Snap Freezing von Muskelgewebe für das Schneiden: Ein Protokoll zur Gewinnung ultradünner Schnitte von schnell eingefrorenem Mausmuskelgewebe

0 Ansichten3:30 Min. • April 30th, 2023

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Schockfrosten ist eine Technik, bei der Gewebeproben schnell auf ultrakalte Temperaturen eingefroren werden. Es hilft, die native Struktur von DNA, RNA und Proteinen im Gewebe zu erhalten.

Um den Gliedmaßenmuskel einzufrieren, beginnen Sie damit, frisch entnommenes Muskelgewebe aus der Hintergliedmaße einer Maus zu entnehmen.

Nehmen Sie dann flüssigen Stickstoff in eine Styroporbox und tauchen Sie ein Becherglas mit Isopentan - einer hochleitfähigen Flüssigkeit - in flüssigen Stickstoff.

Frieren Sie das Isopentan ein, bis die Lösung zähflüssig wird. Tragen Sie gleichzeitig einen Tropfen flüssiges Gefriermittel auf ein Korkstück auf.

Positionieren Sie das Muskelgewebe der Hintergliedmaßen, indem Sie die Sehne festhalten, und betten Sie das Gewebestück senkrecht in das flüssige Gefriermedium ein. Diese Orientierung hilft bei der anschließenden Bestimmung der Querschnittsfläche des Muskels.

Tauchen Sie das Korkstück mit anhaftendem Muskelgewebe kurz in das vorgekühlte Isopentanbad. Dies hilft beim schnellen und gleichmäßigen Einfrieren von Muskelgewebe.

Das Gefriermedium verfestigt sich bei niedriger Temperatur und bildet eine gallertartige Schicht um das Muskelgewebe, die es an Ort und Stelle hält. Legen Sie den Muskelblock in ein Kryo-Mikrotom, um dünn geschnittene Abschnitte zu erhalten.

Legen Sie die Schnitte auf Objektträger und lagern Sie sie bei einer niedrigeren Temperatur für die weitere histologische Analyse.

Wenn alle Muskeln gesammelt sind, tauchen Sie die untere Hälfte eines isopentanhaltigen 50-Milliliter-Bechers aus Kunststoff in flüssigen Stickstoff. Wenn das Isopentan leicht viskos wird und eine feste weiße Laminatauskleidung im Inneren des Becherglases sichtbar ist, gießen Sie ein paar Tropfen Einbettmedium auf ein Futter.

Nehmen Sie dann einen Muskel an der Sehne auf und positionieren Sie das Ende des frischen Muskels vorsichtig auf dem Einbettmedium, indem Sie es vertikal relativ zum Korken halten. Halten Sie dann den Muskel senkrecht und tauchen Sie das Spannfutter und den anhaftenden Muskel für 7 bis 15 Sekunden in das Isopentanbad, bis das Gewebe vollständig gefroren ist. Ein gut gefrorenes Exemplar erscheint kalkweiß. Legen Sie dann den Muskel zur sofortigen Lagerung bei minus 80 Grad Celsius in ein Probenröhrchen.

Um die RNAs und die enzymatische Struktur und Aktivität der Proben zu erhalten, ist es erforderlich, das Muskelgewebe so schnell wie möglich nach seiner Extraktion einzufrieren.

Um das gefrorene Muskelgewebe zu schneiden, stellen Sie zunächst die Arbeitstemperatur der Innenkammer des Kryostaten auf minus 23 Grad Celsius ein. Lassen Sie die Probe mit einer Temperatur von minus 80 Grad Celsius einige Stunden lang an die Arbeitstemperatur gewöhnen. Entnehmen Sie dann mehrere 8 Mikrometer dicke Schnitte der Probe im mittleren Bauchbereich des Muskels, senkrecht zur Montageachse, und sammeln Sie die Schnitte auf Glasobjektträgern bei Raumtemperatur, während sie geschnitten werden. Bewahren Sie die Proben in der Kryostatkammer auf, bis alle Schnitte entnommen wurden. Lagern Sie die Proben dann bis zur weiteren Analyse bei minus 80 Grad Celsius.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026