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Beginnen Sie mit gentechnisch veränderten humanen iPSCs, die ein Myoblasten-Differenzierungs- oder MYOD-Protein-kodierendes, Doxycyclin-induzierbares Gen in einem Stammzellmedium enthalten, das Rho-Kinase-Inhibitoren enthält.
Übertragen Sie die Zellen auf EZM-beschichtete Platten und inkubieren Sie, um die Zelladhäsion zu fördern.
In der Zwischenzeit inaktiviert der Inhibitor intrazelluläre Rho-Kinase-Enzyme und verbessert so die Lebensfähigkeit der Zellen.
Ersetzen Sie das Medium durch ein Stammzellmedium, das Doxycyclin enthält.
Doxycyclin dringt in die Zellen ein und bindet an Aktivatorproteine. Diese Komplexe binden an den Promotor, induzieren die Genexpression in einigen Zellen und produzieren MYOD-Proteine, die die Differenzierung von Stammzellen in Muskelzellen auslösen.
Behandeln Sie die Zellen mit einem myogenen Differenzierungsmedium, das myogene Differenzierungsfaktoren enthält, um die Bildung von Myotuben, einer mehrkernigen Muskelzelle, zu fördern.
Führen Sie später ein neuronales Induktionsmedium mit neuronalen Wachstumsfaktoren ein.
Diese Faktoren differenzieren die verbleibenden iPSCs in Motoneuronen und Schwann-Zellen, die eine Myelinscheide um die Neuronen bilden.
Ersetzen Sie schließlich das Medium durch ein neuromuskuläres Verbindungsmedium, um die Verbindungen zwischen dem Motoneuron und dem Myotubus zu fördern und neuromuskuläre Verbindungen zu bilden.
Waschen Sie die Zellen mit 3 Millilitern PBS, bevor Sie 1 Milliliter Zellablösungslösung in eine Petrischale geben. Nach 10 Minuten bei 37 Grad Celsius geben Sie 3 Milliliter embryonales Stammzellmedium von Primaten in jede Vertiefung und pipettieren dreimal vorsichtig, um die Zellen von den Deckgläsern zu trennen.
Als nächstes wird die abgelöste Stammzelle, die Überstände enthält, zur Zentrifugation in ein konisches 50-Milliliter-Röhrchen gepoolt und das Stammzellpellet in 3 Millilitern frischem embryonalem Primatenstammzellmedium resuspendiert, das mit 10 mikromolaren Y27632 ROCK-Inhibitor zur Zählung ergänzt wird.
Dann verdünnen Sie die Zellen auf 2 x 105 Zellen pro Milliliter Medium, ergänzt mit der ROCK-Inhibitor-Konzentration, und geben Sie 2 Milliliter Zellen in jedes Deckglas in jeder Vertiefung der mit extrazellulärer Matrix beschichteten 6-Well-Platte zurück.
Nach 24 Stunden wird der Überstand in jeder Vertiefung durch 2 Milliliter frisches embryonales Primatenstammzellmedium ersetzt, das mit 1 Mikrogramm Doxycyclin pro Milliliter ergänzt wird, und die Platte für 24 Stunden wieder in den Zellkultur-Inkubator gestellt.
Ersetzen Sie am Ende der Inkubation die Überstände durch 2 Milliliter Differenzierungsmedium, das mit Doxycyclin pro Vertiefung ergänzt ist, und stellen Sie die Platte für 10 Tage wieder in den Zellkultur-Inkubator.
Am Ende der Inkubation werden die Überstände durch 2 Milliliter myogenes Differenzierungsmedium ersetzt, das mit Doxycyclin pro Vertiefung ergänzt ist, und die Platte für weitere 10 Tage in den Zellkultur-Inkubator zurückgestellt. Ersetzen Sie am Ende der Inkubation die Überstände durch 2 Milliliter neuromuskuläres Übergangsmedium pro Vertiefung und stellen Sie die Platte für 30 Tage wieder in den Zellkultur-Inkubator.