Name: Ein In vivo Nager-Modell der Kontraktion-induzierte Verletzung und nicht-invasive Überwachung von Recovery (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-11T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Lernen Sie eine Methode zur Erzeugung kontraktionsinduzierter Verletzungen an Ratten-Dorsiflexoren in vivo. Diese Technik ermöglicht nicht-invasive Überwachung der Muskelregeneration mittels Drehmomentmessung und Magnetresonanztomografie.

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Die Autoren bedanken sich bei Dr. Robert Bloch für seine großzügige Spende an Laborfläche und Einrichtungen und Dr. Rao Gullapalli und Da Shi danken in die Core for Translational Imaging bei Maryland (C-TRIM) und der Magnet-Resonanz-Forschungszentrum (MRRC) für den technischen Support. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse unterstützt, um von den National Institutes of Health (K01AR053235 und 1R01AR059179) und von der Gesellschaft für Muskeldystrophie (# 4278), und durch einen Zuschuss RML aus der Jain Foundation JAR.

1. In-vivo-Modell Verletzungen und die Messung der isometrischen Drehmoment. <ol><li> Diese Verfahren können für Ratten oder Mäuse 7,17,18 verwendet werden. Um zu beginnen, statt das Tier in Rückenlage unter Inhalationsnarkose (~ 4-5% Isofluran für die Induktion in einer Induktion Kammer, dann ~ 2% Isofluran über eine Nasenkonus für Wartung) mit einer Präzisions-Verdampfer (cat # 91103, Vet Anlegen, Inc, Pleasanton , CA). Bewerben sterile ophthalmologische Creme (Paralube Vet-Salbe, PharmaDerm, Floham Park, NJ) für jedes Auge die Hornhaut vor dem Austrocknen zu schützen. Während des Verfahrens ist das Tier warm gehalten und durch die Verwendung einer Wärmelampe außerhalb des Käfigs platziert gehalten mindestens 6 cm von dem Tier zu allen Zeiten. </li><li> Prep die Haut durch Entfernen von Haaren und durch die Reinigung mit wechselnden scrubs von betadine und 70% Alkohol Aussaat Haut Bakterien in die Weichgewebe oder Knochen zu verhindern. Überprüfen Sie die Narkose durch den Mangel an einer tiefen Sehnenreflexe (kein Fuß Rückzug als Reaktion auf das Einklemmen des Fußes). Eine Nadel wird manuell durch den proximalen Tibia platziert, um das Bein auf den Prüfstand (25G oder 27G für Maus) zu stabilisieren. Die Nadel sollte nicht in das vordere Kompartiment des Beines. </li><li> Verriegeln Sie die Nadel in einer festen Position, so dass das Tier in Rückenlage und die Zehen sind gerade nach oben konfrontiert ist. Ein maßgeschneidertes Gerät verwendet wird, um die Nadel zu sichern und stabilisieren dadurch das Bein. </li><li> Setzen Sie den Fuß des Beins auf einem speziell bearbeiteten Fußplatte (Abbildung 1). Die Achse der Fußplatte ist mit einem Schrittmotor (Modell T8904, NMB Technologies, Chatsworth, CA) und ein Drehmoment-Sensor angeschlossen (Modell QWFK-8M, Sensotec, Columbus, OH). Der Fuß sollte zunächst so, dass sie senkrecht auf die Tibia ausgerichtet werden, wie in Abbildung 1. </li><li> Verwenden Sie transkutane Elektroden (723.742, Harvard Apparatus, Cambridge, MA) oder subkutane Elektroden (J05 Nadelelektrode Needles, 36BTP, Jari Electrode Supply, Gilroy, CA), um den N. peronaeus in der Nähe des Halses der Fibula, wo der Nerv liegt in einem regen oberflächliche Lage. Optisch bestätigen isolierten Dorsalflexion, indem Sie eine Reihe von Zuckungen (0,1 ms Impuls für die Maus und 1 ms Impuls für die Ratte), bevor der Fuß befestigt ist. Sobald der Fuß auf der Fußplatte mit Klebeband gesichert, bestätigt eine Zunahme der twitch Amplitude in Reaktion auf eine Erhöhung der Spannung, die entgegengesetzten Muskeln (Plantarflexoren) sind nicht gleichzeitig stimuliert. </li><li> Vor Verletzungen und an ausgewählten Zeitpunkten nach einer Verletzung, ist die maximale Kraft, die Kapazität der Dorsalflexoren als "maximale isometrische Drehmoment" (Drehmoment ohne eine Änderung der Muskellänge) zu verzeichnen. Drehmoment-Messungen basieren auf der gleichen rig, die verwendet werden, um Verletzungen zu induzieren durchgeführt wird. Vor der Aufnahme maximale isometrische Drehmoment, die Pulsamplitude eingestellt zu zucken Spannung und die optimale Position des Sprunggelenks optimieren, indem sie zuckt bei verschiedenen Längen der Dorsalflexoren bestimmt. Nach Erhalt eines Drehmoment-Winkel-Kurve auf die optimale Länge der Dorsalflexoren (Ruhelänge, aka Lo) zu bestimmen, wird ein Drehmoment Frequenz Grundstück durch die schrittweise Erhöhung der Frequenz der Impulse während eines 200 ms Impulsfolge erhalten. Eine maximale verschmolzen tetanische