+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Locomotion and its recovery after spinal injury.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 10, 708-716 (2000).</li>
<li>Rossignol, S., Giroux, N., Chau, C., Marcoux, J., Brustein, J., Reader, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pharmacological+aids+to+locomotor+training+after+spinal+injury+in+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Pharmacological aids to locomotor training after spinal injury in the cat.</a> J. Physiol. 533, 65-74 (2001).</li>
<li>Rossignol, S., Bouyer, L., Barthelemy, D., Langlet, C., Leblond, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recovery+of+locomotion+in+the+cat+following+spinal+cord+lesions%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res.+Rev%22%5BJournal%5D)">Recovery of locomotion in the cat following spinal cord lesions.</a> Brain Res. Rev. 40, 257-266 (2002).</li>
<li>Sohn, J., Mykles, D. L., Cooper, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+anatomical%2C+physiological+and+biochemical+characterization+of+muscles+associated+with+the+articulating+membrane+in+the+dorsal+surface+of+the+crayfish+abdomen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Zool%22%5BJournal%5D)">The anatomical, physiological and biochemical characterization of muscles associated with the articulating membrane in the dorsal surface of the crayfish abdomen.</a> J. Exp. Zool. 287, 353-377 (2000).</li>
<li>Svensson, E., Woolley, J., Wikström, M., Grillner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+dopaminergic+modulation+of+the+lamprey+spinal+locomotor+network%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Endogenous dopaminergic modulation of the lamprey spinal locomotor network.</a> Brain Res. 970, 1-8 (2003).</li>
<li>Swerup, C., Rydqvist, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+abdominal+stretch+receptor+organ+of+the+crayfish%5BTitle%5D)+AND+%22Comp.+Biochem.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">The abdominal stretch receptor organ of the crayfish.</a> Comp. Biochem. Physiol. A. 103, 433-431 (1992).</li>
<li>Vargas, J. G., Yu, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Audio+aided+electro-tactile+perception+training+for+finger+posture+biofeedback%5BTitle%5D)+AND+%22Conf.+Proc.+IEEE+Eng.+Med.+Biol.+Soc%22%5BJournal%5D)">Audio aided electro-tactile perception training for finger posture biofeedback.</a> Conf. Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 2008, 4230-4233 (2008).</li>
<li>Vedel, J. P., Clarac, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+reflex+actions+by+several+proprioceptive+inputs+in+the+rock+lobster+legs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Combined reflex actions by several proprioceptive inputs in the rock lobster legs.</a> J. Comp. Physiol. 130, 251-258 (1979).</li>
</ol>

