TTC-Färbung von Gewebeschnitten aus dem Hirngewebe der Ratte: Ein Färbeverfahren zur Unterscheidung von lebensfähigem und nekrotischem Gewebe in Gewebeschnitten nach Ischämie-Reperfusionsschäden

0 Ansichten3:40 Min. • July 8th, 2025

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Während der Hirnischämie verringert eine gestörte Durchblutung des Gehirns die Sauerstoff- und Nährstoffversorgung des Gewebes, was zu Hirnschäden führt. Nach einer kurzen Ischämie, wenn der Blutfluss zum Gehirn wiederhergestellt wird, führt die Reperfusion mit erhöhter Sauerstoffversorgung zu einer Überproduktion reaktiver Ionenspezies, was zu oxidativen Gewebeschäden führt, die als Ischämie-Reperfusionsschäden bekannt sind.

Um Hirnschäden nach Ischämie-Reperfusionsschäden in einem Rattenmodell zu beurteilen, wird zunächst das Rattengehirn entnommen. In einem gekühlten Puffer abspülen, um Schmutz und Blut zu entfernen. Schneiden Sie das Gehirn, um koronale Scheiben der gewünschten Dicke zu erhalten. Übertragen Sie die Scheiben vorsichtig in eine pufferhaltige Schale - mit den vorderen Flächen nach oben - für die anschließende Färbung.

Geben Sie eine Lösung aus warmem Triphenyltetrazoliumchlorid, TTC, einem wasserlöslichen Redoxfarbstoff, über die Gehirnschnitte. Inkubieren Sie unter dunklen Bedingungen, da TTC lichtempfindlich ist. TTC dringt in Zellen innerhalb des Gewebeabschnitts ein.

In lebenden Zellen reduziert das aktive mitochondriale Succinat-Dehydrogenase-Enzym in Gegenwart von Cofaktoren TTC, das bei Oxidation farblos ist, in wasserunlösliches, rotes Formazan und färbt lebensfähige Zellen tiefrot. Nekrotischen Zellen fehlt es jedoch an Dehydrogenase-Aktivität; so bleibt TTC in oxidierter Form und färbt die Zellen weiß.

Übertragen Sie die Gehirnschnitte nach der Inkubation in eine Bildgebungsschale. Trennen Sie die Hemisphären in der Sagittalebene. Stellen Sie sich die Gehirnschnitte vor.

Gesundes Gewebe erscheint rot, während geschädigtes Gewebe weiß erscheint, wodurch nekrotisches Gewebe von lebensfähigem Gewebe unterschieden und das Ausmaß der Gewebeschädigung abgeschätzt werden kann.

Nachdem Sie das Gehirn einschließlich des Hirnstamms aus dem Schädel entfernt haben, platzieren Sie das Gehirn mit der Bauchseite nach oben in der Hirnmatrix. Je nach Gewicht der Tiere wählen Sie die richtige Größe der Gehirn-Edelstahlmatrix. Schränken Sie mit Hilfe von Klingen die frontalen und kaudalen Teile des Gehirns ein. Stecken Sie dann die Klingen teilweise in die Kanäle zwischen der ersten und der letzten Klinge.

Wenn alle Klingen eingeführt und parallel angeordnet sind, drücken Sie alle Klingen gleichzeitig mit der Handfläche nach unten, um das Gehirn in 2 Millimeter große koronale Scheiben zu schneiden. Fassen Sie dann die Klingen mit zwei Fingern fest an den Seiten entlang und entfernen Sie sie zusammen mit dem aufgeschnittenen Gehirn aus der Matrix. Ordnen Sie die Gehirnschnitte nacheinander in einer Schale an, wobei Sie darauf achten, dass die vordere Oberfläche jeder Scheibe immer nach oben zeigt.

Gießen Sie anschließend warme 1%ige Triphenyltetrazoliumchloridlösung und PBS auf die Gehirnschnitte und inkubieren Sie 8 Minuten lang bei 37 Grad Celsius im Dunkeln. Übertragen Sie die Gehirnscheiben nach der Inkubation in eine blaue Plastikschale, um Bilder aufzunehmen. Ordnen Sie die Hirnschnitte in sequenzieller Reihenfolge vom frontalen zum kaudalen Teil an und trennen Sie mit einem Skalpell die Hemisphären in der Sagittalebene.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026