Kontraktion ist in der Regel bei 90-100 Hz erhalten. Drei separate Zuckungen und tetanische Kontraktionen werden aufgezeichnet und gespeichert für weitere Analysen. </li><li> Verwenden Sie kommerzielle Software, um (Labview Version 8.5, National Instruments, Austin, TX) zu kontraktilen Aktivierung Beginn der Knöchel Rotation und Drehmoment Datensammlung zu synchronisieren. Die Stimulation der Dorsalextensoren auftritt, während der Computer-gesteuerten Motor bewegt sich gleichzeitig der Fußplatte in Plantarflexion, was zu einer Verlängerung Kontraktion (auch als "exzentrisch" Kontraktion, die Verletzung des Muskels verursacht). Die spezifische Protokoll hängt von der gewünschten Größenordnung von Verletzungen durch den Prüfarzt gewünscht. Das Ausmaß der Verletzungen oder Gewebeschäden können durch Manipulation von Variablen wie Winkelgeschwindigkeit, Zeitpunkt der Muskelaktivität, Beweglichkeit, und die Zahl der Verlängerung Kontraktionen geregelt werden. </li><li> Zur Induktion Verletzungen, überlagern eine Verlängerung Kontraktion auf eine maximale isometrische Kontraktion, die Variation der Bewegungsumfang, Geschwindigkeit der Verlängerung, und den Zeitpunkt der Stimulation, wie gebraucht. Zum Beispiel wird eine maximale isometrische Kontraktion in der Dorsalflexoren erhalten und nach 200 ms sind sie an einem ausgewählten Geschwindigkeit zur Angleichung der normalen Bewegung (900 ° / sec) verlängert. Wir haben bereits gezeigt, dass die Aktivierung vor der Bewegung und der Grad der Verlängerung wichtige Faktoren bei der Beschaffung einer Verletzung 14 sind. Die Mehrheit der Drehmoment durch die Dorsalflexoren produziert wird von der TA 11 und wir haben bereits gezeigt, dass dieses Modell zu einer Schädigung dieser Muskel 5,13-15. Der TA bleibt während Verlängerung angeregt. </li><li> Nach einer Verletzung wird das Tier aus dem Gerät entfernt werden. Die Tibia-Pin istentfernt wird, wird das Bein wieder gereinigt und das Tier in den Käfig zurück (platziert auf einem temperierten Heizblock bei 37 ° C) und überwacht bis zur Genesung. Dazu gehören zu warten, bis das Tier ist wach und mobil. Die Tiere leiden keine beobachtbaren Schmerzen während der Behandlung, und es gibt keine sichtbaren Veränderungen in Gang (zB Lahmheit) nach einer Verletzung durch eine Verlängerung Kontraktionen induziert. Allerdings ist eine entsprechende Anti-Schmerz-Behandlung später (- 0,1 mg / kg alle 12 Stunden für 48 Stunden nach der Operation Buprenorphin 0,05) verabreicht werden. </li></ol> 2. In situ-Messung der gesamten Muskelspannung. <ol><li> Das Tier ist vorbereitet und das Schienbein stabilisiert, wie oben in Abschnitt 1.1 bis 1.3 beschrieben. Alle Instrumentierung ist auf mindestens 30 min vor dem Test für die richtige Kalibrierung eingeschaltet und der thermischen Drift des Kraftaufnehmers minimieren. </li><li> Inzision der Haut vorderen bis zum Knöchel und sever der Sehne des M. tibialis anterior (TA). Sorgfältig binden 4,0 Ethicon Seide nicht-resorbierbares Nahtmaterial, um die Sehne und befestigen Sie die Vicryl Naht an der Wägezelle über das mitgelieferte S-Haken (Gewicht = 0,1 g), Modell FT03, Grass Instruments, Warwick, RI). Alternativ können Sie eine benutzerdefinierte Klemme (Gewicht = 0,5 g) verwendet, um die Sehne am Vicryl Naht (Abb. 2) befestigen. </li><li> Die Wägezelle ist mit einem Mikromanipulator (Kite Manipulator, World Precision Instruments Inc., Sarasota, FL), so dass die TA zu Ruhelänge angepasst werden kann und korrekt ausgerichtet (eine gerade Linie von Pull zwischen Ursprung und Ansatz) montiert. Die TA ist von der Kühlung durch eine Wärmelampe und vor Austrocknung durch Mineralöl geschützt. Die Signale der Wägezelle (kalibriert vor jedem Test) werden über einen DC-Verstärker (Modell P122, Grass Instruments, Warwick, RI) an einen A / D-Karte gesammelt und durch den Erwerb Software (PolyView Version 2.1, Grass Instruments gespeichert werden gefüttert , Warwick, RI). </li><li> Befestigen Sie den TA auf die Wägezelle und gelten einzelne Zuckungen (Rechteckimpuls von 1 ms) bei verschiedenen Muskel-Längen, um L 0 zu bestimmen. Muscle Ruhelänge, gemessen mit Messschieber, ist wie der Abstand zwischen der Tuberositas und der Muskel-Sehnen-Übergang definiert. Bei dieser Länge, schrittweise Erhöhung der Pulsamplitude und dann die Pulsfrequenz, um eine Kraft-Frequenz-Beziehung aufzubauen. Eine maximal abgesichert tetanische Kontraktion wird auf etwa 90-100Hz (300 ms Zug Dauer von 0,1 ms bzw. 1 ms Pulse besteht) erhalten. Verwenden Sie 150% der maximalen Intensität der Stimulation