Butyl-abhängige hydrophobe Wechselwirkung Flüssigkeitschromatographie: Eine Technik zur Charakterisierung von Antikörper-Wirkstoff-Konjugaten auf der Grundlage hydrophober Wechselwirkungen

0 Ansichten3:46 Min. • July 8th, 2025

Antikörper-Wirkstoff-Konjugate - ADCs - werden gebildet, indem ein zielspezifischer monoklonaler Antikörper über geeignete Linker an zytotoxische Wirkstoffe gebunden wird. Der stochastische Konjugationsprozess erzeugt ADCs mit unterschiedlicher Anzahl von Wirkstoffeinheiten.

Die ADC-Spezies zeichnen sich durch ihr Wirkstoff-Antikörper-Verhältnis (DAR) aus, das ihre therapeutische Wirksamkeit bestimmt. Die Hydrophobie von ADCs macht sie zu geeigneten Kandidaten für die hydrophobe Interaktionsflüssigkeitschromatographie oder die HIC-basierte Charakterisierung.

Bauen Sie zunächst eine Chromatographiesäule zusammen, die eine stationäre Phase auf Agarosematrixbasis enthält. Die Matrix ist mit Butyleinheiten - den hydrophoben funktionellen Alkylgruppen - vernetzt. Äquilibrieren Sie die Säule mit einem Puffer mit hoher Salzbindung. Laden Sie anschließend die ADC-Lösung in die Spalte.

Salzionen im Puffer verdrängen Wassermoleküle um ADCs herum und legen deren hydrophobe Bereiche frei. Dies ermöglicht es ADCs, über hydrophobe Wechselwirkungen an die Butylliganden zu binden. ADCs mit einer höheren Anzahl gebundener Wirkstoffeinheiten zeigen eine stärkere Interaktion mit der Säule.

Ersetzen Sie langsam den Puffer mit hohem Salzgehalt durch den Elutionspuffer mit einer niedrigen Salzkonzentration. Dieser Prozess der schrittweisen Verringerung der Salzkonzentration wird als Gradientenelution bezeichnet.

Die Abnahme der Salzionen ermöglicht es Wassermolekülen wieder, ADCs zu umgeben, wodurch ihre Wechselwirkung mit Liganden gestört wird. ADCs mit der geringsten Anzahl gebundener Wirkstoffeinheiten werden zuerst eluiert, gefolgt von Spezies mit höherem DAR.

Überwachen Sie die Elution, um die ADCs entsprechend ihrer DAR zu charakterisieren.

Um das Konjugat zu analysieren, äquilibrieren Sie die HPLC-HIC-Säule 5 Minuten lang mit 100 % Puffer mit hohem Salzgehalt. Mischen Sie dann 15 Mikroliter einer 1 mg/ml-Lösung von Trastuzumab, die an MMAE gebunden ist, mit 15 Mikrolitern 2X Puffer mit hohem Salzgehalt in einer Durchstechflasche. Injizieren Sie die Mischung auf die HPLC-Säule. Eluieren Sie eine Minute lang in einem isokratischen Fluss von 1 mL/min mit 100 % Puffer mit hohem Salzgehalt.

Anschließend folgt ein 15-minütiger Gradient von 100 % auf 0 % Puffer mit hohem Salzgehalt in Puffer mit niedrigem Salzgehalt. Überwachen Sie die Elution bei 280 Nanometern. Integrieren Sie die Peaks in das Chromatogramm mit Retentionszeiten von 7,5, 9,2 und 11,5 Minuten, was Trastuzumab mit null, einem bzw. zwei konjugierten Toxinen entspricht.

Berechnen Sie nun den DAR, indem Sie die Flächen der Peaks bei 9,2 Minuten mit einer Gewichtung von 1 und 10,5 Minuten mit einer Gewichtung von 2 addieren und durch die Gesamtfläche der drei Peaks dividieren.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026