Name: Evaluation der Brustdrüse Entwicklung und Funktion in Mausmodellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Lernen Sie die Entwicklung und Funktion der Brustdrüse in Mausmodellen zu bewerten. Diese Methode umfasst Präparation, Färbung und Oxytocin-induzierte Kontraktionsanalysen zur Untersuchung von Genmutationseffekten.

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Diese Studien wurden von CIHR und CBCRA gewährt DWL finanziert. IP wurde durch Stipendien aus CIHR-STP, FRSQ und CIHR finanziert. MKGS wurde von OGS und CIHR-STP Stipendien finanziert. Die Autoren danken Kevin Barr für seine Unterstützung bei der Maus Zucht.

1. Brustdrüse Dissektion <ol><li> Euthanize der Maus unter Verwendung von CO 2-Inhalation. Vermeiden Sie Genickbruch, wenn möglich, da es große Blutgefäße im Hals und führen zu einer Akkumulation von Blut durch Brustdrüsen beschädigt werden kann, wodurch die Dissektion erschweren. Wenn jedoch andere Kriterien in die gleiche Maus, wie die Blutspiegel von Oxytocin ausgewertet werden sollen, können alternative Methoden Euthanasie notwendig sein, obwohl dies von Ihrem IACUC ausgewertet werden müssen. </li><li> Auf einer Polystyrol-Hartschaum in Folie verpackt, die Maus auf den Rücken und breitete die vier Gliedmaßen. Pin fest aller vier Gliedmaßen mit 16 bis 20 Gauge-Nadeln (Abbildung 1A). </li><li> Sprühen Sie die Maus großzügig mit 70% Ethanol. </li><li> Mit einer Pinzette, ziehen Sie die Bauchhaut an der Mittellinie und machen einen kleinen Schnitt mit einer scharfen Schere. </li><li> Ausgehend von der Schnittführung, schneiden Sie die Haut bis zum Hals des Tieres unter Vermeidung Punktion der Bauch-oder Brusthöhle (Abbildung 1B). </li><li> Schneiden Sie die Haut an den Vorderbeinen auf die Mittellinienschnitt, was zu einem "Y-Form" (Abbildung 1B). Schneiden Sie die Haut an den hinteren Gliedmaßen die gleiche Weise (Abbildung 1B). </li><li> Mit hämostatischen Zange vorsichtig schälen die Bauch-und Brust-Haut auf die Seite der Maus. Wenn nötig, vorsichtig schneiden Bindegewebe. </li><li> Fix die Haut um die Polystyrol-Hartschaum mit 16 bis 20 Gauge-Nadeln, Freilegung der Milchdrüsen an der Unterseite der Haut. Fahren und vollständige einseitig zu einer Zeit (Abbildung 1C). </li><li> Mit einer Pinzette vorsichtig aus der Brustdrüse von Interesse und zwischen der Drüse und die Haut mit kleinen, scharfen Schere, beginnend von außen auf die Wirbelsäule des Tieres. Stellen Sie sicher, schneiden sorgfältig, so dass kein Stück Haut oder Muskeln bleiben auf der Drüse. Alle Brustdrüsen (Abbildung 1) kann mit Hilfe dieses Protokolls werden, aber Bauchschmerzen Brustdrüsen (# 4) sind am besten für die ganze Montage. Die 2. und 3. Drüsen haben einige verzahnte Muskeln und während sie für den ganzen Berg und Histologie verwendet werden können, könnten sie nicht angemessen für alle Analysen. </li></ol> 2. Whole mount <ol><li> Mindestens einen Tag vor der Präparation vorzubereiten carmine Alaun-Lösung durch Auflösen von 1 g Karmin und 2,5 g Aluminiumkaliumsulfat in 500 ml destilliertem Wasser und kochen für 20 Minuten in einem 1-Liter-Erlenmeyerkolben. Passen Sie das endgültige Volumen auf 500 ml mit Wasser. Filter durch ein Whatman-Papier und eine kleine Menge von Thymol (einige Körner) als Konservierungsmittel. Kühlschrank. Nach der Färbung kann carmine Alaun-Lösung zurück zum Lager Flasche gegossen und wiederverwendet werden oft über mehrere Wochen. Machen Sie eine frische Lösung, wenn Farbe blass. </li><li> Nach Auslösen der Brustdrüse der Maus (Schritt 1), breitete sie direkt auf einen Objektträger. Versuchen Sie es so viel wie möglich glätten, unter Beibehaltung