Alcianblau-Färbung zur Visualisierung von Proteoglykanen: Eine Technik zum Nachweis von Proteoglykanen in mesenchymalen Stammzell-differenzierten Chondrozytenkulturen in vitro

0 Ansichten2:42 Min. • July 8th, 2025

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Proteoglykane bestehen aus einem Kernprotein, das kovalent an sulfatierte Glykosaminoglykanketten gebunden ist.

Um Proteoglykane sichtbar zu machen, beginnen Sie mit Gerüsten auf Kollagenbasis - dem porösen polymeren Substrat - und säen Sie die mesenchymale Stammzellsuspension (MSC) darauf aus. Dies gibt den MSCs strukturellen Halt und ermöglicht es ihnen, sowohl an der Oberfläche als auch in den Hohlräumen der Gerüste zu wachsen.

Behandeln Sie die Konstrukte in einem chondrogenen Differenzierungsmedium, das transformierende Wachstumsfaktoren enthält, die die Umwandlung von MSCs in reife Chondrozyten - Knorpelzellen - vorantreiben. Reife Chondrozyten sezernieren Proteoglykane, die mit dem Kollagen im Gerüst ein Netzwerk bilden.

Nehmen Sie einen Schnitt, der aus dem mit Chondrozyten beladenen Konstrukt hergestellt wurde. Fügen Sie eine saure Lösung aus Alcianblau-Fleck hinzu, die mit Guanidiumhydrochlorid ergänzt ist, und inkubieren Sie. Während der Inkubation dissoziiert das Guanidinhydrochlorid in der Farbstofflösung alle Proteoglykanaggregate für eine bessere Färbung.

Anschließend binden die negativ geladenen sulfatierten Glykosaminoglykane aus den Proteoglykanen an die kupferhaltigen positiv geladenen Alcianblau-Farbstoffmoleküle, was zu blauen Ablagerungen führt.

Tauchen Sie den Objektträger anschließend in eine Entfärbungslösung, die Magnesiumchlorid enthält. Die Magnesium-Ionen konkurrieren mit den positiv geladenen Farbstoffmolekülen um Bindungsstellen auf den Glykosaminoglykanen und verhindern so eine Überfärbung.

Stellen Sie sich den Abschnitt vor. Die blaue Färbung bestätigt das Vorhandensein von Proteoglykanen in der Probe

Um eine chondrogene Differenzierung von einem schwammförmigen Medizinprodukt durchzuführen, das aus lyophilisiertem Kollagen Typ 1 besteht, schneiden Sie Würfel von 3 Millimetern pro Seite. MSCs in einer Konzentration von 4 x 106 Zellen/ml auf die Würfel säen.

Nachdem Sie die Zellen 30 Minuten lang bei Raumtemperatur an den Würfeln haften gelassen haben, halten Sie die MSC-Kollagen-Konstrukte in chondrogenem Medium aufrecht, wie im Textprotokoll aufgeführt. Geben Sie 0,4% Alcianblau-Lösung in die Schnitte und inkubieren Sie über Nacht bei 4 Grad Celsius.

Am nächsten Tag verwenden Sie 40% DMSO und 0,05 molare Magnesiumchlorid, um die Zellen 30 Minuten lang zu waschen, bevor Sie Nuclear Fast Red verwenden, um die Zellen gegenzufärben.

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Zuletzt aktualisiert: 15 August 2026