FLIM-FRET-Bildgebung zur Charakterisierung von Protein-Protein-Wechselwirkungen in lebenden Bakterien

0 Ansichten4:26 Min. • July 8th, 2025

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Um spezifische Protein-Protein-Wechselwirkungen in lebenden Bakterien mit Hilfe der Fluoreszenz-Lebensdauer-Bildgebungsmikroskopie (FLIM) zu untersuchen, wird in Kombination mit dem Förster-Resonanzenergietransfer (FRET) zunächst eine rekombinante Bakteriensuspension verwendet. Die Bakterien exprimieren spezifische zytoplasmatische Proteine, die an Stoffwechselwegen beteiligt sind und mit fluoreszierenden Donor- und Akzeptorproteinen markiert sind, die für FRET geeignet sind.

Spotten Sie die Bakteriensuspension auf einem Agarose-Pad, das die Bakterien auf einem Objektträger immobilisiert. Legen Sie ein Deckglas auf den Objektträger und verschließen Sie es.

Positionieren Sie den Objektträger auf dem Tisch eines inversen Rastermikroskops mit Zwei-Photonen-Anregung für die FLIM-FRET-Mikroskopie. Verwenden Sie eine Fluoreszenzlampe, um einen Bereich von Interesse auf der bakteriellen Monoschicht auszuwählen und zu scannen.

Die Wechselwirkung zwischen den exprimierten zytoplasmatischen Proteinen bringt die fluoreszierenden Donor- und Akzeptorproteine in geeigneter Orientierung näher zusammen. Bei der Laserbeleuchtung mit einer geeigneten Wellenlänge wird das fluoreszierende Donorprotein angeregt.

Die unmittelbare Nähe fluoreszierender Proteine löst FRET aus, was zu einem nicht-strahlenden Energietransfer von Donor- zu Akzeptor-Fluoreszenzproteinen führt, der angeregt wird und schließlich in den Grundzustand zurückkehrt und Fluoreszenz emittiert.

Der nicht-strahlende Energietransfer reduziert die Zeit, die das angeregte fluoreszierende Donorprotein benötigt, um in seinen Grundzustand zurückzukehren, die Fluoreszenzlebensdauer des Donors – gemessen mit FLIM. Die Abnahme der mittleren Fluoreszenzlebensdauer des fluoreszierenden Donatorproteins aufgrund von FRET bestätigt die Protein-Protein-Interaktion in den Bakterien.

Legen Sie einen Objektträger aus Mikroskopglas auf eine ebene horizontale Fläche und ordnen Sie zwei Objektträger an, die mit zwei Schichten Klebeband bedeckt sind. Pipettieren Sie einen 70-Mikroliter-Tropfen mit 1 % geschmolzener Agarose auf den Objektträger und legen Sie einen vierten Objektträger darauf, um den Agarose-Tropfen flach zu drücken. Etwa eine Minute lang leicht nach unten drücken.

Nehmen Sie den oberen Objektträger ab und lassen Sie etwa drei Mikroliter Bakterien an drei bis vier Stellen an verschiedenen Stellen auf dem Agarose-Pad fallen. Decken Sie das Agarose-Pad mit einem Mikroskopieglas-Deckglas ab und befestigen Sie es mit geschmolzenem Paraffin, um es auf dem Objektträger zu versiegeln, beginnend mit den vier Ecken.

Legen Sie den Objektträger auf den Tisch, wobei das Deckglas zum Objektiv zeigt. Drehen Sie den Revolver des Filterwürfels, um den eGFP-Würfel auszuwählen, und öffnen Sie den Verschluss der Leuchtstofflampe. Senden Sie dann das Fluoreszenzlicht in Richtung des Okulars des Mikroskops. Fokussieren Sie das Objektiv mit dem Mikroskopknopf auf die Bakterien.

Wählen Sie mit dem Joystick, der den motorisierten Tisch steuert, einen Bereich von Interesse in der Probe aus. Senden Sie den Fluoreszenzemissionspfad zurück zum Detektor, drehen Sie dann den Filterwürfelrevolver zurück, um den dichroitischen Würfel für den 930-Nanometer-Laser auszuwählen, und stellen Sie die Laserleistung auf 20 Milliwatt ein. Stellen Sie die Größe des interessierenden Bereichs auf 30 Mikrometer ein, wodurch die Spannung für die Galvospiegel angepasst und der Bereich ihrer Bewegungen definiert wird.

Schalten Sie den Detektor ein und beginnen Sie mit dem Scannen der Probe. Wählen Sie das Sichtfeld für die Bildgebung, indem Sie den Tisch schließlich von der Computerschnittstelle aus bewegen. Dies kann am Setup erfolgen, indem Sie das Kreuz auf dem Bild in der Mikroskopsteuerungssoftware verschieben, die die neue Bildmitte definiert, und auf "Tisch verschieben" drücken.

Ein gutes Sichtfeld für die Aufnahme sollte 10 bis 30 unbewegliche Bakterien enthalten, die alle scharf sind. Wenn Sie daran interessiert sind, die FLIM-FRET-Daten einzelner Zellen zu extrahieren, stellen Sie sicher, dass die Bakterien gut individualisiert sind.

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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026