Mesothelialer Clearance-Assay: Eine in vitro Technik zur Quantifizierung der Invasionsfähigkeit von Eierstockkrebs-Sphäroiden in mesotheliale Zellmonoschichten

0 Ansichten4:34 Min. • April 30th, 2023

Während der Metastasierung von Eierstockkrebs lösen sich bösartige Zellen von der primären Tumorstelle und beginnen in der Bauchhöhle zu zirkulieren. Diese Zellen können dann Cluster oder Sphäroide bilden, die an der Monoschicht der Mesothelzellen haften, die die Bauchhöhle auskleiden. Wenn der Tumor wächst, beseitigt er die darunter liegenden Mesothelzellen, um die Invasion zu erleichtern.

Um die mesotheliale Clearance zu modellieren, beginnen Sie mit der Aussaat von Mesothelzellen, die grün fluoreszierendes Protein oder GFP exprimieren, in eine mit Fibronektin beschichtete Kulturschale mit Glasboden. Die Fibronektin-Beschichtung sorgt für eine Matrix, die die Zelladhäsion fördert. Inkubieren Sie die Schale, damit sich die Mesothelzellen ausbreiten und eine Monoschicht bilden können.

Übertragen Sie als Nächstes eine Suspension von Eierstockkrebszell-Sphäroiden, die rot fluoreszierendes Protein exprimieren, auf die mesotheliale Monoschicht. Bilde die Kultur über einen längeren Zeitraum mit Hilfe der Zeitraffer-Fluoreszenzmikroskopie. Die rot fluoreszierenden Sphäroide setzen sich ab und binden sich an die grün fluoreszierende mesotheliale Monoschicht.

Die Krebszellen üben Kraft auf die Mesothelzellen aus, stören die Zellverbindungen und verändern die Integrität der Mesothelschicht. Die Kraft verschiebt auch die darunter liegenden Mesothelzellen, wodurch ein Loch entsteht. Wählen Sie eine geeignete GFP-Filtereinstellung, um das resultierende Loch als schwarzen Bereich im Bild zu visualisieren. Messen Sie den Raum, um das Ausmaß der mesothelialen Clearance zu quantifizieren.

Um diesen Vorgang zu starten, beschichten Sie die Vertiefungen einer MatTek-Schale mit 6-Well-Glasboden mit Fibronektin. Geben Sie 2 Milliliter Fibronektin/PBS-Lösung in jede Vertiefung der Schale und inkubieren Sie sie 30 Minuten lang bei Raumtemperatur. Die grün fluoreszierenden Protein-exprimierenden Mesothelzellen zur Bildung einer Mesothelzell-Monoschicht werden in 10%igem Basismedium kultiviert. Trypsinisieren Sie eine Platte mit Mesothelzellen und drehen Sie sie drei Minuten lang in einer Tischzentrifuge bei 900 U/min.

Aspirieren Sie den Überstand und resuspendieren Sie die Zellen in 10 % Basismedium. Mit 10% Basismedium auf die gewünschte Konzentration einstellen. Wenn die 30-minütige Fibronektin-Inkubation der MatTek-Schale abgeschlossen ist, waschen Sie die Vertiefungen mit 2 Millilitern PBS. Aspirieren Sie das PBS und die Platte 6 mal 10 bis zu den fünften mesothelialen Zellen pro Vertiefung in jeder Vertiefung der 6-Well-MatTek-Schale. Inkubieren Sie die MatTek-Schale über Nacht in einem 37 Grad Celsius heißen Zellkultur-Inkubator, damit sich die Mesothelzellen an der Schale anheften und eine Monoschicht bilden können.

Verwenden Sie eine Pipette, um die Eierstockkrebs-Sphäroide von der 96-Well-Poly-HEMA-beschichteten Platte zu sammeln. Aspirieren Sie das Medium aus einer Vertiefung der 6-Well-MatTek-Schale, die eine mesotheliale Zellmonoschicht enthält. Einmal mit 2 Millilitern PBS waschen. Geben Sie alle Sphäroide aus der 96-Well-Platte in eine Vertiefung der MatTek-Schale. Dies ist ungefähr das Dreifache der Anzahl der Sphäroide, die abgebildet werden, um die Sphäroide zu berücksichtigen, die auf dem Teil der Schüssel landen, der nicht abgebildet werden kann.

Da wir nur ein Sphäroid pro Sichtfeld abbilden wollen, muss eine Aggregation der Sphäroide vermieden werden. Schütteln Sie die Schale vorsichtig von einer Seite zur anderen, um die Sphäroide gleichmäßig auf der Monoschicht zu verteilen, bevor sie sich ansetzen.

Stellen Sie die MatTek-Schüssel auf den Tisch eines inversen Weitfeld-Fluoreszenzmikroskops, das mindestens acht Stunden lang Zeitrafferaufnahmen durchführen kann. Verwenden Sie einen motorisierten Tisch, um mehrere Positionen in der Schale mit mehreren Sphäroid-Interkalationsereignissen in einem einzigen Experiment abzubilden. Die Sphäroide der Eierstockkrebszellen setzen sich am Boden der Schale ab und heften sich an die Monoschicht der Mesothelzellen. Sammeln Sie GFP-, RFP- und Phasenbilder von mehr als 20 Sphäroid-/Monolayer-Wechselwirkungen alle zehn Minuten für acht Stunden.

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Beurteilung von Eierstockkrebs Sphäroid Bindung und Invasion von Mesothelzellen in Echtzeit

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Zuletzt aktualisiert: 29 August 2026