Überwachung der anfallsinduzierten neuronalen elektrischen Aktivität in Hirnschnitten mit Mikroelektrodenarrays

0 Ansichten5:15 Min. • July 8th, 2025

Beginnen Sie damit, ein Gehirnschnitt auf ein Mikroelektrodenarray oder eine MEA-Aufnahmekammer zu legen, die mit künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit oder aCSF gefüllt ist, die das Testmedikament enthält.

Passen Sie die Position der Scheibe an und sichern Sie sie mit einem Anker.

Starten Sie den kontinuierlichen Fluss des aCSF, der ein anfallsauslösendes Testmedikament enthält.

Nehmen Sie ein Bild des Slices auf.

Wählen Sie die geeigneten Mikroelektroden aus, die mit dem Hirnschnitt in Kontakt kommen.

Aktivieren Sie die Stimuluseinheit und verbinden Sie die Drähte mit der MEA-Einheit.

Notieren Sie die Basissignale.

Führen Sie einen Testlauf durch, um die optimale Reizintensität zu bestimmen.

Beginnen Sie nun mit der Abgabe von elektrischen Impulsen.

Diese Impulse stimulieren die ausgewählte Gehirnregion und lösen einen künstlichen Anfall aus.

Zeichnen Sie die resultierende elektrische Aktivität auf, um die durch Anfälle hervorgerufenen Reaktionen zu erfassen.

Sobald der 4-AP aCSF-Pegel und die Aufnahmetemperatur wie gewünscht stabilisiert sind, drehen Sie die Perfusion und die Saughähne in die Aus-Position, um sie vorübergehend zu stoppen. Übertragen Sie schnell ein Hirnschnitt mit einer Pasteur-Pipette aus umgekehrtem Glas in die MEA-Aufnahmekammer.

Passen Sie die Position auf dem MEA-Aufnahmebereich nach Bedarf mit einer feuerpolierten, gekräuselten Pasteur-Pipette oder einer weichen, kompakten kleinen Bürste an. Platzieren Sie den Niederhalteanker auf der Hirnscheibe. Starten Sie die Perfusion und die Absaugung, indem Sie die Absperrhähne wieder in die Ein-Position drehen.

Machen Sie ein Foto des Gehirnschnitts mit einer Kamera, die auf einem inversen Mikroskoptisch montiert ist. Führen Sie dann das Skript mapMEA auf der Computersoftware aus, um die GUI zum Zuordnen der Elektroden zu starten. Klicken Sie auf die Schaltfläche Durchsuchen, um das Bild des Gehirnschnitts zu laden. Stellen Sie sicher, dass die Referenzelektrode in der oberen Spalte der linken Hälfte der MEA angezeigt wird. Klicken Sie dann auf die Schaltfläche Zeiger aktivieren.

Wählen Sie die obere und untere Elektrode in der Spalte ganz links des Arrays aus, um die x- und y-Koordinaten für die Bildbegradigung und Elektrodenzuordnung zu markieren. Wählen Sie im Dropdown-Menü "Slice-Typ" die Option "Horizontal" aus. Aktivieren Sie das Kontrollkästchen für Standardstrukturen.

Wählen Sie mit den nummerierten Drucktasten unterhalb des Gehirnschnittbildes die Elektroden aus, die dem ROI entsprechen, und klicken Sie auf die entsprechenden Drucktasten im Strukturbereich, um sie zuzuweisen. Wiederholen Sie diesen Schritt für jeden ROI. Drücken Sie anschließend die Schaltfläche Speichern. Die Software generiert einen Ergebnisordner mit einer Tabelle, in der die ausgewählten Elektroden und ROIs aufgeführt sind.

Schalten Sie für elektrophysiologische Untersuchungen die Stimuluseinheit mindestens 10 Minuten vor dem Stimulationsprotokoll ein, um eine Selbstkalibrierung und Stabilisierung zu ermöglichen. Starten Sie dann die Stimulussteuerungssoftware und überprüfen Sie, ob der Stimulator und der MEA-Verstärker korrekt angeschlossen sind, was durch eine grüne LED auf dem Hauptfeld der Stimulussteuerungssoftware angezeigt wird.

