JoVE-Enzyklopädie der Experimente
Mikrobiologie
0 Aufrufe • 2:09 Min. • September 26th, 2025
Beginnen Sie mit einer Kulturplatte, die einen Probenbakterienstamm enthält.
Entnehmen Sie mit einer sterilisierten Impfnadel eine isolierte Kolonie.
Unter sterilen Bedingungen wird diese Kolonie in ein halbfestes Medium eingestochen, das mit einem farblosen Redoxfarbstoff ergänzt ist. Das halbfeste Medium schränkt die passive Diffusion von Bakterien ein.
Es werden Kontrollröhrchen vorbereitet, eine Negativkontrolle mit einem unbeweglichen Bakterienstamm ohne Flagellen und eine Positivkontrolle mit einem stark beweglichen, geißelierten Bakterienstamm.
Inkubieren Sie alle inokulierten Röhrchen, um das Wachstum und die Beweglichkeit der Bakterien zu unterstützen.
Während der Inkubation reduzieren stoffwechselaktive Bakterien den farblosen Redoxfarbstoff zu einem unlöslichen, rot gefärbten Produkt.
Die beweglichen Bakterien vermehren sich und wandern mit ihren Geißeln durch das halbfeste Medium, wodurch eine diffuse rote Zone entsteht, die nach außen in das umgebende Medium strahlt.
Nicht-bewegliche Bakterien vermehren sich, wandern aber nicht; Die rote Zone bleibt auf die Einstichstelle beschränkt.
Dies ermöglicht die visuelle Unterscheidung von unbeweglichen und beweglichen Bakterienstämmen.
Entnehmen Sie einzelne Bakterienkolonien aus den Agarplatten und inokulieren Sie sie durch Punktion mit Impfnadeln in beide halbfesten Medien. Denken Sie daran, nicht-modale Stämme als Negativkontrollen und modale Stämme als Positivkontrollen einzubeziehen.
Inkubieren Sie die Röhrchen bei 37 Grad Celsius und beobachten Sie die Ergebnisse nach 24 bis 48 Stunden Inkubation. Wenn nur die Einstichlinie rot ist, kennzeichnen Sie die Bakterien als nicht-modal.
Wenn sich die rote Farbe entlang der Einstichlinie nach außen ausbreitet, kennzeichnen Sie die Bakterien als modal.