Imaging Fixture Support Mouse Liver Staging für Multiphotonenmikroskopie basierte Gefäßvisualisierung: Eine stabilisierungsgerätgestützte Bildgebungstechnik zur Gewinnung mehrdimensionaler Bilder von Blutgefäßen in der Mausleber

0 Ansichten4:09 Min. • July 8th, 2025

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Die Multiphotonenmikroskopie ermöglicht die Aufnahme von hochauflösenden, dreidimensionalen Bildern des fluoreszenzmarkierten Gefäßsystems im lebenden Gewebe. Beginnen Sie mit einer betäubten Maus in Rückenlage.

Injizieren Sie vorsichtig eine Suspension aus konjugiertem Fluorophor-Dextran in die Schwanzvene. Die injizierten Moleküle fließen durch den Kreislauf und erreichen Organe wie die Leber. Der Fluoreszenzfarbstoff markiert das Gefäßserum und erleichtert so die Visualisierung der Blutgefäße, während das daran gebundene hochmolekulare Dextran deren Austritt aus dem Gefäßsystem verhindert.

Bereiten Sie den Bauchbereich der Maus vor. Übertragen Sie es auf die Basis des Organ-Bildgebungsrahmens, der mit einem Saugring mit Bildgebungslinse ausgestattet ist, der mit einer Vakuumpumpe verbunden ist. Entlang des unteren sternalen Randes einschneiden, um die Leber freizulegen.

Führen Sie den Saugring zur Leber und üben Sie Vakuum oder Unterdruck aus, der die Adsorption der Leber an die Linse im Saugring erleichtert. Dieser Schritt reduziert die Bewegungsartefakte während der Bildgebung. Übertragen Sie den maushaltigen Bildgebungsrahmen auf den Multiphotonen-Laserscanning-Mikroskoptisch.

Decken Sie die Linse mit Kochsalzlösung ab, die als Immersionsmedium für hochauflösende Aufnahmen dient. Während der Bildgebung ermöglichen die fokussierten langwelligen Photonen mit niedrigerer Energie eine tiefere Gewebepenetration und regen Fluorophore in den Blutgefäßen im Brennpunkt an, was die Emission und Detektion von Fluoreszenzsignalen bewirkt.

Eine Reihe von Scans aus den ausgewählten optischen Schnitten in unterschiedlichen Tiefen erstellt ein vollständiges dreidimensionales Bild der Blutgefäße im Gewebe.

Nachdem Sie bestätigt haben, dass bei einer narkotisierten 8 Wochen alten männlichen C57BL/6-Maus kein Aufrichtungsreflex vorhanden ist, wischen Sie den Schwanz der Maus mit 75% Alkohol ab und injizieren Sie mit einer 1-Mikroliter-Spritze mit einer 30-Gauge-Nadel 10 Milligramm pro Milliliter frisch zubereitetes Rhodamin B-Isothiocyanat-Dextran in 100 Mikroliter Rhodamin B-Isothiocyanat-Dextran in die kaudale Schwanzvene.

Wenn die gesamte Lösung abgegeben wurde, üben Sie mit einem Wattestäbchen Druck auf die Einstichstelle aus und verwenden Sie mit sterilem Wasser angefeuchtete Gaze, um das Bauchfell einzuweichen. Rasieren Sie den Bauch mit einem Rasierer, streichen Sie in Richtung des Fells und legen Sie die Maus auf ein 37 Grad Celsius heißes, alkoholdesinfiziertes Heizkissen.

Um die Leber der Maus mit einem Rahmen für die Bildgebung von Körperorganen zu fixieren, stellen Sie zunächst einen sauberen Saugnapf mit einem Durchmesser von 5 Millimetern in eine feste Position und wischen Sie das Heizkissen und den Saugnapf mit 75 % Alkohol ab. Schließen Sie den Saugnapf an den Schlauch der Vakuumpumpe an und schalten Sie die Pumpe ein.

Schneiden Sie auf einem mit 75 % Alkohol sterilisierten Tisch mit einer chirurgischen Schere 2 Zentimeter Haut vom unteren sternalen Rand der Maus ab und legen Sie die Leber frei. Platzieren Sie die Maus und das Heizkissen auf der Halterungsbasis des Körperrahmens und stellen Sie die Organbildgebungshalterung so ein, dass der Saugnapf die Leber halten kann. Saugen Sie dann mit einem Unterdruck von 30 bis 35 Kilopascal ab, so dass die Leber an der Pfanne ansetzt.

Um das Multiphotonen-Laser-Scanning-Mikroskop einzurichten, schalten Sie das Mikroskop ein und wählen Sie das 60-fach-Objektiv aus. Befestigen Sie den Rahmen und die Maus unter dem Objektiv und geben Sie einen Tropfen normale Kochsalzlösung in den Becher, der groß genug ist, um das Objektiv zu bedecken. Stellen Sie das Objektiv so ein, dass das Objektiv nur die normale Kochsalzlösung berührt, und schalten Sie die Lasersoftware ein.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026