der TA aktivieren, um eine maximale kontraktile Aktivierung (P 0) induzieren. Maximale tetanische Kontraktionen können wiederholt durchgeführt werden und als Prozentsatz der P 0 ausgedrückt, einen Index von Müdigkeit zu jedem gewünschten Zeitpunkt. </li></ol> 3. In vivo MR-Bildgebung und / oder-Spektroskopie von Nagetier Skelettmuskeln. Alle MRI und MRS befindet sich auf einem Bruker Biospin (Billerica, MA) 7,0 Tesla MR-System mit einem 12 cm Steigung einfügen (660 mT / m maximale Steigung, 4570 T / m / s maximale Anstiegsgeschwindigkeit) läuft Paravision 5.0 Software ausgestattet ist. <ol><li> Das Tier ist betäubt mit verdampft Isofluran wie oben in 1.1 beschrieben. Eine MR-kompatible Kleintier-Überwachung und-Gating-System (SA Instruments, Inc.) wird verwendet, um Atemfrequenz und Körpertemperatur überwacht. Maus Körpertemperatur ist bei 36-37 ° C mit Hilfe eines warmen Wasser Thermostaten gehalten. Eine maßgeschneiderte Halterung verwendet wird, um die Maus in Rückenlage mit beiden Beinen parallel zur Bohrung des Magneten vom Knie bis zum Fuß positionieren. Ein Vier-Kanal empfangen nur Oberflächenspule ist in einem 72 mm linear 1H Resonators platziert. Der Resonator Spule abgestimmt ist und abgestimmt auf die Probe. </li><li> MR Imaging: Nach Lokalisierer, die folgenden MR-Scans werden durchgeführt: T1-gewichteten schnellen Erfassung mit Relaxationserhöhung (RARE) mit folgenden Parametern: TE = 9,52 ms, TR = 1800, Echo Zuglänge = 4, in-plane-Auflösung 100x100 um und Schichtdicke = 750 um. Dual-Echo PD/T2 RARE: TE = 19.0/57.1 ms, TR = 5000 ms, Echo Zuglänge = 4, in-plane-Auflösung 100x100 um, und Schichtdicke = 750 um. Spin-Echo (SE) Diffusions-Tensor-Bilddaten mit 12 nicht-kollineare Richtungen: b-Wert = 350 s / mm -2, TE = 26 ms, TR = 4500 ms, in-plane-Auflösung 150x150 um, und Schichtdicke = 750 um . Multi-Slice-Multi-Echo (KKMU) T2 parametrische Mapping-Daten unter Verwendung von 16 TEs = 11,4 ms auf 182,5 ms mit ΔTE = 11,4 ms, TR = 10000 ms, in-plane-Auflösung 150x150 um, und Schichtdicke = 750 um. </li><li> Bildverarbeitung: Diffusion Tensor Wiederaufbau und Traktographie erfolgt über TrackVis (Martinos Center for Biomedical Imaging, Massachusetts General Hospital, Boston, MA) zu bedeuten Diffusivität (MD), fraktionierte Anisotropie (FA) Bilder sowie Traktographie Karten zu erstellen. T2-Mapping erfolgt mit Hilfe eigener Software in MAT geschrieben LAB (The Mathworks, Natick, MA) unter Verwendung von nicht-linearen kleinsten Quadrate, um die gemessenen Daten an jedem Pixel passen auf die kanonische T2-Signal Gleichung. Regionen von Interesse Messungen durchgeführt werden, um Parameterwerte innerhalb der TA beurteilen. </li><li> 1H-Spektroskopie: Automatisierte shimming befindet sich auf einem 1 x 1 x 4 mm 3 Voxel in der TA durchgeführt. Eine Punkt-zeitaufgelösten Spektroskopie (PRESS) Pulssequenz (TR / TE = 2000/18 ms) wird verwendet, um Spektren aus dem gleichen Voxel mit 1024 im Durchschnitt zu erwerben. Die Datenerfassung erfolgt 34 ​​Minuten auf jedem Bein. Spektrale Daten verarbeitet werden, mit dem LCModel Paket 16. 31P-Spektroskopie: Ein Dual-gestimmt (1H, 31P) Oberflächenspule wird verwendet, um nicht-lokalisierten durchführen (unter Verwendung eines Single-Puls-Experiment) oder lokalisierte Spektroskopie mit dem Bild in vivo-Spektroskopie (ISIS) Pulssequenz ausgewählt. </li></ol> 4. Ernte und Lagerung Muskeln. Reisebüros sind nach Ende der Experimente geerntet, gewogen, in flüssigem Stickstoff eingefroren und anschließend bei -80 ° C gelagert Dies kann zu jedem Zeitpunkt nach der in-vivo-Experimente durchgeführt werden. Muskeln sind unmittelbar nach der in-situ-Experimente geerntet, da dies ein Terminal Verfahren ist. Für detaillierte morphologische Studien, wird das Tier mit 4% Paraformaldehyd über Perfusion durch die linke Herzkammer behoben. 5. Repräsentative Ergebnisse. Abbildung 3 zeigt repräsentative Daten von einer Ratte in der in vivo Apparat Die in vivo Apparat benutzt wird, um maximale Drehmoment von der Dorsalextensoren generiert erhalten;. Es wird auch benutzt, um eine Verletzung dieser selben Muskeln hervorzurufen. Aufgrund der Länge und Spannung Verhältnis von Muskel-, maximalen isometrischen Drehmoments der Regel tritt ein, wenn das Sprunggelenk bei ca. 20 ° Plantarflexion (mit dem Fuß senkrecht positioniert, um die Tibia als 0 °) positioniert ist. Nach maximale isometrische Drehmoment erhalten wird, kann der Fuß dann in jeder beliebigen Position auf der Verletzung Protokoll beginnen platziert werden. Abbildung 3 stellt eine Verletzung des