JoVE-Enzyklopädie der Experimente
Neurowissenschaften
0 Aufrufe • 2:09 Min. • July 8th, 2025
Beginnen Sie mit frisch geschlossenen Drosophila melanogaster-Fliegen in einem Auffangfläschchen mit Nährstoffen.
Legen Sie diese Fläschchen in ein transparentes Acrylgestell.
Positionieren Sie das Gestell in einem Inkubator, der mit einer internen Lichtquelle ausgestattet ist, in einem präzisen Abstand, um eine gleichmäßige und gewünschte Lichteinstrahlung zu gewährleisten.
Ziehen Sie die Fliegen über einen längeren Zeitraum unter diesen Lichtverhältnissen auf.
In den Augen von Drosophila fungieren die Photorezeptorzellen als sensorische Neuronen, die das Licht erkennen und in elektrische Signale umwandeln.
Diese Signale wandern entlang des Axons und erreichen die synaptischen Terminals, wo sie sich mit anderen Neuronen verbinden.
Diese Terminals besitzen die Bruchpilot-Proteine, die die Fusion von Neurotransmitter-tragenden Vesikeln mit der Zellmembran erleichtern und so die Freisetzung von Neurotransmittern ermöglichen.
Die freigesetzten Neurotransmitter binden an die Rezeptoren auf den postsynaptischen Neuronen, um das elektrische Signal zu übertragen, was zu synaptischer Aktivität führt.
Bei kontinuierlicher Lichteinwirkung sinkt der Bruchpilot-Proteinspiegel, wodurch die Freisetzung von Neurotransmittern reduziert wird und die Plastizität bzw. Modulation der synaptischen Aktivität erreicht wird.
Sammeln Sie für dieses Experiment die Fliegen innerhalb von sechs Stunden nach dem Verschluss in normalen Fläschchen. Legen Sie die Auffangfläschchen in ein transparentes Acrylgestell. Positionieren Sie das Gestell in einem kleinen Inkubator, der auf 25 Grad Celsius eingestellt ist, in einem präzisen Abstand zu einem LED-Panel, bei dem die Lichteinwirkung durchschnittlich 1.000 Lux beträgt. Dann fliegt das Heck ein bis drei Tage lang unter einer der folgenden Bedingungen, entweder konstante Dunkelheit, 12 Stunden Licht, gefolgt von 12 Stunden Dunkelheit, oder konstantes Licht.