Die Angaben in den zugehörigen Film und Text zur Verfügung gestellt haben wichtige Schritte vorgesehen, um ausreichend erfassen die Aktivität in der MRO des Krebses in situ. Ein Ziel unseres Berichts ist es, das Bewusstsein in das Potenzial für diese Vorbereitung Anstieg der Studierendenzahlen führen investigative Labors grundlegende Konzepte in der Sinnesphysiologie zu lehren. Die Vorbereitungen sind sehr robust in Lebensfähigkeit, während in einer minimalen Kochsalzlösung gebadet werden. Die Motorsteuerung auf der MRO Muskeln identifiziert worden ist, sondern die Regulierung der Übertragung und das Potenzial der synaptischen Plastizität sowie die Wirksamkeit der Übertragung für die erregenden und hemmenden Neuronen, bleibt eine offene Umgebung für die Untersuchung (Elekes und Florey, 1987a, b; Florey und Florey, 1955; Kuffler, 1954; Kuffler und Eyzaguirre, 1955). Dieses Präparat kann verwendet werden, um eine Reihe von experimentellen Bedingungen wie auch das natürliche Verbreitungsgebiet der Fortbewegung innerhalb der Tier untersuchen, um ein besseres Verständnis der Biologie des MRO für Primär-Research sowie demonstrative Zwecke verwendet werden. Edwards et al, 1981;;. Purali, 1997; Rydqvist und Purali, 1991; Rydqvist Die biophysikalischen Eigenschaften dieser sensorischen Neuronen wurde teilweise in ihrer Art der Anpassung ist in der neuronalen Aktivität mit einem gehaltenen Reiz (Brown et al, 1978 angesprochen und Swerup, 1991). Doch nur wenige Berichte Adresse Neuromodulation auf diesen sensorischen Rezeptoren und die damit verbundenen Muskelfasern (Cooper et al, 2003;. Pasztor und Macmillan, 1990). Die Berichte befassen sich mit nur ein paar der vielen Verbindungen, die bekanntermaßen in der Hämolymphe werden. Viele Modulatoren und Cocktails von Modulatoren bleiben auf dem MRO-Komplex (Muskeln und Neuronen) untersucht werden. Pasztor und Macmillan (1990) hat die Neuromodulatoren 5-HT und Octopamin auf die Aktivität der HRGs zwischen verschiedenen Arten Krebs zu untersuchen und stellte fest, dass es Arten Unterschiede. Sie haben nicht im Detail die langfristigen Einflüsse dieser Neuromodulatoren noch die Auswirkungen auf die Aktivität bei unterschiedlichen statischen Positionen der MRO zu untersuchen. . Rabin et al, 2009;;. Marino et al Diese Art der Zubereitung kann das Verständnis der Grundlagen der Sinneswahrnehmung und Regulierung der neuronalen Verarbeitung, die wichtig in der Rehabilitation und Disease-Management für Menschen mit motorischen Einheit Abnormitäten (Patel et al, 2009 wird die Beihilfe ., 2010). Die verschiedenen Arten von Ein-und Brand-Muster für die Überwachung der Gelenkbewegungen in zugänglichen wirbellosen Präparate können in der Robotik / Prothese (Macmillan und Patullo, 2001) verwendet werden. Es gibt immer noch viele Fragen warten auf Antworten in diesem Präparat, das von Vorteil sein in eine Reihe von Möglichkeiten kann.

<table><tbody><tr><td>PowerLab 26T</td><td><a href="http://www.adinstruments.com/products/hardware/corporate/product/ML856/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> ADInstruments</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>LabChart 7</td><td><a href="http://www.adinstruments.com/products/software/research/LabChart-Software/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> ADI Instruments, Colorado Springs, CO, USA</a></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

muscle-rezeptor-organe in der crayfish abdomen: ein schülerlabor Übung in propriozeption

Muscle Receptor Organs in the Crayfish Abdomen: A Student Laboratory Exercise in Proprioception 

Der primäre Zweck dieses Experiments ist es, die primären sensorischen Neuronen Informationen zu vermitteln gemeinsamer Bewegungen und Positionen als propriozeptive Informationen für ein Tier zu demonstrieren. Ein weiteres Ziel dieses Experimentes ist es, Anatomie der Vorbereitung durch die Färbung, Dissektion und Betrachten von Neuronen und sensorischen Strukturen lernen unter einem Binokular. Dies wird durch grundlegende neurophysiologische Ausrüstung an die elektrische Aktivität von einem gemeinsamen Rezeptor Orgel und Färbetechniken Rekord durchgeführt. Der Muskel-Rezeptor-Orgel (MRO)-System in der Krebse ist analog zu den intrafusalen Muskelspindel bei Säugetieren, die in die als eine vergleichende Modell, das leichter zugänglich für elektrophysiologische Aufzeichnungen ist AIDS. Darüber hinaus sind diese identifizierbaren sensorischen Neuronen unter Vorbereitungen. Die Zubereitung ist in einem minimalen Kochsalzlösung für Stunden, die zugänglich für studentische Laborübungen lebensfähig ist. Die MRO ist auch anfällig für Neuromodulation, die spannenden Fragen in den Standorten der modulatorische Wirkung und die Integration von dynamischen Signalen von Bewegungen und statischen Position zusammen mit einem Gewinn, der in das System geändert werden kann fördert.

