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Nimm eine Kultur von Staphylococcus aureus, einem pathogenen Bakterium, das Leukocidin absondert - ein porenbildendes Toxin - bestehend aus monomeren S- und F-Komponenten.
Pelletieren Sie die Zellen und verdünnen Sie den Überstand seriell. Übertragen Sie den Leukocidin-haltigen Überstand in eine Mikrotiterplatte mit polymorphkernigen Leukozyten (PMNs) und inkubieren Sie.
Die S-Komponente bindet an spezifische Transmembranrezeptoren auf PMNs, gefolgt von einer Hetero-Oligomerisierung, bei der die F-Komponente in die Zellmembran eingefügt wird, was zu einer Porenbildung führt.
Die Pore bewirkt eine Abnahme der intrazellulären Kaliumionen und aktiviert das Pyrindomänen-enthaltende 3- oder NLRP3-Protein der NLR-Familie.
NLRP3 bindet an Apoptose-assoziiertes speckartiges Protein, das eine Caspase-Rekrutierungsdomäne (ASC) enthält, die Pro-Caspase-1 rekrutiert und ein Inflammasom bildet.
Die Autoproteolyse wandelt Pro-Caspase-1 in aktive Caspase-1 um und löst so den Zelltod aus.
Ernte die Zellen in definierten Intervallen. Fügen Sie Propidiumiodid oder PI hinzu, das durch beschädigte Membranen in tote Zellen eindringt, um DNA zu binden und Fluoreszenz zu emittieren.
Mit Hilfe der Durchflusszytometrie PI-gefärbte Zellen quantifizieren, um die zytotoxische Wirkung sowohl der Leukocidinkonzentration als auch der Inkubationszeit zu beurteilen.
Kultivieren Sie S. aureus über Nacht in geeigneten Medien mit einem am Tag vor dem Experiment auf 37 Grad Celsius eingestellten Schüttelbrutschrank. Subkultur S. aureus durch eine Verdünnung von 1 bis 100 von Bakterienkulturen über Nacht mit frischen Medien. Inkubieren Sie bei 37 Grad Celsius unter Schütteln, bis die Bakterien die frühe stationäre Wachstumsphase erreichen. Nach fünfstündigem Wachstum wird 1 Milliliter der Subkultur S. aureus in ein 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen überführt und 5 Minuten lang bei Raumtemperatur bei 5000 g zentrifugiert.
Nach der Zentrifugation die Überstände aspirieren. Die aspirierten Überstände werden durch einen 0,22-Mikron-Spritzenvorsatzfilter in ein neues 1,5-Milliliter-Mikrozentrifugenröhrchen geleitet und auf Eis gelegt. Führen Sie serielle Verdünnungen des Überstands mit eiskalten Medien durch, die zur Kultivierung von Staphylokokken aureus verwendet werden. Überstandsproben oder Medien allein für Negativ- und Positivkontrollen vorsichtig in einzelne Vertiefungen der 96-Well-Platte mit PMNs und Eis geben, wie zuvor beschrieben.
Schütteln Sie die Platte sanft, um Überstände und Vertiefungen zu verteilen, und inkubieren Sie bei 37 Grad Celsius. Nehmen Sie die Platte zu den gewünschten Zeiten aus dem Inkubator und legen Sie sie auf Eis. Geben Sie 300 Mikroliter eiskaltes DPBS mit 1 Mikroliter Propidiumiodid in jedes Durchflusszytometrie-Röhrchen. Übertragen Sie die Proben in Durchflusszytometrie-Röhrchen auf Eis. Für die Positivkontrollvertiefung geben Sie 20 Mikroliter 10 % Triton X in die Probe, bevor Sie sie in ein Durchflusszytometrieröhrchen überführen. Analysieren Sie die Propidiumiodid-Färbung von berauschten PMNs mittels Durchflusszytometrie.