Chemilumineszenz-Western-Blot-Assay für die Proteinverarbeitung

0 Ansichten3:35 Min. • July 8th, 2025

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CD95 – ein Todesrezeptor – bindet an seine agonistischen Antikörper und löst den Aufbau eines todbringenden Signalkomplexes (DISC) aus – einem Multiproteinkomplex, der Procasase 8 rekrutiert. An der DISC dimerisiert die Procaspase 8 und verarbeitet sich zu verschiedenen Zwischenspaltprodukten und schließlich zu einer aktiven Form, die die Apoptose einleitet.

Zur Analyse der Caspase-Acht-Verarbeitung mittels chemilumineszierendem Western Blot wird ein Lysat in einem Röhrchen entnommen, das DISC-assoziierte Zwischenspaltungsprodukte von Caspase 8 enthält. Ergänzen Sie dies mit Protein-A-Agarose-Beads-eingefangenen Anti-CD95-Antikörpern. Die Anti-CD95-Antikörper binden an die DISC-Komponente CD95 und bilden Proteinkomplexe.

Laden Sie die Probe auf ein SDS-Polyacrylamid-Gel, um die unterschiedlich großen immunpräzipitierten Caspase-8-Zwischenprodukte als unterschiedliche Banden zu trennen. Legen Sie das Gel auf eine Löschfolie und legen Sie elektrischen Strom an. Die Caspase-8-Zwischenprodukte bewegen sich aus dem Gel auf die Blotting-Membran.

Behandeln Sie die Membran mit einer blockierenden proteinhaltigen Lösung, um die Proteinbindungsstellen zu sättigen und so unspezifische Bindungen zu verhindern.

Fügen Sie eine Lösung von Primärantikörpern hinzu, die an den Caspase-Acht-Produkten an einer bestimmten Stelle binden.

Fügen Sie enzymmarkierte Sekundärantikörper hinzu, die spezifisch an die komplementäre Fc-Region des Primärantikörpers binden, um einen Caspase-Acht-Spaltprodukt-Primärantikörper-Sekundärantikörper-Komplex zu bilden.

Fügen Sie ein chemilumineszierendes Substrat hinzu, das mit dem sekundären Antikörper-konjugierten Enzym reagiert und Licht emittiert. Die Intensität des emittierten Lichts korreliert mit der Menge des Caspase-Acht-Spaltprodukts.

Um den Western Blot durchzuführen, fügen Sie den Kügelchen 20 Mikroliter 4X Ladepuffer hinzu und erhitzen Sie sie 10 Minuten lang bei 95 Grad Celsius. Gleichzeitig erhitzen Sie die Lysatregler 5 Minuten lang auf 95 Grad Celsius. Laden Sie die Lysate, Immunfäzipitantien und einen Proteinstandard auf ein 12,5%iges SDS-Gel und betreiben Sie es mit einer konstanten Spannung von 80 Volt.

Nachdem der Gellauf abgeschlossen ist, übertragen Sie die Proteine aus dem SDS-Gel auf eine Nitrozellulosemembran. Nachdem der Transfer abgeschlossen ist, legen Sie die getupfte Membran in eine Schachtel und inkubieren Sie sie eine Stunde lang in Blocklösung unter leichtem Rühren. Waschen Sie die Membran dann dreimal für 5 Minuten mit PBST.

Zum Nachweis der Proteine wird der erste Primärantikörper in der angegebenen Verdünnung auf die Membran gegeben und über Nacht bei 4 Grad Celsius unter leichtem Rühren inkubiert. Waschen Sie die Membran am nächsten Tag mit drei 5-minütigen PBST-Waschgängen und inkubieren Sie die Membran dann mit 20 Millilitern Sekundärantikörper unter leichtem Schütteln für 1 Stunde bei Raumtemperatur.

Waschen Sie die Membran erneut dreimal mit PBST. Nachdem Sie die letzte PBST-Wäsche verworfen haben, fügen Sie der Membran etwa 1 Milliliter Meerrettichperoxid-Substrat hinzu und detektieren Sie das Chemolumineszenzsignal.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026