Protokolls 30 Wiederholungen mit einem Bogen der Bewegung von 0 ° - 70 °. Notieren Sie sich die stetige Abnahme des Drehmoments aus der isometrischen Phase (gefüllte Pfeil) und die Verlängerung Phase (offener Pfeil) während der Kontraktion-induzierten Verletzungen Protokoll generiert. Das Drehmoment wird in Einheiten von Nmm aufgenommen, aber der absolute Wert hängt von der Größe des Tieres und dessen Zustand (zB verletzten Muskels, müde Muskeln oder Muskel fehlt ein bestimmtes Protein durch homologe Rekombination). Abbildung 4 zeigt repräsentative Daten von einer Ratte in der in situ Apparat. Unsere in situ Apparat nicht um Verlängerung Kontraktionen, sondern erlaubt es uns, zu isolieren, richtig auszurichten und zu messen maximale Spannung von einem einzelnen Muskel an einer bekannten Länge produziert. Abbildung 4 zeigt die allmähliche Verlust der Kraft, die beim Dauertest in einem tibialis anterior der Ratte auftritt. In diesem Beispiel wurden titanic Kontraktionen einmal pro Sekunde für 5 Minuten durchgeführt. Tension (Kraft) ist in der Regel in Newton (oder Gramm) aufgezeichnet, aber wie Drehmoment, hängt der Betrag von der Größe und dem Zustand des Tieres. Da Muskelmasse sofort nach diesem Verfahren erhalten wird, kann die Kraft normiert (so genannte "spezifische Kraft"), um Muskeln Querschnittsbereich werden. Abbildung 5 zeigt repräsentative Daten aus in vivo-Bildgebung von einer Maus, wie T1-gewichteten und T2 Parametric Mapping (A), 3D-Traktographien von Diffusions-Tensor-Bildgebung (B), 1 H-Spektroskopie (C) und 31 P-Spektroskopie. Einzelheiten sind in der Legende zur Verfügung gestellt. <img src="/files/ftp_upload/2782/2782fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1: In-vivo-Apparat .* Um die Verletzungsgefahr zu produzieren, die Tibia stabilisiert und den Fuß auf einem motorbetriebenen Platte befestigt. Der Knöchel Dorsalflexoren werden über den N. peronaeus stimuliert, während die Fußplatte zwingt den Fuß in Plantarflexion (gepunkteter Pfeil). * Lovering &amp; De Deyne, J Biomechanik 2005, mit freundlicher Genehmigung verwendet. <img src="/files/ftp_upload/2782/2782fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2: In situ Apparat Die Wägezelle ist mit einem Mikromanipulator montiert, so dass die TA zu Ruhelänge angepasst werden kann und richtig in die X, Y, und Z-Richtung ausgerichtet. Die distale Sehne des TA ist es, die Wägezelle befestigt und einzelne Zuckungen an verschiedenen Muskeln Längen induziert, um L 0 zu bestimmen. Eine maximale tetanische Kontraktion erhalten wird, um maximalen kontraktilen Aktivierung (P 0) zu bestimmen. Maximale tetanische Spannung kann mehrfach durchgeführt werden und als Prozentsatz der P 0 ausgedrückt, einen Index von Müdigkeit zu einem gewünschten Zeitpunkt. 782/2782fig3.jpg "alt =" Bild 3 "/&gt; Abbildung 3: Drehmoment-Daten aus in vivo Apparat Vertreter Spur-Aufnahmen von Drehmoment von Verlängerung Kontraktionen in der Ratte. In diesem Beispiel wurden die Muskeln für 200 Millisekunden angeregt, einen Höhepunkt isometrische Kontraktion (gefüllte Pfeil) vor Verlängerung (offener Pfeil) von der Fußplatte durch eine 70 °-Bogen der Bewegung mit einer Winkelgeschwindigkeit von 900 induzieren ° / s. <img src="/files/ftp_upload/2782/2782fig4.jpg" alt="Abbildung 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 4"> Abbildung 4: Tension Daten aus in situ Apparat Repräsentative Daten zeigen den Rückgang der maximalen isometrischen tetanischen Spannung bei wiederholter Stimulation des M. tibialis anterior (TA) in eine Ratte. In diesem Beispiel wurde die TA isoliert, angepasst, um optimale Länge (L 0), und dann mit einem 200 ms tetanische Kontraktion einmal pro Sekunde für 5 Minuten stimuliert. <img src="/files/ftp_upload/2782/2782fig5.jpg" alt="Abbildung 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 5"> Abbildung 5: In-vivo-Bildgebung A: Die Bilder zeigen quer (axial) Teile der T1-gewichteten und T2 parametrische Mapping aus dem M. tibialis anterior (TA). Die gestrichelte rote Feld umgibt die TA zu zeigen erhöhte erhöhte T2 in den verletzten (links) versus unverletzt (rechte Seite) B:.. Vertreter 3D-Traktographien von Diffusion Tensor Imaging (DTI) C: Die 1 H-Spektrum einer Maus TA zeigt mehrere nachweisbar Lipid Resonanzen; Differenzierung zwischen intramyozellulären (IMCL) und extramyocellular Lipid (EMCL) Peaks erhält man mit dieser Methode D: Die 31 P NMR-Spektrum der Ratte TA zeigt Phosphokreatin (PCr), anorganischem Phosphat (Pi), und die drei. Resonanzen (α, β, γ) von Adenosin-5'-Triphosphat (ATP).