Der primäre Zweck dieses Experiments ist zu verstehen, wie primären sensorischen Neuronen Informationen gemeinsamer Bewegungen und Positionen als propriozeptive Informationen für ein Tier zu vermitteln. Ein weiteres Ziel dieses Berichts ist gegenwärtig die Anatomie der Vorbereitung durch Dissektion und Betrachten von Neuronen unter einem Binokular.

Muscle-Rezeptor-Organe in der Crayfish Abdomen: Ein Schülerlabor Übung in Propriozeption

Der Hauptzweck dieses Experiments besteht darin, primäre sensorische Neuronen zu demonstrieren, die Informationen über Gelenkbewegungen und -positionen als propriozeptive ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Dissektion und Ableitung von primären Sinnesneuronen zu demonstrieren, die Informationen über Gelenkbewegungen und -stellungen als propriozeptive Signale für ein Tier übertragen. Dies wird erreicht, indem zunächst der Bauch der Krebse dissekiert und die dorsale Hälfte des Präparats freigelegt wird. Der zweite Schritt des Verfahrens besteht darin, die elektrische Aktivität aus einem Gelenkrezeptororgan durch Platzieren eines segmentalen Nervs in einer Saugelektrode abzuleiten. Der dritte Schritt des Verfahrens besteht darin, das Gelenk in verschiedene Positionen zu bewegen und die Bewegung mit dem Aktivitätsprofil zu korrelieren. Der letzte Schritt des Verfahrens ist die Untersuchung der mit dem Sinnesorgan assoziierten anatomischen Strukturen. Dieses Verfahren zeigt eine Methode zur Ableitung der Aktivität primärer propriozeptiver Neuronen und kann zur Untersuchung der Effekte biogener Neuromodulation verwendet werden.Diese Methode kann Dozenten dabei unterstützen, grundlegende Konzepte der Sinnesphysiologie zu vermitteln, wie beispielsweise die sensorische Adaption und die Beeinflussung der Sinneswahrnehmung durch Neuromodulatoren. Obwohl diese Methode Einblicke in die Propriozeption und Wirbellose ermöglicht, kann sie auch auf andere Modellorganismen wie Säugetiere angewendet werden, um die intrafusalen Muskelspindeln besser zu verstehen. Dieses Verfahren beschreibt, wie man die in den Abdominalmuskeln der Krebse lokalisierten Muskelrezeptororgane isoliert, stimuliert und von ihnen Ableitungen durchführt.Der erste Schritt besteht darin, den Krebsnerv und die Bauchmuskeln, die das Muskelrezeptororgan enthalten, zu präparieren. Wählen Sie einen Krebs – wir verwenden Procambarus clarkii mit einer Körperlänge von sechs bis zehn Zentimetern – und legen Sie ihn zwei bis drei Minuten lang auf Eis, um ihn zu betäuben. Die Präparation beginnt mit der Enthauptung des Krebses, wie durch die mit A markierten Linien in der Abbildung dargestellt. Der nächste Schnitt an Stelle B dient dazu, den Thorax vom Abdomen zu trennen, und der dritte Schnitt an Stelle C öffnet das Abdomen. Sobald die Krebsartige narkotisiert ist, halten Sie sie mit einer Hand hinter den Scheren fest. Schneiden Sie dann schnell von der Augenhöhle bis zur Kopfmitte auf beiden Seiten und entfernen anschließend den Kopf. Das Blut aus der Präparation ist klebrig, wenn es trocknet, daher reinigen Sie die Werkzeuge sofort. Nachdem die Krebse enthauptet wurde, schneiden Sie an der ventralen Seite zwischen Thorax und Abdomen. Schneiden Sie die Schwimmbeine ab.Falls die Krebsart männlich ist, schneiden Sie den Stylus ab. Es sollte nun leicht sein, den Abdomen vom Thorax zu trennen. Führen Sie eine Scherenklinge in den Abdomen ein und schneiden Sie entlang der Seitenbegrenzung, wobei die Scherenspitzen von der Präparation wegzeigen.Wiederholen Sie den Vorgang auf der gegenüberliegenden Seite. Nehmen Sie das hintere Ende der Pinzette und schieben Sie die Muskulatur und den Magen-Darm-Trakt von der dorsalen Seite der Präparation weg. Achten Sie darauf, nicht auf die Muskeln zu drücken.Schneiden Sie quer von lateral zu lateral am letzten Rippenbogen entlang, um die ventrale Seite des Schwanzes zu entfernen. Tauchen Sie das Präparat in Krebs-Ringer-Lösung ein und stellen Sie die Zigarrenschale mit dem Krebsabdomen unter das Präparationsmikroskop. Im nächsten Schritt richten Sie Ihre Stimulations- und Ableitungsvorrichtung ein.Der Versuchsaufbau besteht aus einer Faraday-Kabine, einem Mikroskop, einem