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Mikrogliazellen geben Immunmediatoren in Form von extrazellulären Vesikeln oder EVs, einschließlich größerer apoptotischer Körper und kleinerer mikrogroßer Vesikel, in vitro an Wachstumsmedien ab.
Um EVs zu isolieren, beginnen Sie mit der Einnahme von Mikroglia-konditionierten Medien. Dieses Nährmedium enthält Mikrogliazellen zusammen mit den freigesetzten EVs. Zentrifugieren Sie das Medium, um die Zellen zu pelletieren.
Sammeln Sie den Überstand mit den EVs, den Rückständen und den Proteinaggregaten in einem frischen Röhrchen. Zentrifugieren Sie erneut, um zelluläre Trümmer und große apoptotische Körper zu entfernen.
Den Überstand in ein Ultrazentrifugenröhrchen überführen. Zentrifugieren Sie mit hoher Geschwindigkeit.
Der Überstand, der das verbrauchte Medium enthält, wird verworfen und das EV- und Proteinaggregatpellet in den gewünschten Puffer resuspendiert.
Nehmen Sie gleichzeitig eine Größenausschluss-Chromatographiesäule mit einem geeigneten Filter an der Basis.
Verpacken Sie die Säule fest mit einer Gel-Filtrationsmatrix, die aus kugelförmigen Gelkügelchen besteht, die ein poröses Sieb mit definierter Porengröße bilden.
Laden Sie das EV und die Proteinaggregatsuspensionssuspension auf die stationäre Phase.
Während die Suspension die Säule passiert, bewegen sich größere EVs durch die Zwischenräume zwischen den Gelkügelchen und legen einen kürzeren Weg zurück. Im Gegensatz dazu wandern die kleineren Proteinaggregate in die Poren und nehmen einen längeren Weg.
Folglich eluieren EVs zuerst aus der Säule.
Sammeln Sie die Fraktionen, die EVs enthalten, und verwenden Sie sie für die weitere Analyse.
Übertragen Sie das konditionierte Kulturmedium aus Mikroglia- oder Makrophagenkulturen in ein konisches Röhrchen und zentrifugieren Sie es bei 1.200 x g für 10 Minuten, um die Zellen zu pelletieren. Den Überstand in ein neues konisches Röhrchen überführen und weitere 20 Minuten zentrifugieren, um apoptotische Körper zu eliminieren.
Übertragen Sie dann den Überstand in ein 10,4-Milliliter-Polycarbonatröhrchen. Setzen Sie das Röhrchen in einen 70,1 Ti Rotor ein und zentrifugieren Sie es 90 Minuten lang bei 100.000 x g bei 4 Grad Celsius, um die Elektrofahrzeuge zu pelletieren. Nach der Zentrifugation wird der Überstand verworfen und das Pellet in 200 Mikrolitern 0,2 Mikrometer filtriertem PBS resuspendiert.
Um die EVs zu isolieren, bereiten Sie eine hausgemachte Größenausschluss-Chromatographiesäule vor, indem Sie eine Glaschromatographiesäule waschen und sterilisieren und einen 60-Mikrometer-Filter am Boden platzieren. Stapeln Sie die Säule mit einer vernetzten Agarosegel-Filtrationsbasismatrix, um eine stationäre Phase mit einem Durchmesser von 0,6 Zentimetern und einer Höhe von 20 Zentimetern zu erzeugen.
Spülen Sie dann die Phase mit 50 Millilitern 0,2 Mikrometer filtriertem PBS. Lagern Sie die Säule bei Bedarf bei 4 Grad Celsius für den späteren Gebrauch. Legen Sie das resuspendierte EV-Pellet auf die stationäre Phase und sammeln Sie 20 sequenzielle Fraktionen von 250 Mikrolitern, während Sie PBS an der Oberseite der stationären Phase hinzufügen. Die Fraktionen können bei minus 20 Grad Celsius gelagert werden.