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Baculoviren - doppelsträngige DNA-Viren - sind von einer Hülle umgeben, die wichtige virale Glykoproteine wie GP64 enthält.
Um Baculoviren aus einem Zellkulturüberstand zu isolieren, der Zelltrümmer und kontaminierende Proteine enthält, stellen Sie eine Heparin-Affinitätschromatographiesäule zusammen, die eine Matrix aus vernetzten Agarosekügelchen enthält. Diese Kügelchen sind an Heparin gekoppelt, ein lineares Polysaccharid mit Sulfatgruppen, die der Heparinkette eine negative Ladung verleihen.
Äquilibrieren Sie die Säule mit einem Waschpuffer mit neutralem pH-Wert und optimaler Ionenstärke, um günstige Bedingungen für maximale Baculovirus- und Heparin-Wechselwirkungen während der Überstandsbeladung zu schaffen. Laden Sie den Baculovirus-haltigen Überstand auf die Säule.
Die basischen Aminosäuren im Baculovirus GP64 erleichtern unspezifische elektrostatische Wechselwirkungen mit dem negativ geladenen Heparin und binden fest an die Säule, im Gegensatz zu Verunreinigungen, die lose binden. Spülen Sie die Säule mit einem Waschpuffer und entfernen Sie ungebundene und lose gebundene kontaminierende Proteine und Ablagerungen.
Führen Sie einen Elutionspuffer mit höherer Ionenstärke als Waschpuffer durch die Säule. Die höhere Ionenstärke unterbricht die elektrostatischen Wechselwirkungen zwischen Baculoviren und Heparin, wodurch Bakuloviren aus der Säule dissoziiert und eluiert werden.
Sammeln Sie das Baculovirus-haltige Eluat im Durchfluss. Verdünnen Sie die Baculovirus-Suspension sofort mit einem Puffer, der physiologische Salzkonzentrationen enthält, um eine Inaktivierung des Virus zu verhindern. Die isolierten Baculoviren können für weitere Analysen verwendet werden.
Richten Sie das Chromatographiesystem ein, indem Sie die Waschpufferleitung von der Einlassöffnung A1 in eine Flasche mit mindestens 500 Millilitern Waschpuffer geben. Verwenden Sie den A2-Puffereinlassport zum Laden des Elutionspuffers.
Führen Sie mehrere konische 50-Milliliter-Röhrchen in den Fraktionssammler ein, um den Säulendurchgangs-Baculovirus-Überstand, den Waschpuffer und das eluierte Baculovirus zu sammeln. Äquilibrieren Sie die Heparinsäule mit fünf 7,9-Milliliter-Säulenvolumen Waschpuffer bei einer linearen Flussrate von 7 Millilitern pro Minute.
Laden Sie 250 Milliliter des Baculovirus-Überstands auf die Heparinsäule mit der Probenpumpe des Einlass-Probenanschlusses mit einer linearen Flussrate von 2 Millilitern pro Minute. Lassen Sie dann 10 Säulenvolumina Waschpuffer mit einer linearen Flussrate von 2 Millilitern pro Minute durch die Heparinsäule laufen, bis die UV-Absorptionskurve wieder auf den Ausgangswert zurückgekehrt und stabil geworden ist.
Verdünnen Sie die Baculovirus-Partikel aus der Heparinsäule mit fünf Säulenvolumina Elutionspuffer bei einer linearen Flussrate von 4 Millilitern pro Minute. Achten Sie auf einen scharfen Elutionspeak des Proteins auf dem Chromatogramm, wenn sich die Baculovirus-Partikel von der Heparinsäule dissoziieren.
Nach der Elution ist der eluierte Baculovirus-Überstand sofort 10-fach mit 20 millimolaren Natriumphosphatpuffern zu verdünnen, um eine Inaktivierung der Baculovirus-Partikel durch osmotischen Schock während der nachfolgenden Zentrifugation zu verhindern.