der ursprünglichen Form in situ. Die Drüse wird auf der Folie schön bleiben, wenn sie richtig gespannt. </li><li> Fix die Drüse durch Eintauchen, auf der Folie, in Carnoy Fixativ (100% EtOH, Chloroform, Eisessig; 6:3:1) für 4 Stunden im Abzug bei Raumtemperatur in einem Glas. Beachten Sie, dass andere haben 2 Stunden, die ausreichen zu sein scheint. Alternativ können Drüsen auch bei 4 ° C über Nacht behoben werden. </li><li> Wash in 70% Ethanol für 15 min. Dann, allmählich rehydrieren in Wasser, indem die Hälfte der Ethanol-Lösung aus dem Glas und ersetzt sie durch ddH 2 O. Inkubieren für 5 min. Wiederholen Sie die 3-fache. Alternativ können Sie 70% - 35% - 15% - Ethanol und Wasser Bäder für jeweils 5 Minuten. </li><li> Spülen in destilliertem Wasser für 5 Minuten. </li><li> Färben in Carmin Alaun über Nacht bei Raumtemperatur. Anzumerken ist, dass Färbung könnte länger dauern, abhängig von der Dicke der Drüse sein. </li><li> Nehmen Sie carmine Alaun Flecken die Wiederverwendung und allmählich austrocknen gefärbten Gewebeschnitten durch serielle Ethanol Bäder (50%, 70%, 95%, 100%) für jeweils 5 min und klar in Xylol oder in eine ungiftige Alternative wie Histo-clear, Übernachtung. Beide Entwässerung und Clearing kann auch eine längere Inkubationen mit dickeren Proben. </li><li> Tauchen Brustdrüse in Methylsalicylat. Brustdrüsen kann in Methylsalicylat in einem Abzug aufbewahrt werden, bis Bilder bereit zu fassen sind. </li><li> Bilder können in einem Abzug mit einer normalen Digitalkamera auf einem Stativ (verwenden Sie "Makro"-Funktion, wenn verfügbar), indem Sie die Dias auf einem Leuchttisch positioniert genommen werden. Verwenden Sie ein Binokular für höhere Vergrößerung. Alternativ können Milchdrüsen in Medien wie Permount montiert werden (nach Schritt 2,7) ermöglicht für Bilder außerhalb einer chemischen Abzugshaube auf jedem Imaging-Plattform bietet den Halterungen genommen werden sind ausreichend dünn. </li><li> Um Brustdrüse Entwicklung mit whole mount, Messungen wie die Anzahl der Verzweigungen (oder Seite-Filialen) sowie Teile der Kanäle, die Länge des primären Kanälen, oder ein Verhältnis von Epithelzellen an Fettgewebe Bereich beurteilt werden zu quantifizieren. Endlich, nach fotografischen Dokumentationzung, Brustdrüse gesamte Halterung kann in Paraffin zum Schneiden und konventionellen histologischen Färbung eingebettet werden. </li></ol> 3. Oxytocin-induzierte Milchspendereflex <ol><li> Trennen Sie die Welpen von der Mutter nur, wenn sie gefüttert wurden. Warten Sie 1 Stunde vor dem Test. </li><li> Sacrifice der Mutter und setzen die Brustdrüsen, wie zuvor beschrieben (Schritte von 1,1 bis 1,8), ohne sie aus dem Tier. </li><li> Starten Sie den Test durch gleichmäßiges Ablegen entweder PBS oder der Oxytocin-Lösung direkt auf die Brustdrüse von Interesse, mit einem Transferpipette. Ein großes Spektrum von Dosen verwendet werden können; ~ 8 pg / ml (physiologische Dosis) wird in der Regel eingesetzt. Allerdings können hohe nicht-physiologischen Dosen (bis zu 1 mg / ml) verwendet werden, um das Fehlen der Reaktion in genetisch veränderter Mausmodelle zu gewährleisten. Für dieses Verfahren ist es empfehlenswert, Thorax (# 2-3) Drüsen zu benutzen, mit der einen Seite als Kontrolle (ausgesetzt PBS) und die andere Seite zu Milchspendereflex (Oxytocin Belichtung) zu testen. </li><li> Inkubation für 1 Minute und entfernen Sie die Lösung durch vorsichtiges Absaugen mit einer Transferpipette. Milk Einstieg in die Kanäle kann durch Videoband oder durch Aufnahme von Bildern vor und nach der PBS oder Oxytocin Exposition überwacht werden. </li></ol> 4. Repräsentative Ergebnisse: In