Hochleistungs-Beleuchtungsgerät, einem Mikromanipulator und dem Salzlösungsbad. Die Faraday-Kabine dient dazu, äußere elektrische Felder abzuschirmen, die die elektrische Ableitung stören könnten. Positionieren Sie das Mikroskop so, dass es die Mikroskopierbühne überblickt.Bewegen Sie den Hochleistungsbeleuchter in eine günstige Position. Setzen Sie die Saugnadelelektrode in den Mikromanipulator ein und positionieren Sie den Mikromanipulator so, dass die Saugnadelelektrode einfach Zugang zum Salinbad hat. Saugen Sie Salzlösung in die Saugnadelelektrode, bis die Salzlösung mit dem Silberdraht in Kontakt steht.Ordnen Sie den anderen Draht so an, dass er nahe an der Spitze der Saugelektrode liegt, damit beide Drähte mit dem Salzlösungsbad in Kontakt stehen. Schließen Sie den Wechselstrom-DCD-Differenzverstärker an das Power Lab 26 T an und überprüfen Sie die Einstellungen am Verstärker. Schließen Sie die Kopfstufe an die Eingangsprobe des Verstärkers an.Verbinden Sie die elektrischen Kabel der Saugnadelelektrode mit der Kopfstufe. Die Kabel sollten so angeschlossen werden, dass rot oben links, grün in der Mitte und schwarz unten sitzt. Verbinden Sie nun das USB-Kabel vom Power Lab 2016 mit dem Computer.Stellen Sie sicher, dass sowohl der Verstärker als auch das Power Lab 26 T angeschlossen und eingeschaltet sind, bevor Sie Lab Chart 7 auf dem Computer öffnen. Starten Sie Lab Chart 7, die Datenaufzeichnungssoftware für den Computer. Das Willkommensfenster von Lab Chart öffnet sich. Schließen Sie es. Klicken Sie auf Einrichten. Klicken Sie unten links im Feld auf Kanaleinstellungen.Ändern Sie die Anzahl der Kanäle, indem Sie oben links im Diagramm auf „einen Kanal“ klicken. Stellen Sie die Zyklen pro Sekunde auf etwa 2K ein. Stellen Sie die Skalierung der Y-Achse rechts im Diagramm auf 500 oder 200 Millivolt ein.Klicken Sie auf Kanal eins. Klicken Sie auf den Eingangsverstärker. Wählen Sie die folgenden Einstellungen: single-ended, AC-gekoppelt, invert, um das Signal gegebenenfalls umzukehren, und Anti-Alias.Um die Datenaufzeichnung zu beginnen, klicken Sie auf „Start“, um die Datenaufzeichnung zu beenden. Klicken Sie auf „Stop“, um das Bad elektrisch zu erden, indem Sie einen silbernen Chlorid-Elektroden-Draht in das Bad geben und das andere Ende mit einem gemeinsamen Erdungspunkt verbinden. Falls das Erdungskabel das Bad verursacht elektrisches Rauschen, trennen Sie das Bad während der Aufnahme von der Erde. Der nächste Schritt besteht darin, die Muskeln und Nerven von Interesse freizulegen. Die tiefen medialen Extensormuskeln oder DEM werden anhand ihrer spiralförmigen Fasern identifiziert, während die tiefen lateralen Extensormuskeln oder DEL lineare Fasern aufweisen. Diese Abbildung zeigt eine Fotografie der präparierten DEM- und DEL-Muskeln, die mit einer Strichzeichnung der Muskeln ausgerichtet sind.Untersuchen Sie die Präparation unter dem Mikroskop und lokalisieren Sie die DEM- und DEL-Muskeln. Zu diesem Zeitpunkt sind die Muskelrezeptororgane selbst nicht sichtbar, da sie unterhalb der sichtbaren Muskeln liegen. Stechen Sie zwei Nadeln in den mittelsagittalen Bereich im distalen Teil des Abdomens zwischen den DEM-Muskeln an der ersten und zweiten Rippe.Suchen Sie unter dem Mikroskop nach dem Nerv, der die sensorischen Axone von den Muskelrezeptororganen führt. Achten Sie auf das Segment mit dem am besten zugänglichen Nerv. Der Nerv ist weiß und kann sichtbar gemacht werden, indem man mit einer Pipette Salzlösung auf das Präparat sprüht oder leicht auf das Präparat bläst.Dies bewirkt, dass sich der Nerv bewegt, wodurch seine Identifizierung erleichtert wird. Sobald Sie den Nerv lokalisiert haben, platzieren Sie mit Hilfe des Mikromanipulators die Saugelektrode direkt über dem Nerv. Ziehen Sie vorsichtig an der Spritze, um den Nerv in die Elektrode hineinzusaugen.Sie können sehen, wie der Nerv durch das Mikroskop in die Elektrode hineingesaugt wird. Klicken Sie zum Beginn des Experiments im Datenaufzeichnungsprogramm auf „Start“. Bewegen Sie mit einer Pinzette vorsichtig den Schwanz der Krebsschere um 180 Grad auf und ab.Verwenden Sie die Kommentarkennzeichnung in der Software, um den Stimulationswinkel