JoVE Encyclopedia of Experiments
Neurowissenschaften
0 Ansichten • 3:10 Min. • July 8th, 2025
Nehmen Sie eine immobilisierte Maushirnschnitte, die mit einem spannungsempfindlichen Farbstoff oder VSD gefärbt ist, fluoreszierenden Molekülen, die sich in die neuronale Membran integrieren und auf Änderungen des Membranpotentials reagieren.
Platzieren Sie das Slice in einer Aufnahmekammer.
Installieren Sie die Erdungselektrode für eine Referenz der Basisspannung.
Positionieren Sie anschließend die Stimulations- und Aufzeichnungselektroden auf der Scheibe.
Legen Sie einen elektrischen Impuls an.
Der Puls stimuliert die Neuronen und löst die spannungsgesteuerte Öffnung des Natriumkanals und den Einstrom von Natriumionen aus, was zu einer Änderung des Membranpotentials führt.
Dadurch wird ein Aktionspotential induziert, das von der Aufzeichnungselektrode gemessen wird, und die fluoreszierenden Eigenschaften des VSD verändert.
Setzen Sie die Gehirnscheibe einer bestimmten Wellenlänge aus, um den VSD anzuregen und die Fluoreszenzemission auszulösen.
Nach der Stimulation schließen sich die Natriumkanäle, während sich die spannungsgesteuerten Kaliumkanäle öffnen, was den Ausfluss von Kaliumionen fördert.
Dadurch verändert sich das Membranpotential wieder und damit die Fluoreszenz des VSD.
Zeichnen Sie die Fluoreszenz in Echtzeit auf, um die neuronale Aktivität visuell darzustellen.
Um diesen Vorgang zu starten, schalten Sie den Verstärker, den Computer und das Kamerasystem ein und öffnen Sie die Software. Gießen Sie aCSF in eine 50-Milliliter-Tube und besprühen Sie es mit Carbogen. Verwenden Sie eine Schlauchpumpe, um den aCSF zu zirkulieren, und stellen Sie die Durchflussrate auf etwa einen Milliliter pro Minute ein.
Stellen Sie dann die Höhe der Saugpipette so ein, dass der Flüssigkeitsstand in der Experimentierkammer immer konstant ist. Platzieren Sie die Masseelektrode in der Kammer. Füllen Sie anschließend die Glaselektrode mit einer kleinen Menge aCSF und legen Sie sie in den Elektrodenhalter. Befestigen Sie den Halter an der Stange des Manipulators.
Stellen Sie mit einem Verstärker sicher, dass der Elektrodenwiderstand ca. 1 Megaohm beträgt. Übertragen Sie in der Aufnahmesession eine Scheibe aus der Feuchtkammer in eine Experimentierkammer. Drücken Sie den Rand des Rings fest in den O-Ring aus Silikon. Achten Sie darauf, die Membran oder den Boden der Experimentierkammer nicht zu zerbrechen.
Legen Sie unter dem Mikroskop die Spitze der Stimulationselektrode und die Feldpotentialaufzeichnungselektrode auf die Scheibe. Überprüfen Sie die evozierte Reaktion, indem Sie einen Reiz abgeben. Vergewissern Sie sich, dass das Sichtfeld den rechten neuronalen Schaltkreis im optischen Aufzeichnungssystem abdeckt.
Stellen Sie als Nächstes die Intensität des Anregungslichts auf ca. 70 % bis 80 % der maximalen Kapazität der Kamera ein. Stellen Sie mit der Leuchtstoffröhre den Fokus mit dem Erfassungssystem ein. Starten Sie dann die Aufzeichnung und analysieren Sie die Daten nach der Aufnahme in einer Bilderfassungssoftware.
In diesem Artikel wird eine Methode zur Aufzeichnung neuronaler Aktivität unter Verwendung spannungsempfindlicher Farbstoffe (VSD) in immobilisierten Mäusehirnschnitten beschrieben. Das Verfahren beinhaltet die Stimulation von Neuronen und die Messung von Änderungen im Membranpotential mittels Fluoreszenzemission.
Die optische Aufzeichnung neuronaler Aktivität mittels spannungs-sensitiver Farbstoffe ermöglicht die Echtzeitvisualisierung der Dynamik des Membranpotenzials im Gehirngewebe und unterstützt die mechanistische Risikominderung bei der frühen Validierung neurowissenschaftlicher Zielstrukturen. Dieser Ansatz liefert quantitative, fluoreszenzbasierte Messsignale, die das Vorhersagevertrauen bezüglich der Modulation neuronaler Signalwege und der pharmakologischen Wirkung auf Schaltungsebene erhöhen. Er fungiert als translationsbrückende Methode zwischen Elektrophysiologie und Bildgebung zur Risikominderung des Target-Engagements in der ZNS-Wirkstoffforschung.
Diese Methode ist in den Entdeckungsprozess integriert, von der Hypothesenprüfung in der frühen Entdeckungsphase bis hin zur Identifizierung von Leitverbindungen mittels funktioneller neuronaler Messungen, und unterstützt präklinische Arbeiten durch eine konsistente Aktivitätsbestimmung.
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Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026