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Legen Sie einen mit Gelatine beschichteten Objektträger, der an eine mikrofluidische Pumpe angeschlossen ist, auf einen Mikroskoptisch.
Der Objektträger enthält primäre humane Endothelzellen, die unter fließenden Medien kultiviert wurden, mit Strings des von-Willebrand-Faktors oder VWF, einem Glykoprotein, auf der Zelloberfläche.
Diese Fäden werden durch die Stimulation der Zellen mit Histamin erzeugt.
Der kontrollierte Medienfluss, der durch die mikrofluidische Pumpe appliziert wird, fördert die VWF-Sekretion und das Abwickeln. Dadurch werden bestimmte Bindungsdomänen für die VWF-Zeichenfolgen verfügbar gemacht.
Stoppen Sie den Medienfluss, fügen Sie einen grünen Fluorophor-konjugierten VWF-spezifischen Antikörper hinzu und setzen Sie den Fluss fort, um die Strings mit dem Antikörper zu markieren.
Unterbrechen Sie den Medienfluss und führen Sie rot fluoreszierende Protein-exprimierende Pneumokokken-Bakterien ein.
Starten Sie den Fluss neu, um die Bakterien zu verteilen und die Anheftung an die exponierten Domänen durch Oberflächenadhäsine zu ermöglichen.
Visualisieren Sie mit Hilfe der Fluoreszenzmikroskopie die Bindung von Bakterien an die Fäden in Echtzeit.
Stoppen Sie den Medienfluss und erfassen Sie Z-Stapel-Bilder, um die Anheftung von Bakterien an die Endothelzellen zu quantifizieren.
Zur mikroskopischen Visualisierung stellen Sie die Fluidikeinheit in die 37 Grad Celsius heiße Heizkammer. Legen Sie den Objektträger auf den Tisch eines vorgewärmten Mikroskops.
Kontrolle der Zellmorphologie und der Integrität der HUVEC-Schicht vor der Injektion von Histamin und Bakterien in den Flusskreislauf. Behalten Sie die Flow-Einstellung bei. Induzieren Sie die Freisetzung von VWF aus endothelial lebensfähigen Palade-Körpern, indem Sie 136 Mikroliter einer 100 millimolaren Histamin-Stammlösung durch eine Injektionsöffnung in das EKGMS-Medium injizieren, das im Perfusionsschlauch zirkuliert.
Für den Immunfluoreszenznachweis von multimerisierten VWF-Strings injizieren Sie 20 Mikrogramm eines VWF-spezifischen FITC-konjugierten Antikörpers in einem Volumen von 200 Mikrolitern PBS in das zirkulierende 13,6 Milliliter EKGMS-Medium. Um die Pneumokokken-Bindung an die auf HUVEC-Zelloberflächen erzeugten VWF-Strings zu quantifizieren, injizieren Sie 1,35 mal 10 bis zur achten KBE pro Milliliter RFP, die Pneumokokken in einem maximalen Volumen von einem Milliliter exprimieren, unter Verwendung des Injektionsanschlusses in das EKGMS-Medium. Wählen Sie ein 63-faches Ölimmersionsobjektiv für die Mikroskopvergrößerung und passen Sie die Fluoreszenzfiltereinstellungen in der Mikroskopsoftware an den RFP-Kanal mit einem 540-Nanometer-Detektionsfilter zum Nachweis von RFP-exprimierenden Pneumokokken an.
Zur Quantifizierung der bakteriellen Bindung an die VWF-Strings erstellen Sie Snapshots von Z-Stapeln von mindestens 30 repräsentativen Feldansichten, die jeweils etwa 10 morphologisch intakte HUVEC enthalten, und zählen Sie die Menge an Pneumokokken.