einem guten ganze Berg ist der Brustdrüse schön ausbreiten und das Epithel Kanäle sind leicht zu beobachten (Abbildung 2A). Wenn die Drüse ist nicht gut verteilt, kann es heben zum Teil oder ganz von der Folie, wenn in der Fixierlösung gelegt. Die Drüse wird dann hart und unbrauchbar (Abbildung 2B). Ebenso wird, wenn die Drüse nicht gut präpariert, entweder einen Teil des Epithels können fehlen (Abbildung 2C) bzw. der übrigen Teile der Haut oder der Bauchmuskel mit der Analyse der Drüse (Abbildung 2D) stören. Für die Oxytocin-Assay, ist es wichtig, den Säugling Welpen aus der Talsperre für die gleiche Menge an Zeit bei jeder Gelegenheit zu trennen. Auf diese Weise werden Sie sicherstellen, dass keine Milch oder kleine Mengen von Milch in den Kanälen vor der Oxytocin-Exposition ist, sondern auch, dass genügend Milch vorhanden ist in den Alveolen, die in den Kanälen von myoepithelialen Kontraktionen (Abbildung 3A) ausgeworfen werden kann . Wenn Welpen zu früh entfernt werden, kann Milch in den Alveolen und in den Kanälen machen die Wirkung von Oxytocin schwer zu überwachen (Abbildung 3B) zu akkumulieren. Alternativ, wenn das Experiment ist zu früh, nach pup Entfernung durchgeführt wird Milch keine Zeit, um in die Alveolen und Oxytocin-induzierte Kontraktionen der Myoepithelzellen ansammeln wird nicht ausgelöst genug Milch Freisetzung in die Kanäle zu beobachten (Abbildung 3C) werden. <img src="/files/ftp_upload/2828/2828fig1.jpg" alt="Abbildung 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 1"> Abbildung 1. Maus Brustdrüse Dissektion. Pin mit der Maus auf dem Rücken durch die vier Gliedmaßen (A). Schneiden Sie die Haut zunächst aus dem Bauch bis zum Hals. Dann machen Sie senkrecht Einschnitte von der Mitte des Bauches, um jedes Glied, wie durch die gestrichelte Linie (B) dargestellt. Vorsichtig schälen die Haut auf der Seite des Tieres und stecken Sie es, Freilegung der Brustdrüse (C). <img src="/files/ftp_upload/2828/2828fig2.jpg" alt="Abbildung 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 2"> Abbildung 2. Maus Brustdrüse ganze Berg. Epithel Kanälen (Pfeile) und der Lymphknoten (Pfeilspitze) sind leicht in einem schön verteilt Brustdrüse ganzen Berg Drüse # 4 beobachtet (A). Ein schlecht verteilt Brustdrüse kann von der Folie ablösen und zusammengebrochen, wodurch es unbrauchbar (B). Ein falsch ausgeschnitten Brustdrüse kann entweder fehlende Teile (C) oder Stücke von Muskel oder Haut verbleibenden (D). Beachten Sie, dass die 2 nd und 3 rd Drüsen Muskel verzahnt, kann aber immer noch für ganze Berg oder Histologie verwendet werden. <img src="/files/ftp_upload/2828/2828fig3.jpg" alt="Abbildung 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 3"> Abbildung 3. Oxytocin-induzierte Milchspendereflex kann in Epithel Kanälen beobachtet werden (Pfeile) nach Oxytocin-Exposition (A). Allerdings, wenn Kanäle sind bereits mit Milch (Pfeile) am Anfang des Tests wegen einer unangemessen langen Latenzzeit nach der letzten Säugen der Welpen, weitere Akkumulation von Milch in den Kanälen (Pfeile) nach Oxytocin Exposition gefüllt ist schwer zu zu beobachten (B). Alternativ wird eine kurze Latenzzeit nach Welpen säugt nicht genug Ansammlung von Milch ermöglichen in die Alveolen richtig in die Gänge (Pfeile) werden nach Oxytocin-Exposition (C) beobachtet. Die Bilder wurden vor und nach Oxytocin-Exposition mit Hilfe eines numerischen Kamera (Cybershot, Sony) aufgenommen. <img src="/files/ftp_upload/2828/2828fig4.jpg" alt="Abbildung 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Abbildung 4"> Abbildung 4. Schematische Darstellungen von ganzen Montage und Oxytocin Behandlung Assays.