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&quot;Muscle Schaden&quot; wurde definiert und gemessen in vielerlei Hinsicht. Bauschäden ist in histologischen Befunden 6,9 evident, aber ein Problem mit vielen der biologischen Marker verwendet werden, um Muskelverletzungen, einschließlich derjenigen in tierexperimentellen Studien verwendet zu bewerten, ist, dass sie in der Regel nicht mit dem Verlust der Kraft korrelieren. Muscle Schaden ist oft im Rahmen des Tests verwendet werden, um es zu untersuchen definiert und niemand finden kann, damit die Änderung...

(Alle Geräte sind die gleichen für Mäuse und Ratten mit Ausnahme der Fußplatte) <ul><li> BUD Value Line Cabinet (Newark, 06M4718) </li><li> Multifunktions-l / O USB-6221M (National Instruments, 779808-01) </li><li> Schrittmotor-Controller (Newark, 16M4189) </li><li> Stepper Motor (Newark, 16M4198) </li><li> DMS-Verstärker (Honeywell, Sensotec, DV-05) </li><li> Torque Sensor (Honeywell, QWLC-8M) </li><li> Fußplatte und Stabilisierung Gerät (custom made, Patent angemeldet) </li></ul>

ein in vivo nager-modell der kontraktion-induzierte verletzung und nicht-invasive Überwachung von recovery

