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Beginnen Sie damit, eine Kolonie gentechnisch veränderter Bakterien in ein flüssiges Medium zu impfen.
Diese Bakterien exprimieren in der äußeren Membran ein fluoreszierendes Fusionsprotein, eine äußere Schutzschicht.
Inkubieren Sie, damit die Bakterien extrazelluläre Vesikel (EVs) freisetzen, membrangebundene Nanostrukturen, die an der interzellulären Kommunikation beteiligt sind und das fluoreszierende Protein enthalten.
Übertragen Sie die Kultur in eine Flasche und zentrifugieren Sie sie bei niedriger Geschwindigkeit, um die Zellen zu pelletieren.
Übertragen Sie den Überstand, der EVs, zelluläre Proteine und Zelltrümmer enthält. Zentrifugieren Sie bei hoher Geschwindigkeit und entfernen Sie den Überstand, der Schmutz enthält.
Filtern Sie den Überstand durch eine Membran, um verbleibende Bakterien und Ablagerungen zu entfernen.
Beimpfen Sie eine Probe auf Agar und inkubieren Sie sie. Die fehlende Bildung von Bakterienkolonien bestätigt die Abwesenheit von Bakterien.
Übertragen Sie die Lösung in ein Ultrafiltrationsgerät mit einer semipermeablen Membran und einer Zentrifuge, um die EVs einzufangen und gleichzeitig kleinere Proteine zu eliminieren.
Sammeln Sie die konzentrierten EVs in einem Röhrchen für die nachgelagerte Analyse.
Beginnen Sie mit der Inokulation einzelner Kolonien von Escherichia coli in 250 bis 1000 Milliliter Luria-Bertani oder LB-Brühe mit einer sterilen Schlaufe. Inkubieren Sie die Kultur dann aerob in einem Schüttelinkubator bei 300 Umdrehungen pro Minute und 37 Grad Celsius. Nach 48 Stunden Inkubation klären Sie das Bakterienkulturmedium, indem Sie die Zellkulturen in saubere 500-Milliliter-Polypropylen-Zentrifugenflaschen überführen, um sie in einem Festwinkelrotor mit großer Kapazität 15 Minuten lang bei vier Grad Celsius und 5.000 Mal G zu zentrifugieren.
Übertragen Sie den Überstand in saubere Zentrifugenflaschen, indem Sie ihn 15 Minuten lang vorsichtig mit dem 10.000-fachen G in die Zentrifuge gießen. Übertragen Sie als Nächstes den Überstand auf eine 0,2-Mikron-Polyethersulfon-Vakuumfiltervorrichtung einer geeigneten Größe und schließen Sie die Filtrationsvorrichtung an eine Vakuumwandversorgung an. Wenn die Filtrationsrate erheblich abnimmt, bringen Sie das ungefilterte Material in ein neues Gerät.
Das gefilterte Medium kann über Nacht bei vier Grad Celsius gelagert oder sofort weiterverarbeitet werden. Um die vollständige Entfernung der lebensfähigen Zellen zu überprüfen, wird ein Aliquot des filtrierten Überstands auf geeignete Agarplatten verteilt und sichergestellt, dass nach der Inkubation unter optimalen Bedingungen für den Bakterienstamm keine Kolonien vorhanden sind. Zur Konzentration des gefilterten Mediums mit einem Volumen von 100 Millilitern wird 90 Milliliter gefiltertes Kulturmedium auf das Reservoir der Zentrifugal-Ultrafiltrationsvorrichtung mit einer Molekulargewichtsgrenze von 100 Kilodaltonnen geladen und das Medium in einem schwingenden Schaufelrotor bei vier Grad Celsius und 2.000 mal G in Abständen von 15 bis 30 Minuten zentrifugiert, bis das Volumen des Mediums im oberen Behälter auf weniger als 0,5 Milliliter konzentriert ist.
Um das Reservoir mit restlichem gefiltertem Nährmedium aufzufüllen, entfernen Sie den Durchfluss an der Unterseite des Geräts, um das Gleichgewicht wiederherzustellen. Wenn die Viskosität des konzentrierten Mediums im Reservoir sichtbar erhöht ist, verdünnen Sie das Medium mit PBS und konzentrieren Sie es durch Zentrifugation erneut, um nicht-extrazelluläre Vesikel oder EV-Proteine zu reduzieren, die kleiner als der Molekulargewichtsgrenzwert von 100 Kilodalton sind. Übertragen Sie dann das konzentrierte Medium in ein proteinarmes Bindungsröhrchen, um es über Nacht bei vier Grad Celsius zu lagern.