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</ol>

Brustdrüse Entwicklung und Funktion sind eng orchestriert. Mutant Mäuse können Hafen-Gen-Mutationen, die Brustdrüse Entwicklung und Funktion Hervorhebung der Notwendigkeit, Drüse Architektur 13,12 bewerten beeinträchtigen können. Whole Montage kann wie in diesem Artikel auf allen Stufen der Brustdrüse Entwicklung beschrieben werden. Typischerweise wird die Entwicklung des Epithels zu Beginn der Pubertät (~ 4 Wochen alt) beurteilt, in der Mitte der Pubertät (~ 6 Wochen alt) und nach der Pubertät (~ 10-12 Woche...

<table border="1"><tbody><tr><th> Reagens </th><th> Firma </th><th> Katalog-Nummer </th></tr><tr><td> Karminrot </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> C1022 </td></tr><tr><td> Aluminiumkaliumsulfat </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A6435 </td></tr><tr><td> Thymol </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> T0501 </td></tr><tr><td> Methylsalicylat </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> M6752 </td></tr><tr><td> Oxytocin </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> O3251 </td></tr></tbody></table>

evaluation der brustdrüse entwicklung und funktion in mausmodellen

Evaluation of Mammary Gland Development and Function in Mouse Models

Der menschliche Brustdrüse von 15-20 Lappen zusammengesetzt, die Sekretion von Milch in eine Verzweigung Kanalsystem Öffnung an der Brustwarze. Die Lappen selbst sind eine Reihe von Terminal Kanal lobulären Einheiten der sekretorischen Alveolen und konvergierenden Kanäle 1 zusammengesetzt. Bei Mäusen ist eine ähnliche Architektur an der Schwangerschaft in die Gänge und Alveolen in das bindegewebige Stroma eingestreut werden eingehalten. Die Maus Brustdrüse Epithel ist ein Baum wie Gangsystem aus zwei Schichten von Zellen, eine innere Schicht aus luminalen Zellen, die durch eine äußere Schicht aus Myoepithelzellen durch die Grenzen eines Basalmembran 2 bezeichnet umgeben ist. Bei der Geburt ist nur eine rudimentäre duktale Baum vorhanden ist, besteht aus einem primären Kanal und 15-20 Filialen. Niederlassung Dehnung und Verstärkung beginnen am Anfang der Pubertät, ca. 4 Wochen alt, unter dem Einfluss von Hormonen 3,4,5. Bei 10 Wochen, wird der Großteil des Stroma durch ein komplexes System von Kanälen, die Zyklen der Verzweigung und Regression in jeder Läufigkeit bis Schwangerschaft 2 wird zu unterziehen eingedrungen. Zu Beginn der Schwangerschaft, beginnt eine zweite Phase der Entwicklung, mit der Proliferation und Differenzierung des Epithels auf Trauben-förmige Milch sekretorischen Strukturen, so genannte Alveolen 6,7 bilden. Nach der Geburt und während der Stillzeit wird die Milch durch luminale sekretorische Zellen produziert und gelagert im Lumen der Alveolen. Oxytocin, ein neuronales Reflex Säugen der Welpen induzierte stimulierte, induziert synchronisiert Kontraktionen der Myoepithelzellen um die Alveolen und entlang der Kanäle, so dass