An in vivo Rodent Model of Contraction-induced Injury and Non-invasive Monitoring of Recovery

Muskelzerrungen sind eine der häufigsten Beschwerden von Ärzten behandelt. Eine Muskelverletzung in der Regel aus der Anamnese und körperliche Untersuchung allein diagnostiziert, aber die klinische Präsentation kann variieren stark je nach dem Ausmaß der Verletzung, die Schmerzen des Patienten Toleranz, etc. Bei Patienten mit Muskel-Verletzungen oder Muskelerkrankungen, die Beurteilung der Schädigung der Muskulatur ist in der Regel um die klinischen Symptome, wie Zärtlichkeit, Kraft, Beweglichkeit, und in jüngerer Zeit, bildgebende Verfahren beschränkt. Biologische Marker, wie zB Serum-Kreatin-Kinase-Ebenen werden in der Regel mit Muskelverletzungen erhöht, aber ihre Werte nicht immer mit dem Verlust von Kraft Produktion korrelieren. Dies gilt auch für histologische Befunde von Tieren, die eine &quot;direkte Maßnahme&quot; des Schadens, aber nicht für alle der Verlust der Funktion Konto. Manche haben argumentiert, dass das umfassendste Maß für die allgemeine Gesundheit des Muskels in kontraktilen Kraft. Da Muskelverletzung ist ein zufälliges Ereignis, dass unter einer Vielzahl von biomechanischen Bedingungen auftritt, ist es schwer zu untersuchen. Hier beschreiben wir eine In-vivo-Tiermodell, um das Drehmoment zu messen und eine zuverlässige Muskelverletzung zu produzieren. Wir beschreiben auch unser Modell zur Messung der Kraft von einem isolierten Muskel in situ. Außerdem beschreiben wir unseren Kleintiere MRT-Verfahren.

Ein<em&gt; In vivo</em&gt; Tiermodell der Verletzung ist beschrieben. Die Methode nutzt die subkutane Lage des N. peronaeus. Velocity, Zeitpunkt der Muskelaktivität und Bogen der Bewegung sind alle vorher festgelegten und synchronisiert mit kommerzieller Software. Beitrag Verletzungen Änderungen werden überwacht<em&gt; In vivo</em&gt; Mit der MR-Bildgebung / Spektroskopie.

