Trennung von inneren und äußeren Membranfraktionen von gramnegativen Bakterien

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Beginnen Sie mit der Gesamtmembranfraktion eines gramnegativen Bakteriums, einschließlich innerer und äußerer Membranvesikel, die in einer Saccharose niedriger Dichte suspendiert ist, die die strukturelle Integrität bewahrt.

Um die Membranvesikel zu trennen, geben Sie nacheinander Saccharoselösungen mit hoher und mittlerer Dichte in ein Ultrazentrifugenröhrchen.

Fügen Sie als Nächstes die Membranfraktion und die Saccharose niedriger Dichte hinzu, um einen diskontinuierlichen Saccharosegradienten zu erzeugen.

Ultrazentrifuge zur Trennung von Vesikeln anhand ihrer Dichte.

Die weniger dichten inneren Membranvesikel bilden oben eine Schicht.

Die dichteren Vesikel der äußeren Membran, die reich an Lipopolysacchariden und Proteinen sind, bilden eine Bande an der Grenzfläche von Saccharoselösungen mittlerer und hoher Dichte.

Sammeln Sie die innere Membranschicht und verwerfen Sie die Gradientenlösung, wobei eine kleine Menge übrig bleibt.

Sammeln Sie dann die äußere Membranschicht.

Fügen Sie jeder Fraktion zur Stabilisierung einen Speicherpuffer hinzu.

Zentrifugieren, um die Vesikel zu trennen und den Überstand zu entfernen.

Resuspendieren Sie die gereinigten Membranvesikel, homogenisieren Sie sie und lagern Sie sie bei niedrigen Temperaturen für die weitere Analyse.

Um den Saccharosegradienten vorzubereiten, halten Sie ein Röhrchen aus Polypropylen oder Ultra-Clear Open-Top in einer leicht geneigten Position.

Fügen Sie langsam zwei Milliliter der Saccharoselösung mit höherer Dichte hinzu. Fügen Sie dann vier Milliliter der Saccharoselösung niedrigerer Dichte hinzu. Bei der Vorbereitung des Dichtegradienten die Saccharoselösung langsam zugeben, um eine Vermischung der Schichten zu vermeiden.

Die Saccharoseschichten sollten leicht sichtbar sein und allgemein definiert erscheinen. Als nächstes fügen Sie die gesamte Membranfraktion hinzu, die zuvor in einem Milliliter isopykinischer Saccharoselösung niedriger Dichte resuspendiert wurde. Füllen Sie schließlich den Rest des Röhrchens, indem Sie etwa sechs Milliliter der isopyknischen Saccharose-Gradientenlösung mit niedriger Dichte hinzufügen.

Ultrazentrifugieren Sie die Proben mit einem schwingenden Schaufelrotor bei 288.000 G und vier Grad Celsius für 16 bis 23 Stunden. Schneiden Sie das Ende einer P1000-Pipettenspitze etwa fünf Milliliter von der Spitze entfernt ab. Nachdem die Zentrifugation abgeschlossen ist, verwenden Sie die Pipette, um die obere, braune Schicht vom Röhrchen zu entfernen.

Übertragen Sie diese Schicht, die die innere Membranfraktion enthält, zur Ultrazentrifugation in eine Polycarbonatflasche. Lassen Sie etwa zwei Milliliter der Saccharoselösung über der Grenzfläche zwischen der 53%igen Saccharose und der 73%igen Saccharose, um sicherzustellen, dass die untere, weiße, äußere Membranfraktion die innere Membranfraktion nicht kreuzt. Entfernen Sie erneut mit einer P1000-Pipettenspitze und entferntem Ende die äußere Membranschicht und übertragen Sie sie auf eine Polycarbonatflasche.

Füllen Sie den verbleibenden Hohlraum der Polycarbonatflasche mit isoliertem Membranspeicherpuffer und mischen Sie durch Inversion oder Pippettieren. Bewahren Sie die Proben auf Eis auf. Um die Membranen zu sammeln, werden die Polycarbonat-Flaschen eine Stunde lang bei 184.500 G und vier Grad Celsius ultrazentrifugiert.

Entsorgen Sie zum Schluss die Überstände und fügen Sie 500 bis 1.000 Mikroliter Lagerpuffer hinzu. Resuspendieren Sie die Membranen durch Dounce-Homogenisierung. Sammeln Sie die Proben in zwei Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen.

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Last updated: 1 August 2026