Richten Sie die Stimulation in bipolarer Konfiguration ein. Verbinden Sie die Stimuluseinheit mit dem Boden. Verbinden Sie dann die Elektrodenpaare, die mit der pyramidalen Zellschicht des proximalen Subiculums von CA1 in Kontakt kommen, unter denen, die mit dem Skript mapMEA abgebildet wurden. Um Daten zu erfassen, drücken Sie die Play-Taste im Hauptfenster der Aufnahmesoftware. Mindestens vier iktale Entladungen sind zu protokollieren.

Führen Sie als Nächstes einen schnellen Eingabe-/Ausgabetest durch, um die beste Reizintensität zu ermitteln. Verwenden Sie dazu das Hauptpanel, um einen quadratischen biphasischen positiv-negativen Stromimpuls mit einer Dauer von 100 Mikrosekunden pro Phase zu entwerfen.

Geben Sie auf der Registerkarte Pulsamplitude eine anfängliche Pulsamplitude von 100 Mikroampere pro Phase ein. Stellen Sie den Stimulationsimpuls auf 0,2 Hertz oder niedriger ein, indem Sie ein Interpulsintervall von 5 Sekunden oder länger hinzufügen. Erhöhen Sie die Stimulusamplitude bei jedem Versuch um 50 bis 100 Mikroampere-Schritte, bis die Stimulation zuverlässig interiktale Ereignisse in den parahippocampalen Kortexen hervorrufen kann.

Für die elektrische Modulation der limbischen Ektogenese programmieren Sie die Stimuluseinheit so, dass sie das gewünschte Stimulationsprotokoll liefert, und verwenden Sie die während des Eingangs-/Ausgangstests identifizierte Stimulusamplitude.

Nachdem die Stimulation gestoppt ist, überprüfen Sie die Wiederherstellung des Netzwerks in den Zustand vor dem Stimulus, indem Sie mindestens vier iktale Entladungen aufzeichnen.

10:45

Zeitabhängige Erhöhung der Netzwerkreaktion auf die Stimulation von neuronalen Zellkulturen auf Mikroelektroden-Arrays

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

09:51

Aufnahme synaptische Plastizität in akuten Hippocampal Scheiben gepflegt in einem kleinvolumigen Recycling - Perfusions- und untertauchen-Typ-Kammer-System

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

08:53

Human iPSC-Derived Cardiomyozyte Networks auf Multiwell Micro-Elektroden-Arrays für recurrent Action Potential Recordings

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

03:46

Mikroelektrodenarray-basierte Bewertung neuronaler Netzwerke in Rückenmarksschnitten von Mäusen

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

04:18

Überwachung der Hirnrinde mit einem Multi-Elektroden-Array als Reaktion auf anfallsauslösende Wirkstoffe

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

13:14

Multi-Elektroden-Array Recordings of Human Epileptische Postoperative Rindengewebe

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

09:39

Gleichstrom-Stimulation und Multi-Elektroden-Array-Aufnahme von Seizure-ähnliche Aktivität in Mäuse-Gehirn Scheibe Vorbereitung

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

10:24

Aufnahme und Modulation der Epileptiformen Aktivität in Nagetier Gehirnscheiben gekoppelt mit Mikroelektrode Arrays

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

06:28

Hochwertige anfallsähnliche Aktivität aus akuten Hirnschnitten unter Verwendung eines komplementären Metalloxid-Halbleiter-Mikroelektrodenarray-Systems mit hoher Dichte

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

06:30

Eine Multi-Elektroden-Array-Plattform zur Modellierung von Epilepsie unter Verwendung von humanen pluripotenten Stammzellen abgeleiteten Gehirnassembloiden

Ähnliche Videos

0 Aufrufe

Zuletzt aktualisiert: 22 August 2026