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Beginnen Sie mit einem Assay-Setup, das Fläschchen enthält, die in einer anaeroben Kammer platziert werden.
Jedes Fläschchen enthält Medien, die mit Natriumnitrat, Quecksilberionen und unterschiedlichen Konzentrationen von Magnesiumsulfat angereichert sind.
Drehen Sie das Setup, um die Komponenten zu mischen, und inkubieren Sie es dann.
Während der Inkubation fördert Magnesiumsulfat die Bildung von nicht bioverfügbaren Quecksilberkomplexen, indem es freie, bioverfügbare Quecksilberionen konzentrationsabhängig reduziert.
Fügen Sie als nächstes induzierte Biosensoren hinzu, gentechnisch veränderte Bakterien, die ein Plasmid tragen, und mischen Sie.
Das Plasmid enthält einen Quecksilber-responsiven Transkriptionsregulator und einen Promotor, der mit einem fluoreszierenden Reportergen verbunden ist.
Unter anaeroben Bedingungen nutzen die Bakterien Nitrat für die Atmung.
Freie Quecksilberionen dringen in die Zellen ein, binden den Transkriptionsregulator und aktivieren das fluoreszierende Gen, wodurch fluoreszierende Proteine entstehen.
Übertragen Sie die Aliquote aus jedem Fläschchen in eine Multi-Well-Platte.
Messen Sie mit einem Plattenleser die Fluoreszenzintensität.
Eine Abnahme der Fluoreszenz mit steigenden Magnesiumsulfat-Konzentrationen bestätigt die Fähigkeit des Biosensors, Veränderungen des bioverfügbaren Quecksilbers zu erkennen.
Überprüfen Sie vor Beginn des Experiments den anaeroben Monitor, um sicherzustellen, dass sich kein Sauerstoff in der anaeroben Kammer befindet. Entwerfen Sie das Plattenlayout nach einer 96-Well-Vorlage. Um Experimente in technischen Replikaten von drei durchzuführen, können 32 verschiedene Behandlungen durchgeführt werden, was am besten durch ein Vier-mal-Acht-Raster zum Aufstellen der Fläschchen dargestellt wird.
Richten Sie das Vier-mal-Acht-Raster entsprechend dem Layout der Assay-Platte ein. Legen Sie dann 7 Milliliter PTFE-Standardfläschchen in die Schale. Durchstechflaschen sollten nur durch Manipulation der Außenseite der Durchstechflasche gehandhabt werden.
Geben Sie das mittlere Expositionsvolumen in jede Durchstechflasche, die der jeweiligen Behandlung entspricht. Geben Sie in jede Durchstechflasche das entsprechende Volumen der zu prüfenden chemischen Variablen gemäß der Plattenanordnung. Geben Sie nun Nitrat in jedes Fläschchen, so dass die Endkonzentration 200 Mikromolar beträgt.
Schließen Sie diesen Schritt für konstitutive Rohlinge für die Biosensorbehandlung aus.
Um den Fläschchen Quecksilber hinzuzufügen, nehmen Sie zuerst die vier bis acht mikromolare Brühe und schütteln Sie sie gut. Verdünnen Sie die Lösung und das Expositionsmedium in einem 7-Milliliter-PTFE-Fläschchen auf eine Konzentration von 100 bis 250 Nanomolar, um eine funktionierende Quecksilberlösung herzustellen.
Geben Sie aus dieser Arbeitslösung Quecksilber in die erforderlichen Fläschchen entsprechend dem Plattenlayout. Nachdem Sie das Quecksilber oder Cadmium hinzugefügt haben, schütteln Sie die Platte manuell in einer orbitalen Bewegung. Das Experiment kann jetzt unterbrochen werden, abhängig von der Zeit, die Quecksilber oder Cadmium benötigen, um sich in Lösung zu bilden.
Wenn das Experiment fortgesetzt wird, pipettieren Sie das Biosensormaterial vorsichtig hin und her, um die Homogenität zu gewährleisten. Geben Sie dann 100 Mikroliter des Biosensor-Stocks in jedes Fläschchen und schütteln Sie die Platte wie zuvor manuell. Erwärmen Sie den Plattenleser auf 37 Grad Celsius und richten Sie einen kinetischen Lauf für zehn Stunden ein, wobei alle zwei Kommas fünf bis fünf Minuten gelesen werden.
Ein orbitales Schütteln zwischen den Messwerten ermöglichte Fluoreszenzmessungen mit einer Fluoreszenzanregung von 440 Nanometern und einer Emission von 500 Nanometern. Pipettieren Sie nun 200 Mikroliter aus jedem PTFE-Fläschchen im vier x acht Raster in die entsprechenden Vertiefungen der 96-Well-Platte.
Pipettieren Sie fünfmal hin und her, bevor Sie jeweils 200 Mikroliter umfüllen. Setzen Sie die 96-Well-Platte in das Fach des Plattenlesers ein. Setzen Sie dann den Deckel auf die 96-Well-Platte und beginnen Sie mit dem Assay.