Alizarin-Rot-Färbung: Eine Technik zur Visualisierung der Mineralisierung durch kultivierte Osteoblasten

0 Ansichten3:37 Min. • July 8th, 2025

Osteoblasten sind knochenbildende Zellen, die kleine Vesikel in ihre extrazelluläre Matrix, die EZM, sezernieren. Diese Vesikel, sogenannte Matrixvesikel, sind mit Membrantransportern und Enzymen ausgestattet, die den Eintritt von Kalzium- und Phosphationen ermöglichen und darin Mineralkristalle bilden. Wenn sich Kristalle ansammeln, durchbrechen sie die Vesikelmembran und bilden mineralisierte Knötchen in der EZM, die die Knochenmineraldichte bilden.

Um die Mineralisierung sichtbar zu machen, beginnen Sie mit Osteoblastenzellen auf einem biokompatiblen Gerüst in einem geeigneten Wachstumsmedium. Die Osteoblasten heften sich an das Gerüst und nutzen Wachstumsfaktoren aus dem Medium, um Matrixvesikel zu sezernieren, die anschließend in der EZM mineralisierte Knötchen bilden.

Aspirieren Sie das Kulturmedium und spülen Sie die Zellen, um alle Spuren des Mediums zu entfernen. Behandeln Sie die Zellen mit einer Formalinlösung, die die EZM-Vernetzung, Fixierung und Konservierung der Gewebestruktur induziert. Waschen Sie die Zellen, um restliches Formalin zu entfernen.

Fügen Sie dann Alizarinrot-Färbelösung hinzu und inkubieren Sie die Kultur. Die Farbstoffmoleküle binden an den mineralisierten Knoten und verbinden sich mit Kalzium, einem wichtigen Knochenmineral, und bilden große gefärbte Komplexe.

Saugen Sie die Färbelösung ab und waschen Sie sie gründlich, um ungebundene Farbstoffe zu entfernen. Unter dem Mikroskop erscheinen die kalziumreichen Mineralablagerungen als hellrote Knötchen in der EZM, was auf eine Mineralisierung durch die Osteoblasten hinweist.

Aspirieren Sie Kulturmedium aus primären Osteoblasten, 14 Tage nach Zugabe von osteogenem Mineralisierungsmedium. Zweimal mit 0,5 Millilitern 1X PBS spülen. Fixieren Sie dann die Zellen, indem Sie 0,5 Milliliter 10%ige gepufferte Formalinlösung hinzufügen und 10 Minuten lang bei Raumtemperatur inkubieren. Nach 10 Minuten das 10% gepufferte Formalin mit einer Einwegpipette aspirieren und zweimal mit 0,5 Millilitern Reinstwasser waschen. Geben Sie dann 250 Mikroliter 40 millimolare Alizarinrot S-Färbelösung zu den fixierten Osteoblasten und inkubieren Sie die Platte 10 Minuten lang bei Raumtemperatur auf einem Shaker bei 100 Schütteln pro Minute.

Nach der Inkubation mit Färbelösung die Färbelösung mit einer Einwegpipette ansaugen und mit 1 Milliliter Reinstwasser abspülen. Wiederholen Sie diesen Schritt 5 bis 10 Mal, bis sich die Spüllösung klar löst, um unspezifische Flecken zu entfernen. Nach dem Aspirieren der letzten Wäsche 1 Milliliter kaltes PBS hinzufügen und die Platte wie zuvor 10 Minuten bei Raumtemperatur auf einem Shaker inkubieren. Übertragen Sie anschließend die gefärbte Beta-Tricalciumphosphat-Scheibe in ein neues Bohrloch und scannen Sie die Platten mit einem Flachbettscanner, um die Mineralisierung aufzuzeichnen.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026