Screening von Inhibitoren der bakteriellen membrangebundenen Pyrophosphatase mit einem kolorimetrischen Assay

0 Ansichten3:47 Min. • October 30th, 2025

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Die bakterielle membrangebundene Pyrophosphatase (mPPase) hydrolysiert Pyrophosphat zu Orthophosphat, während Natriumionen durch die Membran gepumpt werden.

Um die inhibitorische Wirkung gegen mPPasen zu bewerten, fügen Sie den Tubenstreifen steigende Konzentrationen von Phosphatstandards hinzu.

Geben Sie Testverbindungen, die die mPPase hemmen können, in die Röhrchen, wobei Sie Wasser als Kontrolle haben.

In Liposomen eingebettete mPPasen, die vom thermophilen Bakterium Thermotoga maritima abgeleitet sind, werden in alle Röhrchen mit Ausnahme der Standards gegeben.

Versiegeln und bei der optimalen Temperatur inkubieren, um das Enzym zu aktivieren.

Fügen Sie Natriumpyrophosphat hinzu, um die Reaktion zu initiieren und Orthophosphat freizusetzen.

Übertragen Sie die Röhrchen auf eine Kühlplattform, um die Reaktion zu stoppen, und zentrifugieren Sie, um Kondenswasser zu entfernen.

Fügen Sie das Molybdat-Ascorbat-Reagenz hinzu, um mit Orthophosphat zu reagieren und Phosphomolybdsäure zu bilden.

Fügen Sie die Arsenit-Citrat-Lösung hinzu, um die Säure zu reduzieren und einen stabilen blauen Komplex zu bilden.

Den Inhalt auf eine Multiwell-Platte umfüllen und die Absorption messen.

Eine geringere Absorption im Vergleich zur Kontrolle deutet auf eine mPPase-Hemmung hin, während die Standards als Referenz für die Phosphatquantifizierung dienen.

Fügen Sie einen Milliliter Lösung B zu 10 Millilitern Lösung A hinzu, mischen Sie von Hand und lagern Sie die Lösung auf Eis.

Geben Sie mit einer Mehrkanalpipette 40 Mikroliter 0, 62,5, 250 und 500 mikromolare Phosphatstandards in dreifacher Ausfertigung zu den Röhrchenskripten.

Geben Sie dann 25 Mikroliter Verbundlösung und 15 Mikroliter mPPase-Lösungsgemisch in jedes Röhrchen, mit Ausnahme der Röhrchen, die den Phosphatstandard enthalten. Verschließen Sie die Rohrstreifen mit einer selbstklebenden Dichtungsfolie. Schneiden Sie die Dichtungsfolie ab, um die einzelnen Rohrstreifen zu trennen.

Als nächstes inkubieren Sie die Probe fünf Minuten lang bei 71 Grad Celsius vor. Legen Sie die Probe im Abstand von 20 Sekunden zwischen den einzelnen Streifen auf den Heizblock.

Öffnen Sie für jeden Streifen die Klebedichtung. Mit einer Mehrkanalpipette 10 Mikroliter zweimillimolares Natriumpyrophosphat dibasic hinzufügen und durch fünfmaliges Auf- und Abpipettieren mischen.

Verschließen Sie den Rohrstreifen erneut mit der gleichen Dichtung.

Erneut bei 71 Grad Celsius für fünf Minuten inkubieren. Legen Sie danach die Proben im Abstand von 20 Sekunden zwischen den einzelnen Streifen auf das Kühlgerät.

Fünf Minuten abkühlen lassen und dann jeden Streifen kurz zentrifugieren, um die Wassertropfen unter der Dichtungsfolie zu dekantieren. Setzen Sie den Streifen wieder in die Kühlvorrichtung ein, entfernen Sie die Dichtung und lassen Sie ihn weitere fünf Minuten abkühlen. Fügen Sie dann 60 Mikroliter Lösung A und B hinzu, mischen Sie, indem Sie fünfmal auf und ab pipettieren, und lassen Sie die Röhrchenstreifen weitere 10 Minuten lang auf dem Kühlgerät.

In einen Abzug 90 Mikroliter der Arsenitcitratlösung geben und mindestens 30 Minuten bei Raumtemperatur aufbewahren, um eine stabile blaue Farbe zu erhalten. Geben Sie 180 Mikroliter jedes Reaktionsgemisches in eine durchsichtige 96-Well-Mikroplatte aus Polystyrol. Verwenden Sie ein Mikrotiterplatten-Spektralphotometer, um die Absorption jeder Vertiefung bei 860 Nanometern zu messen.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026