Milch durch die Milchgänge zur Brustwarze, wo es verfügbar wird, um die Welpen 8 transportiert werden. Brustdrüse Entwicklung, Differenzierung und Funktion sind eng orchestriert und erfordern nicht nur Interaktionen zwischen Stroma und Epithel, sondern auch zwischen myoepithelialen und luminalen Zellen innerhalb des Epithels 9,10,11. Dabei können Mutationen in vielen Genen in diesen Interaktionen verwickelt beeinträchtigen entweder duktalen Dehnung während der Pubertät oder Alveolen Bildung in der frühen Schwangerschaft, Differenzierung während der späten Schwangerschaft und sekretorischen Aktivierung führt zu Laktation 12,13. In diesem Artikel beschreiben wir, wie man mit der Maus Milchdrüsen sezieren und beurteilen ihre Entwicklung mit ganzen mounts. Wir zeigen auch, wie man myoepithelialen Kontraktionen und Milchspendereflex mit einem ex-vivo Oxytocin-basierten funktionellen Assays zu bewerten. Der Effekt einer Genmutation auf Brustdrüse Entwicklung und Funktion kann also in situ, indem diese beiden Techniken in der Mutante und Wildtyp-Mäusen der Kontrollgruppe festgestellt werden.

Diese Methode beschreibt, wie zu sezieren und zu bewerten Brustdrüse Entwicklung und Funktion von Mäusen. Abgeschnittene Milchdrüsen sind für den Grad der Entwicklung mit whole mount beurteilt, während Milchspendereflex wird ausgewertet, wobei Oxytocin-basierte myoepithelialen Zelle Kontraktion Assay.

Evaluation der Brustdrüse Entwicklung und Funktion in Mausmodellen

Die menschliche Milchdrüse besteht aus 15–20 Lappen, die Milch in ein verzweigtes Gangsystem abgeben, das an der Brustwarze mündet. Diese Lappen sind wiederum ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, die Entwicklung der Brustdrüsen bei Wildtyp- und Mutantenmäusen zu beurteilen. Dies wird erreicht, indem zunächst eine Maus seziert wird, um die Brustdrüsen freizulegen. Anschließend werden die Brustdrüsen korrekt entnommen und auf Objektträgern ausgebreitet, calm lum.Die Färbung wird anschließend verwendet, um den Umfang der Epithelentwicklung zu analysieren. Schließlich wird die Kontraktion der Myoepithelzellen nach Exposition gegenüber Oxytocin analysiert, INEA J.Ultimately. Letztendlich werden die erhaltenen Ergebnisse zeigen, ob die Milchgangsysteme und Alveolen korrekt gebildet wurden und ob das Myoepithel durch Oxytocin zur Kontraktion angeregt und die Milch ausgestoßen werden kann. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen zur Entwicklung und Differenzierung der Brustdrüse zu beantworten, beispielsweise den Einfluss einer Genmutation oder eines Gen-Knockouts auf die Morphologie und Funktion der Brustdrüse.Die visuelle Demonstration dieser Methode gewährleistet eine korrekte Dissektion der Brustdrüse, da sowohl die Lochmontage als auch der auf Oxytocin basierende Test gut präparierte Brustdrüsen erfordern. Eine unzurei

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Biologie

Dieser Artikel veranschaulicht das Verfahren, nach DeOme KB...