für die spätere Datenanalyse zu notieren. Wiederholen Sie das Experiment unter einem Winkel von 45 Grad und zeichnen Sie die Winkeländerung mit der Kommentarkennzeichnung der Software auf. Wiederholen Sie dies bei einem Winkel von 90 Grad.Beachten Sie den Unterschied in der sensorischen Nervenantwort bei jedem Winkel. Wenn Sie die Aufnahme abgeschlossen haben, können Sie die muskulären Rezeptororgane direkt betrachten. Diese Abbildung zeigt die relativen Positionen der muskulären Rezeptororgane, gekennzeichnet als SA und RA für schnell adaptierende und langsam adaptierende, sowie der D-E-M-D-E-L- und SEM-Muskeln.Die Fotografie rechts wurde mit Methylenblau angefärbt. Um die Muskelrezeptororgane in Ihrer Präparation zu beobachten, färben Sie die Präparation zunächst mit Methylenblau an. Gießen Sie die Krebs-Ringer-Lösung aus der Cigar Box heraus und ersetzen Sie sie durch Methylenblau-Lösung. Schwenken Sie die Schale dann einige Minuten lang vorsichtig.Geben Sie anschließend das überschüssige Methylenblau in den Abfallbehälter und gießen Sie frische Kochsalzlösung auf die Präparation. Setzen Sie die Schale unter das Mikroskop zurück, um den überliegenden Muskel zu dissezieren, um die Muskelrezeptororgane freizulegen.Schneiden Sie das Segment entlang der Rippe seitlich zur Mittelsagittalebene, indem Sie ein Teil der Schere unter den Muskel legen und beim Schneiden entlang des Muskels nach oben ziehen. Sobald die Muskeln DEL eins und zwei durchtrennt sind, klappen Sie diese Muskeln zurück und betrachten Sie eine dünne Muskelschicht, die als oberflächlicher extensor medialis-Muskel oder SEM bezeichnet wird. Die Muskelrezeptororgane sind die beiden letzten medialen Fasern, die parallel zum Helixmuskel verlaufen.Seien Sie bei diesem Schritt sehr vorsichtig, um die Muskelrezeptororgane nicht zu beschädigen. Im mechanorezeptorischen System der Krebse existieren zwei unterschiedliche Arten von Dehnungsrezeptoren. Die phasischen Sinneseinheiten werden von schnellen motorischen Axonen innerviert, und die tonischen Sinneseinheiten werden von langsamen motorischen Axonen innerviert, wie in dieser Abbildung dargestellt.Wenn ein tonischer Rezeptor durch Dehnung stimuliert wird, passt er sich langsam an den Reiz an und setzt ein gleichmäßiges Feuermuster von Aktionspotentialen fort. Im Gegensatz dazu passt sich ein phasischer Rezeptor bei Dehnungsreiz schnell an und feuert nur ein kurzes Muster von Aktionspotentialen ab. Diese Aufzeichnung zeigt die Nervenantwort, wenn das Bauchsegment, das ihn enthält, gebogen wurde.Zunächst wurde das Segment in einem Winkel von 45 Grad gebogen und entspannt. Die nächste Aufnahme zeigt die Reaktion auf eine Beugung von 90 Grad mit anschließender Entspannung. Dies verdeutlicht, dass das schnelle Muskelrezeptororgan eine verstärkte Aktivität bei stärkerer Dehnung des MRO-Strangs aufweist.Diese nächste Aufnahme zeigt die Aktivität des Muskelrezeptororgans, die durch Beugen des Schwanzes und Halten in einer 45-Grad-Position ausgelöst wird. Beachten Sie die Anpassung der neuronalen Aktivität, die sich in einer verringerten Feuerrate zeigt. Eine sinnvolle Erweiterung dieses Experiments wäre es, zu untersuchen, ob Neuromodulatoren die Feuerrate verändert haben, den Anpassungsprozess der sensorischen Antwort aufzuzeichnen, indem die Feuerrate zu verschiedenen Zeitpunkten während einer konstanten Position gemessen und die Daten in eine Tabelle wie die hier gezeigte eingetragen werden, entsprechend diesem Verfahren.Andere Methoden, wie die Untersuchung der Wirkungen von Neurohormonen wie Topamin, Serotonin und Prolaktin, können getestet werden, um zusätzliche Fragen zu beantworten, beispielsweise bezüglich der zellulären Mechanismen von Verbindungen auf primäre sensorische Neuronen. Nach der Entwicklung dieses Präparats beschrieben Forscher den Ort der Aktionspotentialsinitiierung in Neuronen und ebneten Forschern auf dem Gebiet der Neurophysiologie den Weg, mechanische Transduktion sowie die Propriozeption von Gliedmaßen nicht nur bei Wirbellosen, sondern auch bei Wirbellosen zu erforschen. Dies ist ein hervorragendes Präparat, um viele Grundlagen der Neurophysiologie zu lehren.

