Gradientenzentrifugation basierte Reinigung von Kernen: Eine Technik zur Gewinnung einer hochreinen Fraktion intakter Kerne mittels Dichtegradientenzentrifugation

0 Ansichten3:05 Min. • April 30th, 2023

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Um intakte Zellkerne zu isolieren und zu reinigen, beginnen Sie mit der Entnahme einer rohen Kernfraktion in einem Röhrchen. Die Fraktion enthält intakte Kerne sowie zerbrochene Kernfragmente und Trümmer.

Diese Fraktion wird mit einem geeigneten Dichtegradientenmedium so gemischt, dass sie eine Suspension mit der niedrigsten Konzentration bildet.

Nun werden Lösungen mit zunehmender Dichte des gleichen Gradientenmediums unter die vorpräparierte Rohkernfraktion geschichtet, um einen mehrstufigen diskontinuierlichen Dichtegradienten zu erzeugen. Dieser Schritt ermöglicht es der rohen Kernfraktion, ein Band am oberen Rand des Gradienten zu bilden.

Zentrifugieren Sie anschließend das Röhrchen bei niedriger Geschwindigkeit.

Aufgrund der Unterschiede in Form und Masse wandern intakte Kerne anders als Trümmer und Kernfragmente. Dies führt dazu, dass intakte Zellkerne eine separate Bande bilden.

Nach der Zentrifugation lokalisiert man die unterschiedliche Bande, die aus intakten Kernen besteht, an der Grenzfläche der Dichtegradientenlösungen.

Aspirieren Sie mit einer Pipette die oberen Schichten des Gradienten, um den Zugang zur reinen Kernbande zu erleichtern. Sammeln Sie die kernhaltige Bande in einem frischen Röhrchen.

Visualisieren Sie diese Kerne unter einem Lichtmikroskop. Intakte Kerne erscheinen perfekt rund und werden von einer intakten Kernmembran umgeben.

Lagern Sie schließlich die reine Kernfraktion für die weitere Analyse.

Geben Sie 200 Mikroliter 50%ige Iodixanollösung in die Zellkerne, um eine Endkonzentration von 25% Iodixanol zu erreichen, und mischen Sie 10 Mal, wobei die Pipette auf 300 Mikroliter eingestellt ist.

Geben Sie dann 300 Mikroliter 29%ige Iodixanollösung mit einer feinen P1000-Spitze unter die 25%ige Mischung, um ein Vermischen der Schichten zu vermeiden. Geben Sie 300 Mikroliter 35%ige Iodixanollösung mit einer feinen P1000-Spitze unter die 29%ige Mischung. Entfernen Sie es dann langsam.

Geben Sie die Proben in eine schwingende Eimerzentrifuge und schleudern Sie sie 20 Minuten lang bei 3.500 x g bei 4 Grad Celsius bei ausgeschalteter Bremse.

Entnehmen Sie die Proben vorsichtig und ohne Schütteln und betrachten Sie sie unter Licht. Zwischen der zweiten und dritten Schicht sollte eine klare weiße Bande aus 95% reinen Kernen sichtbar sein.

Um die Kerne zu isolieren, aspirieren Sie die oberen Schichten, um das weiße Kernband an der Grenzfläche freizulegen. Sammeln Sie die Kernbande in einem Volumen von 200 Millilitern und geben Sie sie in ein frisches Röhrchen. Filtern Sie es dann mit einem 20-Mikrometer-Filter.

Überprüfen Sie die Kerne unter einem Lichtmikroskop, um die Entfernung großer Trümmer und die Unversehrtheit der Kernmembran zu überprüfen. Sie sollten rund sein und die Kernmembran sollte nicht verzerrt sein.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026