Brustepithelzellen Transplantation

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Zeitraffer-Imaging of Primary Präkanzeröse Brustepithelzellen aus gentechnisch veränderten Mausmodellen der Breast Cancer Abgeleitet

Die in diesem Artikel beschriebene indirekte Immunofluoreszenz-Protokoll ermöglicht den Nachweis und die Lokalisierung von Proteinen in der Milchdrüse der Maus. Eine vollständige Verfahren wird gegeben, um Brustdrüsenproben herzustellen, um die Immunhistochemie die Gewebeschnitte durch Fluoreszenzmikroskopie durchführen, um Bild und um Bilder zu rekonstruieren.

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Dieser Artikel beschreibt eine Transplantationsmethode, um Spenderratten-Epithelzellen in das interskapulierliche weiße Fettpolster von Empfängertieren zu transplantieren. Diese Methode kann verwendet werden, um wirtliche und/oder Spendereffekte auf die Entwicklung von Brustepithel zu untersuchen und eliminiert die Notwendigkeit einer Vorabklärung, wodurch die Nützlichkeit dieser Technik erweitert wird.

Ratte Mammary Epithel Cell Transplantation in das interskapulierische weiße Fettpad

Die Brustdrüse ist eine zweischichtige Struktur, die äußere myoepitheliale und innere luminale Epithelzellen umfasst. Präsentiert ist ein Protokoll zur Vorbereitung von Organoiden mit Differential-Trypsinisierung. Diese effiziente Methode ermöglicht es Forschern, diese beiden Zelltypen getrennt zu manipulieren, um Fragen über ihre Rolle in der Form und Funktion der Brustdrüse zu untersuchen.

Generierung von Mosaik-Mammary-Organoiden durch Differential-Trypsinisierung

Patientenbasierte Xenograft-Modelle (PDX) und transplantierbare gentechnisch veränderte Mausmodelle rekapitulieren menschliche Krankheiten originalgetreu und sind bevorzugte Modelle für die grundlegende und translationale Brustkrebsforschung. Hier wird eine Methode beschrieben, Brusttumorfragmente orthotopisch in das Brustfettpolster zu transplantieren, um die Tumorbiologie zu untersuchen und die Arzneimittelreaktion zu bewerten.

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Dieses Protokoll beschreibt ein neuartiges Brustbildfenster mit einem austauschbaren Deckel (R.MIW). Die intravitale Mikroskopie nach Implantation des R.MIW ermöglicht eine Längs- und Mehrtagesbildgebung der gesunden und erkrankten Brustdrüse mit zellulärer Auflösung während der verschiedenen Entwicklungsstadien.

Längsschnittliche intravitale Mikroskopie unter Verwendung eines Brustbildgebungsfensters mit austauschbarem Deckel

Das vorliegende Protokoll beschreibt eine einfache Technik zur intravitalen Bildgebung der Milchdrüse der laktierenden Maus mittels konfokaler Laserscanning- und Multiphotonenmikroskopie.

Intravitale subzelluläre Mikroskopie der Brustdrüse

Dieses Protokoll beschreibt einen skalierbaren intraduktalen CRISPR-Screening-Ansatz, der parallele in vivo Gen-Knockout- und Aktivierungsstudien in der Mammarydrüse der Maus ermöglicht.

Paralleles In vivo-Screening von Gen-Knockout und -Aktivierung in der Mammarisdrüse der Maus

Lernen Sie die Entwicklung und Funktion der Brustdrüse in Mausmodellen zu bewerten. Diese Methode umfasst Präparation, Färbung und Oxytocin-induzierte Kontraktionsanalysen zur Untersuchung von Genmutationseffekten.

Evaluation der Brustdrüse Entwicklung und Funktion in Mausmodellen

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