Ein In vivo Nager-Modell der Kontraktion-induzierte Verletzung und nicht-invasive Überwachung von Recovery

Muskelzerrungen gehören zu den häufigsten Beschwerden, die ärztlich behandelt werden. Eine Muskelverletzung wird in der Regel anhand der Patientenanamnese und der körperlichen ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, eine zuverlässige kontraktionsinduzierte Verletzung der dorsalen Flexormuskeln der Ratte oder Maus in vivo zu erzeugen. Dies wird erreicht, indem ein dünner Stift durch die proximale Tibia eingeführt wird. Anschließend wird das Bein an der Vorrichtung stabilisiert.Der dritte Schritt besteht darin, die korrekte Stimulation des Nervus peronaeus zu überprüfen. Schließlich wird der Fuß an einer Fußplatte befestigt, um Drehmomentmessungen durchzuführen und Längungs-Kontraktionen auszulösen, die eine Verletzung hervorrufen. Letztendlich können Ergebnisse erzielt werden, die Veränderungen der Funktion und Struktur mittels Wiederholungstests, Drehmomentmessungen und/oder Magnetresonanzuntersuchungen zeigen.In meinem Labor verwenden wir mehrere Techniken, um die kontraktilen Funktionen des Skelettmuskels zu untersuchen. Die In-situ-Methode wird angewendet, wenn wir die Masse, die Länge und die maximale Spannung eines isolierten Muskels, wie beispielsweise des Musculus tibialis anterior, bestimmen möchten. Der Hauptvorteil der In-vivo-Technik besteht darin, dass die Anatomie vollständig ungestört bleibt.Außerdem können Messungen wiederh

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Research

Forschung

JoVE Journal

Medicine

Medizin

Wir präsentieren ein Protokoll, das Zwei-Photonen-Anregungs-Zeitraffermikroskopie verwendet, um gleichzeitig die Dynamik von Axon- und Myelinverletzungen in Echtzeit zu visualisieren. Dieses vorgeschlagene Protokoll ermöglicht die Untersuchung sowohl intrinsischer als auch extrinsischer Faktoren, die das Schicksal des zentralen myelinisierten Axons nach einer Verletzung beeinflussen und zu einer dauerhaften klinischen Behinderung beitragen können.

Ein Ex vivo Laser-induzierte Rückenmarksverletzungen Modell zu Mechanismen der axonalen Degeneration Beurteilen Sie in Echtzeit

Wir beschreiben ein in vivo Protokoll zur Messung der Dorsalflexion des Fußes nach Stimulation des Peroneusnervs und Kontraktion des vorderen cruralen Kompartiments der Hintergliedmaße der Ratte. Solche Messungen sind ein unverzichtbares translationales Werkzeug zur Bewertung der Skelettmuskelpathologie und der Tissue Engineering-Ansätze zur Muskelreparatur und -regeneration.

Anwendungen<em&gt; In Vivo</em&gt; Funktionstest der Ratte Vorderer Schienbeingewebe Skeletal Muscle Repair Engineered für die Bewertung

Die Messung der Nervenleitgeschwindigkeit ist ein nützliches Instrument zur Maus-Modellen der Neurodegeneration zu beurteilen, aber es ist häufig nur angewendet, um den Ischiasnerv im Hintergliedmaßen zu stimulieren. Hier beschreiben wir eine Technik, um zusammengesetzte Muskel Aktionspotential (CMAP) in Vivo in der Maus vordergliedmaße Muskeln innerviert den Plexus brachialis zu messen.

In Vivo Elektrophysiologische Messungen der zusammengesetzten Muskel Aktionspotential aus die Vorderbeine in Maus-Modellen der Motor Neuron Degeneration

Ziel dieser Studie ist es, ein Standardprotokoll der intraoperativen neuronale Kontrolle der Schilddrüsen-Operation in einem porcinen Modell zu entwickeln. Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur Vollnarkose, um verschiedene Arten von Elektroden zu vergleichen und zu untersuchen, die elektrophysiologischen Eigenschaften des normalen und verletzten wiederkehrende Kehlkopfnerven zu demonstrieren.