muscle-receptor-organs-crayfish-abdomen-student-laboratory-exercise

Research

Forschung

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowissenschaften

Der Opener Muskeln des Krebses Bein ist bekannt für seine historische Bedeutung und experimentelle Vielseitigkeit in Muskel-Phänotyp, synaptischen Physiologie und Plastizität vorgestellt.

Historische Ansicht und Physiologie Demonstration am NMJ der Crayfish Opener Muscle

Dieser Artikel beschreibt, wie elektrophysiologischen Ableitungen der synaptischen Antworten auf die Extensoren Verhalten in den Fuß Bein eines Krebse und wie die Nervenendigungen werden visualisiert, um die Brutto-morphologischen Unterschiede von High-und Low-Output-Nervenendigungen zeigen.

Physiologische Aufnahmen von High-und Low Output NMJs auf der Crayfish Leg Streckmuskel

Die Experimente zeigen, eine einfache Möglichkeit für Studenten, um Erfahrungen bei der Prüfung Muskulatur, synaptische Antworten, die Auswirkungen der Ionengradienten und Durchlässigkeit auf Membranpotentiale zu gewinnen. Auch ist ein sinnlich-ZNS-motor-Muskel-Schaltung vorgestellt, um ein Mittel, um Wirkungen von Verbindungen auf einem neuronalen Schaltkreis-Test zeigen.

