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Mastzellen – weiße Blutkörperchen, die zytoplasmatische Granula enthalten, die mit Entzündungsmediatoren gefüllt sind – spielen eine wichtige Rolle bei der angeborenen und adaptiven Immunantwort.
Um Bindegewebs-Mastzellen aus der Bauchhöhle zu isolieren - einem mit Flüssigkeit gefüllten Raum, in dem Bauchorgane untergebracht sind - nehmen Sie eine euthanasierte Maus, die in Rückenlage fixiert ist. Machen Sie einen Längsschnitt bis zum Brustbein, wodurch die Bauchdecke freigelegt wird.
Die Bauchhöhle liegt unter der Bauchdecke und enthält Flüssigkeit, die mehrere Immunzellen beherbergt, darunter Makrophagen, Lymphozyten, polymorphkernige Leukozyten und Mastzellen.
Um die Zellen durch Peritonealspülung zu isolieren – das Ansaugen des intraperitonealen Inhalts – injizieren Sie ein eiskaltes Wachstumsmedium in die Bauchhöhle, ohne die Organe zu perforieren, um Blutleckagen zu vermeiden. Das kalte Medium trägt zur Aufrechterhaltung der Zelllebensfähigkeit bei.
Schütteln Sie die Maus vorsichtig für eine angemessene Dauer und mischen Sie die Immunzellen mit dem Medium. Führen Sie eine leere Spritze in den Hohlraum ein. Saugen Sie das Medium langsam ab und gewinnen Sie den größten Teil der injizierten Flüssigkeit zurück, um eine bessere Zellausbeute zu erzielen.
Übertragen Sie die Zellsuspension in ein Sammelröhrchen. Zentrifugieren Sie, um die Zellen als Pellet auszufällen. Entsorgen Sie den Überstand. Suspendieren Sie das Pellet in einem geeigneten Medium.
Plattieren Sie die Zellen und inkubieren Sie sie unter physiologischen Bedingungen, so dass die Zellen am Kulturgefäß haften können. Fügen Sie spezifische Zytokine hinzu, die an ihre Rezeptoren auf den Mastzellen binden und so die Zellproliferation induzieren.
Die proliferierten Zellen sind bereit für nachgelagerte Assays.
Um dieses Verfahren zu starten, besprühen Sie die euthanasierte Maus mit 70%igem Ethanol und befestigen Sie sie mit Stecknadeln mit der Rückenseite nach unten auf einem Schaumstoffblock. Entfernen Sie mit einer stumpfen Schere die Haut über dem Bauch der Maus und vermeiden Sie eine Beschädigung der Bauchhöhle.
Injizieren Sie anschließend 7 Milliliter eiskaltes RPMI-Medium in die Bauchhöhle, indem Sie eine 27-Gauge-Nadel vorsichtig in das Bauchfell einführen. Perforieren Sie keine Organe und verwenden Sie einen Fleck im Bereich des Nebenhodenfetts, um das Risiko einer Organperforation zu verringern.
Schütteln Sie die Maus nach der Injektion 1 Minute lang, um die Peritonealzellen in das RPMI-Medium zu lösen. Schütteln Sie die Maus nicht zu stark, um eine Schädigung der inneren Organe und eine Verunreinigung der Bauchhöhle mit Blut zu vermeiden. Verwenden Sie die Spritze dann wieder, indem Sie sie mit einer neuen 20-Gauge-Kanüle ausstatten.
Verschieben Sie die inneren Organe auf eine Seite, indem Sie den Schaumstoffblock kippen und vorsichtig auf die Bank klopfen, um die Absaugung des Mediums von der anderen Seite aus zu erleichtern. Führen Sie anschließend eine 20-Gauge-Nadel ein, die nach oben abgeschrägt ist, um die Flüssigkeit sanft und langsam aus dem Bauch abzusaugen, um eine Verstopfung der inneren Organe zu vermeiden.
Sammeln Sie so viel Flüssigkeit wie möglich. Entfernen Sie dann die Nadel von der Spritze und überführen Sie die gesammelte Zellsuspension in einem Sammelröhrchen auf Eis. Entsorgen Sie ein Probenröhrchen, wenn eine sichtbare Blutkontamination vorliegt.
Das Röhrchen mit sauberer Zellsuspension bei 300 x g 5 Minuten zentrifugieren. Unter einer sterilen Haube den Überstand ansaugen. Die Probenpellets werden in kaltem PMC-Medium resuspendiert und die Zellsuspension in einen 25 Quadratzentimeter großen Zellkulturkolben überführt.
Anschließend fügen Sie die Wachstumsfaktoren IL3 und SCF zu den Endkonzentrationen von 10 Nanogramm pro Milliliter bzw. 30 Nanogramm pro Milliliter hinzu. Inkubieren Sie die Zellen etwa 48 Stunden lang bei 37 Grad Celsius bis zum nächsten Eingriff.