Quantifizierung enzyminduzierter Biofilmsuppression bei pathogenen Bakterien

0 Ansichten3:38 Min. • February 26th, 2026

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Nehmen Sie eine Mikroplatte mit Kontroll- und Behandlungsbrunnen, die jeweils mit einem biofilmbildenden, pathogenen Bakterium impfiert sind.

Die Behandlungsbrunnen enthalten ein Enzym, das die Biofilmbildung stört.

Inkubieren Sie unter mikroanaeroben Bedingungen, um eine sauerstoffarme Umgebung zu schaffen. Dies fördert die Sekretion bakterieller Signalmoleküle, die die Oberflächenadhäsion vermitteln. In den Behandlungsbrunnen baut das Enzym diese Moleküle ab und reduziert so die bakterielle Anhaftung.

Waschen Sie die Brunnen, um nicht haftende Zellen zu entfernen.

Frisches Medium einführen und inkubieren. Die anhaftenden Bakterien vermehren sich und sekretieren extrazelluläre polymere Substanzen, die die Biofilmmatrix bilden.

Entfernen Sie das Medium und waschen Sie die Brunnen.

Fügen Sie einen kationischen Farbstoff hinzu und inkubieren Sie, um die Bindung an negativ geladene Biofilmkomponenten zu ermöglichen.

Waschen, um ungebundene Farbe zu entfernen.

Inkubieren Sie mit einem Lösungsmittel unter Rührung, um den gebundenen Farbstoff in die Lösung freizusetzen.

Messen Sie die optische Dichte oder OD, um die Biofilmbiomasse zu quantifizieren.

Ein niedrigerer OD in den Behandlungsbrunnen spiegelt eine verminderte Biofilmbildung wider, die durch eine beeinträchtigte anfängliche Zelladhäsion verursacht wird.

Zu Beginn wachsen Sie eine 5-Milliliter-Kultur von A. baumannii S1 in LB bei 30 Grad Celsius in einem schüttelnden Inkubator für 16 Stunden.

Passen Sie die Kultur auf einen OD600 von 0,8 an. Anschließend verwenden Sie frisches LB mit 4 Milligramm pro Milliliter gereinigtes GKL-Enzym, um die Kultur von 1 bis 100 zu verdünnen. Und 100 Mikroliter zu den Brunnen einer 96-Bohrloch-Platte hinzufügen.

Verwenden Sie die Deckel, um die Teller zu bedecken, und geben Sie sie in einen 10-Liter-Kunststoffbehälter. Versiegeln Sie den Behälter und bebrüten Sie ihn drei Stunden lang bei 30 Grad Celsius, bevor Sie das Medium vorsichtig entfernen. Gib weitere 100 Mikroliter frisches LB-Medium in die Brunnen und inkubiere die Platte bei 30 Grad Celsius für 21 Stunden.

Nach vorsichtigem Entfernen des Mediums verwenden Sie 200 Mikroliter steriles Wasser, um die planktonischen Bakterienzellen vorsichtig zu waschen. Positionieren Sie die Pipettenspitze am Boden des Bohrlochs und entfernen Sie vorsichtig das flüssige Medium, um minimale Störungen des Biofilms zwischen Luft- und Flüssigkeitsgrenze zu gewährleisten. Dann geben Sie jedem Brunnen 100 Mikroliter 1% Kristallviolettlösung hinzu und inkubieren Sie 15 Minuten bei Raumtemperatur.

Entfernen Sie die kristallviolette Lösung mit 200 Mikrolitern sterilem Wasser, um die Brunnen dreimal zu reinigen. Geben Sie 100 Mikroliter 33 % Essigsäure zu jedem Brunnen und inkubieren Sie mit sanftem Schütteln 15 Minuten lang, um die Farbe aufzulösen. Quantifizieren Sie die Menge des Biofilms, indem Sie die Absorptionsfähigkeit von Kristallviolett bei 600 Nanometern messen. Die Menge an Kristallviolett ist proportional zur Menge des gebildeten Biofilms.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026