Fluoreszenzsonden-Imaging-Assay: Eine Technik zur Visualisierung von oxidativem Stress in kultivierten Darmorganoidzellen von reaktiven Sauerstoffspezies, die mit Induktoren behandelt wurden

0 Ansichten3:28 Min. • July 8th, 2025

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Darmorganoide rekapitulieren die darmähnliche Krypta-Zotten-Organisation mit einem zentralen Lumen, das aus abgestorbenen Zellen und Trümmern besteht. Das Lumen ist von zottenartigen Zellen und knospenden, kryptenartigen Ausstülpungen ausgekleidet, in denen Stammzellen untergebracht sind.

Verschiedene Organoidzellen produzieren unterschiedliche Mengen an reaktiven Sauerstoffspezies, ROS - Nebenprodukte von Stoffwechselaktivitäten, deren Akkumulation zu oxidativem Stress führt.

Um oxidativen Stress in verschiedenen Zellen sichtbar zu machen, beginnen Sie mit einer Multi-Well-Platte mit kultivierten 3D-Organoiden in einer Basalmatrix. Die organoiden Stammzellen exprimieren ein grün fluoreszierendes Protein oder ein GFP-markiertes Protein, das bei der Unterscheidung während der Bildgebung hilft.

Ergänzen Sie die Vertiefungen mit tert-Butylhydroperoxid - einem ROS-Induktor - und inkubieren Sie. Der Induktor aktiviert die membrangebundene NADPH-Oxidase und stimuliert die ROS-Produktion in den Zellen. Stammzellen, die metabolisch aktiv sind, produzieren mehr ROS als differenzierte Zellen.

Fügen Sie ROS-empfindliche fluorogene Sonden hinzu. Diese lipophilen Sonden dringen schnell in die Zellen ein und reagieren mit ROS, um rote Fluoreszenz zu erzeugen. Behandeln Sie die Organoide mit dem Hoechst-Farbstoff, der lebende Zellkerne selektiv anfärbt. Bilden Sie die Organoide mit einem konfokalen Mikroskop ab.

Organoide Zellen in der Peripherie mit gefärbten Zellkernen weisen unterschiedliche Grade der roten Fluoreszenz auf, die bei den GFP-exprimierenden Stammzellen hoch und bei den differenzierten Zellen niedrig ist. Die abgestorbenen Zellen mit inhärent hohen ROS-Werten weisen eine rote Fluoreszenz im Lumen auf.

Die Intensität der roten Fluoreszenz korreliert mit unterschiedlichen Niveaus an oxidativem Stress in verschiedenen Zelltypen.

Um oxidativen Stress durch konfokale Mikroskopie sichtbar zu machen, geben Sie 1 Mikroliter N-Acetylcystein-Stammlösung in die entsprechenden Vertiefungen der mit Organoiden beschichteten Acht-Well-Kammer des Mikroobjektträgers.

Nach einer 1-stündigen Inkubation 1 Mikroliter Tert-Butylhydroperoxid-Stammlösung in die entsprechenden Vertiefungen geben und weitere 30 Minuten inkubieren. Als nächstes fügen Sie 1 Mikroliter der 1,25 Millimolar Verdünnung der fluorogenen Sonde pro Vertiefung hinzu, gefolgt von 1 Mikroliter 1,25 Milligramm pro Milliliter Hoechst-Lösung.

Nach einer weiteren 30-minütigen Inkubation entfernen Sie das Medium, ohne das BMM zu stören, und fügen Sie vorsichtig 250 Mikroliter warmes DMEM ohne Phenolrot hinzu.

Nehmen Sie die Organoide mit einem konfokalen Mikroskop ab, das mit einer thermischen Kammer und einer Gasversorgung ausgestattet ist, die die fluorogene Sonde detektiert.

Stellen Sie mit der Positivregelung die Laserintensität und die Belichtungszeit für das ROS-Signal ein und überprüfen Sie, ob dieses Signal in der Negativsteuerung niedriger ist. Prüfen Sie anschließend mit einem Okular den Objektträger, um die Organoide zu identifizieren, die GFP exprimieren, und stellen Sie die Laserintensität ein.

Richten Sie einen Z-Stapel von 25 Mikrometern ein und definieren Sie Positionen, um ein zusammengefügtes Bild des gesamten Organoids zu erhalten, um einen Abschnitt der Organoide zu erhalten, der eine Zellschicht zeigt.

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Zuletzt aktualisiert: 1 August 2026