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Chemische Neurotransmitter, die von einem Neuron freigesetzt werden, beeinflussen benachbarte Zellen und ermöglichen den Durchgang elektrischer Impulse zwischen den Neuronen. Ein Übermaß an exzitatorischen Neurotransmittern führt zu Störungen der elektrischen Aktivität des Gehirns, die zu wiederkehrenden Anfällen führen – abnormale repetitive Erregung von Neuronen und allmählicher Neuronentod, was zu Epilepsie führt.
Um die epileptiforme Aktivität ex vivo aufzuzeichnen, beginnen Sie mit der Entnahme eines Membraneinsatzes, der organotypische Schnitte aus dem Gehirn von Rattenwelpen enthält, die aus dem Gehirn des Rudelrinden-Hippocampus stammen und die sich entwickelnde epileptische Ereignisse darstellen. Jedes Segment hat einen definierten Gyrus dentatus — DG-Region und Cornu ammonis — CA-Region, bestehend aus dicht gepackten multipolaren Pyramidenneuronen.
Kultivieren Sie die Scheiben über einen längeren Zeitraum und simulieren Sie allmähliche, durch Serumentzug induzierte Stressbedingungen, die zum neuronalen Tod führen, ähnlich wie in vivo epileptische Zustände. Platzieren Sie eine organotypische Scheibe in der Aufzeichnungskammer eines Elektrophysiologie – EEG – eingerichtet, wobei der Hippocampus den Boden der Kammer berührt.
Die Aufnahmekammer ist mit einem Medium gefüllt, das L-Glutamin enthält - einen Neurotransmitter-Vorläufer -, der die neuronale Erregung einleitet. Platzieren Sie die Empfangselektrode, die an einer Glaskapillare mit künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit befestigt ist, in einer pyramidalen Neuronen-reichen CA3-Region.
Zeichnen Sie die elektrische Aktivität auf. Erstellen Sie einen Elektrographen, der kurz iktale Ereignisse – Bereiche mit plötzlichen Spitzen – zeigt, die dem Beginn der epileptiformen Aktivität entsprechen.
Eine erhöhte Anzahl von iktalen Ereignissen, die über einen längeren Zeitraum andauern, deutet auf wiederkehrende Anfälle hin.
Bereiten Sie den elektrophysiologischen Aufbau in einem geschlossenen Kreislauf vor. Vergewissern Sie sich, dass die Durchflussmenge der Trennschichtkammer auf zwei Milliliter pro Minute eingestellt ist, und öffnen Sie das Carbox-Ventil. Überprüfen Sie den Wasserstand im System und legen Sie ein Stück Filterpapier in die Aufnahmekammer der Schnittstelle, um überschüssiges Medium abzulassen.
Legen Sie ein Stück Reinigungspapier für die Linsenreinigung unter den Rahmen, um die Scheibe mit Medium zu versorgen, und schalten Sie den Temperaturregler, die Verstärker und die Mikromanipulatoren ein.
Befüllen Sie die Glaselektrode mit einer Spritze mit frisch zubereitetem künstlichem Liquor. Setzen Sie die Glaselektrode in die Empfangselektrode ein und warten Sie, bis sich die Temperatur in der Grenzflächenkammer bei 37 Grad Celsius stabilisiert hat.
Legen Sie den Einsatz in einer Biosicherheitswerkbank in eine 60-Millimeter-Platte mit einem Tropfen Medium. Schneide mit einer scharfen Klinge eine Scheibe aus dem Einsatz ab und lege die Scheibe in die Grenzfläche mit dem Hippocampus unten rechts. Platzieren Sie dann die Empfangselektrode in der pyramidalen Zellschicht von CA3.
Starten Sie das kontinuierliche Erfassungsprotokoll und zeichnen Sie das Slice 30 Minuten lang auf.