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In lebenden Zellen wandelt das Enzym Laktatdehydrogenase unter anaeroben Bedingungen Pyruvat – ein Endprodukt der Glykolyse – in Laktat um – einen Schlüsselmetaboliten. Die Menge an Laktat, die in den Zellen produziert wird, spiegelt ihren Stoffwechselstatus wider.
Um die intrazelluläre Laktatkonzentration zu quantifizieren, beginnen Sie mit einer Testprobe aus proteinfreiem Nematodenzelllysat. Ergänzen Sie andere Vertiefungen einer Multi-Well-Platte mit einer Laktatlösung in verschiedenen bekannten Konzentrationen.
Dem Lysat fehlen alle proteinhaltigen Enzyme, einschließlich der endogenen Laktatdehydrogenase, was eine genaue Laktatquantifizierung gewährleistet.
Geben Sie einen Laktat-Assay-Puffer in jede Vertiefung, um den entsprechenden pH-Wert für eine optimale enzymatische Aktivität aufrechtzuerhalten. Ergänzen Sie die Vertiefungen mit einem Reaktionsgemisch, das das Enzym Laktatdehydrogenase, das Nicotinamid-Adenin-Dinukleotid (NAD), ein Coenzym und eine kolorimetrische Sonde enthält, und inkubieren Sie.
Während der Inkubation katalysiert die Laktatdehydrogenase die Oxidation von zellulärem Laktat zu Pyruvat bei gleichzeitiger Reduktion von NAD zu NADH. Das erzeugte NADH reagiert mit der kolorimetrischen Sonde zu einem violetten Produkt.
Messen Sie spektroskopisch die Extinktion der violetten Lösung für die Testprobe und die Laktatstandards bei 570 Nanometern. Tragen Sie die Absorptionswerte der Laktatstandards auf und erstellen Sie die Kalibrierkurve.
Vergleichen Sie abschließend den Absorptionswert der Probe mit den Laktatstandards, um die in der Testprobe vorhandene Laktatmenge zu bestimmen.
Um die Laktatkonzentration zu messen, verwenden Sie ein kolorimetrisches Assay-Kit, um eine Duplikatanalyse für die Testproben durchzuführen. Geben Sie 10 Mikroliter der Testproben in jede Vertiefung einer 96-Well-Platte und fügen Sie dann jeder Probe Laktat-Assay-Puffer hinzu, um das Volumen auf 50 Mikroliter einzustellen.
Verdünnen Sie 100 Millimolare L(+)-Laktat-Standards mit einem Laktat-Assay-Puffer auf 1 Millimolar. Geben Sie dann 0, 2, 4, 6, 8 und 10 Mikroliter verdünnten L(+)-Lactatstandard in eine Reihe von Vertiefungen. Geben Sie 50 Mikroliter Reaktionsmischung in jede Vertiefung und inkubieren Sie sie mindestens 30 Minuten lang bei Raumtemperatur lichtgeschützt, damit sich die Farbe entwickeln kann.
Verwenden Sie schließlich ein Mikroplatten-Reader, um die Absorption jeder Vertiefung bei 570 Nanometern zu messen. Subtrahieren Sie die Absorption des Hintergrundkontrollgemisches von der Absorption des Reaktionsgemisches. Zeichnen Sie dann die Laktat-Standardkurve und berechnen Sie die Laktatkonzentrationen aus der Kurve, indem Sie jede Konzentration mit 2,25 multiplizieren.