Intra-Operative neuronale Kontrolle der Schilddrüsen-Operation in einem porcinen Modell

Hier wird ein Protokoll zur Herstellung eines implantierbaren Systems zur in vivo-chronologischen Aufzeichnung evozierter und spontaner elektromyographischer Potentiale vorgestellt. Das System wird auf die Untersuchung der Reinnervation der Kehlkopfmuskulatur nach Einer Nervenverletzung angewendet.

Ein implantierbares System für die chronische In-Vivo-Elektromyographie

Das vorliegende Protokoll beschreibt prägnante experimentelle Details zur Auswertung und Interpretation von In-vivo-Drehmomentdaten , die durch elektrische Stimulation des gemeinsamen Peronealnervs bei betäubten Schweinen gewonnen werden.

Im lebenden Organismus Messung des isometrischen Drehmoments des Dorsiflexors der Hintergliedmaßen vom Schwein

Dieser Artikel beschreibt, wie die elektrische Impedanzmyographie in vivo (unter Verwendung von Oberflächen- und Nadelelektrodenarrays) und ex vivo (unter Verwendung einer dielektrischen Zelle) am Musculus gastrocnemius von Nagetieren durchgeführt wird. Es wird die Technik sowohl bei Mäusen als auch bei Ratten demonstrieren und die verfügbaren Modifikationen (z. B. fettleibige Tiere, Welpen) detailliert beschreiben.

Durchführung der In-vivo- und Ex-vivo-Impedanz-Myographie bei Nagetieren

Atemwegskomplikationen sind die häufigste Todesursache bei Personen mit zervikaler Rückenmarksverletzung (cSCI). Tiermodelle für cSCI sind für mechanistische Bewertungen und präklinische Studien unerlässlich. In dieser Arbeit stellen wir eine reproduzierbare Methode vor, um die funktionelle Wiederherstellung der Zwerchfellmuskelaktivität (DIAm) nach einseitiger C2 spinaler Hemisektion (C2SH) bei Ratten zu beurteilen.

Beurteilung der funktionellen Wiederherstellung der Eupneik-Zwerchfellaktivität nach einseitiger Hemisektion des zervikalen Rückenmarks bei Ratten

Verletzungen des volumetrischen Muskelverlusts (VML) übersteigen die endogene Regenerationsfähigkeit, was zu dauerhaften funktionellen Defiziten führt. Die aktuelle VML-Forschung konzentriert sich vor allem auf die Gliedmaßen- und Rumpfmuskulatur. Um mechanistische Studien von VML auf kraniofaziale Muskeln auszudehnen, wird in diesem Artikel eine in vivo Methode zur longitudinalen Beurteilung der Funktion der Kaumuskulatur vor und nach einer VML-Verletzung beschrieben.

In vivo Funktionsbeurteilung des Kaumuskels von Ratten nach chirurgischer Entstehung einer Verletzung durch volumetrischen Muskelverlust (VML)

Es wird ein Protokoll für die Installation und Vorbereitung von intramuskulären Elektroden vorgestellt, zusammen mit einem tiermontierbaren, miniaturisierten Messgerät für die Elektromyographie (EMG) Analyse in Fortbewegungsstudien. Dieses System ermöglicht die drahtlose Übertragung von Echtzeit-EMG-Daten zur Untersuchung der Wiederherstellung der Fortbewegung bei Schlaganfall-Modellratten.

Ein tragbares Echtzeit-Elektromyographie-Messsystem für Kleintiere

Dieser Artikel stellt ein Schritt-für-Schritt-Protokoll zur Platzierung eines in vivo telemetrischen Implantats in der absteigenden Aorta von Ratten vor, das eine kontinuierliche und langfristige Überwachung der kardiovaskulären Parameter, der Körperkerntemperatur und der Tieraktivität vor und nach schwerer hochthorakaler Rückenmarksverletzung ermöglicht.

In vivo Telemetrie zur Aufzeichnung langfristiger kardiovaskulärer Parameter, Temperatur und Aktivität in Rückenmarksverletzungsrattenmodellen

Lernen Sie eine Methode zur Erzeugung kontraktionsinduzierter Verletzungen an Ratten-Dorsiflexoren in vivo. Diese Technik ermöglicht nicht-invasive Überwachung der Muskelregeneration mittels Drehmomentmessung und Magnetresonanztomografie.

Ein In vivo Nager-Modell der Kontraktion-induzierte Verletzung und nicht-invasive Überwachung von Recovery

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