Membranpotentiale, Synaptic Responses, neuronalen, Neuromodulation und Muscle Histologie Mit dem Crayfish: Schülerlabor Übungen

In diesem Bericht zeigen wir Techniken, die verwendet werden, um die Biologie des Krebses Enddarm untersuchen lassen. Wir zeigen, wie ein Krebs Bauch sezieren und untersuchen die damit verbundenen Anatomie, Physiologie und Modulation der Aktivität. Die peristaltische Aktivität und Stärke der Kontraktionen werden mit einem Kraftaufnehmer.

Physiologische Experimente mit den Crayfish Enddarm: Ein Schülerlabor Übung

Dies ist ein Beispiel dafür, wie biologische Membranen verstanden mit elektrischen Modelle. Wir zeigen auch Verfahren zur Erfassung Aktionspotentiale aus dem Bauchmark der Krebse für Schüler orientiert Labors.

Modellierung biologischer Membranen mit Leiterplatten und Messung elektrischer Signale in Axone: Schülerlabor Übungen

Physiologischen und anatomischen Techniken werden gezeigt, Funktion und Struktur für die gemeinsame Propriozeptoren und Muskelspannung Rezeptoren in Krebstier Fuß Gliedmaßen zu adressieren.

Propriozeption und Spannungsrezeptoren in Crab Gliedmassen: Schülerlabor Übungen

Hier beschreiben wir die Dissektion des Bauchnervenstrangs der Krebse. Wir demonstrieren auch eine elektrophysiologische Technik zur Aufzeichnung der fiktiven Fortbewegung von Swimmeret-Motoneuronen.

Die swimmeret System der Crayfish: Ein praktischer Leitfaden für die Dissektion der Nervenstrang und extrazellulären Recordings der Motor Pattern

Wir haben zwei Methoden zur Untersuchung von Auswirkungen der visuelle Hinweise auf das Verhalten in der Abwesenheit von taktilen und chemische Reize entwickelt. Eine Methode besteht videotaping Reaktionen der Krebse zu reflektierenden Wänden in einem Aquarium, der andere untersucht Auswirkungen der visuellen Eingänge durch eine Live-Krebse hinter einer transparenten Partition zur Verfügung gestellt.

Recording Verhaltensreaktionen auf Reflection in Crayfish

Durch die Kennzeichnung die extrazellulären Domänen von Membranrezeptoren mit superecliptic pHluorin, und durch Abbilden diese Fusion Rezeptoren in kultivierten Maus Neuronen, können wir direkt visualisieren einzelnen vesikulären Insertionsereignisse der Rezeptoren in der Plasmamembran. Diese Technik wird maßgeblich bei der Aufklärung der molekularen Mechanismen, die Rezeptor-Insertion in die Plasmamembran.

Imaging Receptor Insertion in die Plasmamembran pHluorin-Tag in der Grundschule Cultured Mäuseneuronen

Oral Chemorezeption von Fettsäuren und die Verbindung mit Diät und fetthaltige Lebensmittel Präferenzen können die Identifizierung von Mechanismen, mit der Entwicklung von Übergewicht und warum Veränderungen in der Ernährung kann es schwierig für viele Menschen beteiligt sein können.

Mess Oral-Fettsäure-Schwellenwerte, Fett Wahrnehmung, Fatty Essen gefallen, und Papillen Dichte in Humans

Erfahren Sie die Präparation und elektrophysiologische Ableitung primärer sensorischer Neuronen aus dem Abdomen von Flusskrebsen zur Untersuchung propriozeptiver Mechanismen. Diese Methode veranschaulicht die Korrelation von Gelenkbewegungen mit neuronaler Aktivität.

Muscle-Rezeptor-Organe in der Crayfish Abdomen: Ein Schülerlabor Übung in Propriozeption

Weitere Videos entdecken